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    低溫纖維素降解菌的篩選及其產(chǎn)酶研究

    2013-08-07 09:14:08任紅梅劉左軍袁惠君水清照祿亞芬
    食品工業(yè)科技 2013年19期
    關(guān)鍵詞:產(chǎn)酶酵母纖維素

    任紅梅,劉左軍 ,袁惠君,水清照,祿亞芬

    ( 蘭州理工大學(xué)生命科學(xué)與工程學(xué)院,甘肅蘭州730050)

    地球表面存在大量的低溫環(huán)境,有80%常年平均氣溫在5℃及以下,使得冷適應(yīng)微生物的分布極為廣泛[1]。目前發(fā)現(xiàn)的大多數(shù)低溫纖維素酶都是由低溫微生物產(chǎn)生的,這些微生物主要分布于兩極區(qū)域(土壤、海水、海泥和探險(xiǎn)隊(duì)遺跡)、冰川、海底盆地、緯度較高的凍土區(qū)或特殊的低溫環(huán)境等。與中溫酶相比,低溫酶在自然條件下具有較高的酶活和催化效率,生產(chǎn)工藝中經(jīng)溫和處理即可使酶活喪失,不會(huì)影響產(chǎn)品的質(zhì)量,且節(jié)省能量和生產(chǎn)費(fèi)用[2]。纖維素酶產(chǎn)生菌種主要是細(xì)菌、放線菌、絲狀真菌等。對纖維素物質(zhì)降解和纖維素酶的研究中,真菌占主要地位。但自然界中還存在相當(dāng)數(shù)量的纖維素降解細(xì)菌,它們以自己獨(dú)特的方式消化纖維素[3]。細(xì)菌產(chǎn)生的纖維素酶較少,主要是內(nèi)切酶,大多無外切酶的形成[4]。此外,細(xì)菌所產(chǎn)纖維素酶一般存在于細(xì)胞內(nèi)或者吸附于細(xì)胞壁,不易分泌到培養(yǎng)液中,故工業(yè)中很少以細(xì)菌作為生產(chǎn)菌種[5],而本文篩選到的菌株產(chǎn)胞外酶,不需細(xì)胞破碎等技術(shù),發(fā)酵液經(jīng)離心、純化等步驟即可得到纖維素酶。鑒于此,本文從甘南瑪曲高寒草甸土壤中分離到一株低溫纖維素降解菌,通過響應(yīng)面法對其生長和產(chǎn)酶條件進(jìn)行優(yōu)化,以期為低溫纖維素酶的推廣和廣泛應(yīng)用提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料與儀器

    菌M7 枯草芽孢桿菌,分離自甘南瑪曲高寒草甸土壤,由本實(shí)驗(yàn)室篩選得到并保藏;微晶纖維素 國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司,柱層析;剛果紅 天津市化學(xué)試劑研究所,指示劑;蛋白胨 上海生工生物;酵母膏 北京雙旋微生物培養(yǎng)基制造廠,生化試劑;3,5-二硝基水楊酸 上海中秦試劑有限公司,化學(xué)純;羧甲基纖維素鈉 天津市凱信化學(xué)工業(yè)有限公司,分析純;LB 培養(yǎng)基(g/L) 酵母膏5,蛋白胨10,NaCl 5,瓊脂15 ~20,pH7.2 ~7.4;種子培養(yǎng)基(g/L) 酵母膏5,蛋白胨10,NaCl 5,pH7.2~7.4;液體產(chǎn)酶培養(yǎng)基(g/L) 微晶纖維素10,麩皮10,mandels 營養(yǎng)液1000mL,吐溫-80 2mL,初始pH。

    高壓蒸汽滅菌鍋 SYQ-DSX-280B,上海申安醫(yī)療器械;高速冷凍離心機(jī) TGL-16,長沙湘儀離心機(jī)儀器有限公司;紫外可見分管光度計(jì) Cary50,上??茖W(xué)儀器有限公司;超凈工作臺(tái) B104-N,吳江市凈化設(shè)備總廠;生物數(shù)碼顯微鏡 MOTICDMB,麥克奧迪實(shí)業(yè)集團(tuán)有限公司;振蕩培養(yǎng)箱 BS-2F,江蘇省金壇市醫(yī)療儀器;pH 計(jì) PHS-3D,上海精密科學(xué)儀器有限公司廠;分析天平 AR5120,梅特勒-托利多儀器有限公司。

    1.2 實(shí)驗(yàn)方法

    1.2.1 發(fā)酵方法 具體發(fā)酵流程圖見圖1。

    圖1 菌株M7 發(fā)酵流程圖Fig.1 Fermentation flow chart of strain M7

    1.2.2 酶液制備 發(fā)酵72h 后,取發(fā)酵液于4℃、8000r/min 離心10min,得到上清液,即為粗酶液。

    1.2.3 酶活測定 CMCase 測定采用DNS 法[6]。酶活力定義為每分鐘水解底物產(chǎn)生1μg 還原糖的酶量為一個(gè)酶活力單位(IU)。

    1.2.4 繪制M7 生長及產(chǎn)酶曲線 接種M7 于液體培養(yǎng)基中,從第6h 開始測定OD(600nm),每3h 測定一次,繪制生長曲線;從第24h 開始測定CMCase 活力,每12h 取樣測定一次,繪制產(chǎn)酶曲線。

    1.2.5 單因素實(shí)驗(yàn) 以蛋白胨、酵母膏、微晶纖維素添加比例,培養(yǎng)箱轉(zhuǎn)速,培養(yǎng)基初始pH,發(fā)酵溫度為影響因子,經(jīng)液體產(chǎn)酶培養(yǎng),測定酶活力。每組處理5 個(gè)重復(fù)。

    1.2.6 響應(yīng)面法優(yōu)化培養(yǎng)條件 根據(jù)單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果,采用3 因素3 水平響應(yīng)面Box-Behnken 設(shè)計(jì),優(yōu)化M7 產(chǎn)酶條件,實(shí)驗(yàn)因素及水平編碼如表1。

    表1 實(shí)驗(yàn)因素及水平Table 1 Experimental factors and levels of Box-Behnken design

    2 結(jié)果與分析

    2.1 菌株M7 鑒定

    2.1.1 形態(tài)觀察 見圖2。M7 菌體呈直桿狀,成對或鏈狀排列,經(jīng)革蘭氏染色,呈陽性。

    圖2 菌株M7 顯微觀察Fig.2 Microscopic identification of strain M7

    2.1.2 生理生化 根據(jù)《常見細(xì)菌系統(tǒng)鑒定手冊》[7]和《伯杰細(xì)菌鑒定手冊》[8],對菌株M7 進(jìn)行生理生化測定,結(jié)果如表2。

    表2 菌株M7 生理生化特性Table 2 Physiological and biochemical property of strain M7

    2.1.3 16S rRNA 序列比對及進(jìn)化樹的構(gòu)建 采用改良CTAB 法提取菌株M7 基因組,將基因組送于上海生工進(jìn)行測序,測序結(jié)果顯示M7 基因組含1000bp。對測序結(jié)果進(jìn)行同源性分析以及Blast 比對,與之相似度達(dá)98%~99%的菌株大部分為芽孢桿菌,選取其中的18 條芽孢桿菌16S rRNA 序列,采用Clustalx 進(jìn)行同源性分析并構(gòu)建進(jìn)化樹。由此得知,菌株M7 與枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis strain XS6)進(jìn)化距離最近。結(jié)合形態(tài)觀察及生理生化特性,初步鑒定M7為枯草芽孢桿菌。

    圖3 菌株M7 及基于16S rRNA 的系統(tǒng)進(jìn)化樹Fig.3 Neighbor-Joining tree showing the phylogenetic relationships based on 16S rRNA gene sequences

    2.2 單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果

    2.2.1 M7 生長曲線及產(chǎn)酶時(shí)間 由圖4 看出,菌株M7 生長和產(chǎn)酶速度較快。在84~114h 之間,微生物數(shù)量保持相對穩(wěn)定,總細(xì)胞數(shù)達(dá)到最高水平,CMCase的積累也達(dá)到高峰,故選擇培養(yǎng)84h 時(shí)收集酶液。

    圖4 時(shí)間對M7 生長及產(chǎn)CMCase 的影響Fig.4 Effect of time on growth and CMCase of strain M7

    2.2.2 蛋白胨、酵母膏及微晶纖維素比例對M7 產(chǎn)酶的影響 由圖5 看出,酵母膏/微晶纖維素為2.5/2.5,蛋白胨為5g/L 時(shí),發(fā)酵液中CMCase 含量達(dá)到最大值。

    圖5 蛋白胨、酵母膏及微晶纖維素比例對M7 產(chǎn)酶的影響Fig.5 Effect of proportion of peptone,yeast extract and microcrystalline cellulose on producing CMCase

    2.2.3 轉(zhuǎn)速對M7 產(chǎn)酶的影響 由圖6 看出,當(dāng)轉(zhuǎn)速達(dá)到180r/min 時(shí),CMCase 積累達(dá)到最大。故選取振蕩培養(yǎng)箱的轉(zhuǎn)速為180r/min。

    圖6 轉(zhuǎn)速對M7 產(chǎn)酶的影響Fig.6 Effect of rotating speed on producing CMCase

    2.2.4 培養(yǎng)基初始pH 對M7 產(chǎn)酶的影響 如圖7 所示,在自然pH4.83 條件下,CMCase 合成最多,故選擇自然pH 即可。

    2.2.5 發(fā)酵溫度對M7 產(chǎn)酶的影響 如圖8 所示,在25℃時(shí),CMCase 產(chǎn)量最多,該菌株屬低溫纖維素酶產(chǎn)生菌的范疇[9]。

    2.3 響應(yīng)面Box-Behnken 中心組合設(shè)計(jì)優(yōu)化結(jié)果

    2.3.1 Box-Behnken 實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì) 根據(jù)Box-Behnken中心組合原理,設(shè)計(jì)3 因素3 水平響應(yīng)面分析實(shí)驗(yàn),實(shí)驗(yàn)結(jié)果如表3。

    圖7 初始pH 對M7 產(chǎn)酶的影響Fig.7 Effect of initial pH on producing CMCase

    圖8 發(fā)酵溫度對M7 產(chǎn)酶的影響Fig.8 Effect of fermentation temperature on producing CMCase

    表3 Box-Behnken 優(yōu)化結(jié)果Table 3 Results of Box-Behnken design

    2.3.2 二次回歸擬合及方差分析通過Design Expert7.0 軟件對實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行二次多項(xiàng)式回歸擬合,建立了CMCase 隨發(fā)酵溫度(A)、pH(B)、轉(zhuǎn)速(C)而變化的二次多項(xiàng)回歸方程為CMCase =4.16-0.35A-0.092B-0.37C-0.013AB-0.13AC + 0.25BC-0.15A2-0.86B2-0.69C2

    該回歸方程方差分析如表4,該模型p 值(p <0.0001)達(dá)到極顯著水平,失擬項(xiàng)p =0.0628 >0.05,失擬不顯著。回歸方程復(fù)相關(guān)系數(shù)和校正系數(shù)分別為R2=0.9757,RAdj=0.9445,變異系數(shù)(CV)=5.07%,說明回歸方程的擬合程度較好,預(yù)測值和實(shí)測值之間具有高度的相關(guān)性,可用回歸方程代替實(shí)驗(yàn)真實(shí)點(diǎn)對菌株M7 產(chǎn)CMCase 條件進(jìn)行優(yōu)化和理論預(yù)測。

    根據(jù)二次多項(xiàng)模型,利用Design Expert7.0 軟件繪出響應(yīng)面圖,見圖9。經(jīng)過模型優(yōu)化,得到預(yù)測模型為:發(fā)酵溫度20℃,初始pH4.93,轉(zhuǎn)速174.4r/min,CMCase 達(dá)到最大,為4.39U/mL。在實(shí)驗(yàn)中,分別選取發(fā)酵溫度、初始pH、轉(zhuǎn)速為:20℃、5.0、175r/min 進(jìn)行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn),CMCase 優(yōu)化值達(dá)到4.34U/mL。

    表4 二次多項(xiàng)模型方差分析Table 4 Analysis of variance and regression for the quadratic model

    圖9 中心組合設(shè)計(jì)響應(yīng)曲面圖Fig.9 Surface plot of central composite design(CCD)

    3 結(jié)論

    從采自瑪曲高寒草甸土壤中篩選分離出一株低溫纖維素降解菌M7,通過形態(tài)觀察、生理生化實(shí)驗(yàn)和16S rRNA 序列分析,初步鑒定為枯草芽孢桿菌(Bacillus subtili)。

    通過單因素和響應(yīng)面優(yōu)化顯示,菌株M7 在以5g/L 蛋白胨、2.5g/L 微晶纖維素和2.5g/L 酵母膏的培養(yǎng)基中生長良好并能穩(wěn)定產(chǎn)酶。在pH4.83 時(shí)產(chǎn)CMCase 最高,在pH4 ~pH8 之間產(chǎn)酶比較穩(wěn)定,pH范圍較廣泛。振蕩培養(yǎng)箱轉(zhuǎn)速為175r/min 時(shí),菌株M7 所產(chǎn)CMCase 活力最高,條件比較溫和。在10~50℃內(nèi)均能生長,最適產(chǎn)酶溫度為20℃,屬于低溫細(xì)菌的范疇[2,9];此外,該菌產(chǎn)酶溫度和酵母菌的發(fā)酵溫度相近,可以采用一步發(fā)酵法,糖化過程和乙醇發(fā)酵同時(shí)進(jìn)行,具有一定的應(yīng)用前景。

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