姜文進(jìn),李 棟,黃駱鐮,吳曉琴,張 英
(浙江大學(xué)生物系統(tǒng)工程與食品科學(xué)學(xué)院,浙江杭州310058)
大黃魚(Pseudosciaenacrocea)為廣溫廣鹽的肉食性魚類,是我國傳統(tǒng)的海產(chǎn)經(jīng)濟(jì)魚類,素有“國魚”之稱。20世紀(jì)80年代以來,由于過度捕撈,大黃魚產(chǎn)量急劇下降。20世紀(jì)90年代初,大黃魚全人工養(yǎng)殖技術(shù)突破后產(chǎn)量逐年上升。同時,由于大黃魚體質(zhì)較嫩,在運輸過程中,極易導(dǎo)致充血、掉鱗、受傷、耳石中半硅管破裂,死亡率極高。為此,大部分大黃魚以冰鮮原條魚的形式運輸和銷售。目前,冷藏不僅能將魚肉細(xì)胞維持在活體狀態(tài),還能有效抑制有害微生物的活動及各種酶的活性,是減緩魚肉腐敗變質(zhì)和延長貨架期的有效方法。然而,低溫條件并不能完全停止魚的生化反應(yīng)和抑制有害微生物的繁殖。此外,養(yǎng)殖大黃魚脂肪含量、尤其是不飽和脂肪酸含量較高,冷藏過程中易發(fā)生脂肪氧化,影響其貨架期。因此,在冷藏過程中,采用添加外源性的天然物食品添加劑,起到抑菌、保鮮、抗氧化的協(xié)同作用,不失為一種方便、經(jīng)濟(jì)、實用的技術(shù)手段。竹葉抗氧化物是本課題組創(chuàng)制的、具有本土資源特色和自主知識產(chǎn)權(quán)的、安全高效經(jīng)濟(jì)的天然食品抗氧化劑,于2004年4月被批準(zhǔn)列入《中華人民共和國食品添加劑使用標(biāo)準(zhǔn)》(GB2760)[1],現(xiàn)允許使用的范圍包括:食用油脂、油炸堅果與籽類、油炸面制品、即食谷物、焙烤食品、肉制品、水產(chǎn)品、飲料和膨化食品,最大使用量0.5g/kg[2]。已知 AOB具有與茶多酚和 TBHQ等相當(dāng)?shù)目寡趸埽婢呖咕?、抑菌、抑制脂質(zhì)過氧化等多重生物學(xué)活性[2-3]。已有研究報道,0.2%的茶多酚(Tea Polyphenol)溶液應(yīng)用在大黃魚冷藏過程中能有效地抑制細(xì)菌繁殖、減緩脂肪氧化[4],本實驗中作為AOB冷藏保鮮效果的對照。本實驗以竹葉抗氧化物為主要研究對象,通過對竹葉抗氧化物浸泡后的養(yǎng)殖大黃魚冷藏過程中pH、揮發(fā)性鹽基氮、質(zhì)構(gòu)和K值等指標(biāo)的變化進(jìn)行分析,評價其對大黃魚食用品質(zhì)和貨架壽命的影響,旨在為名優(yōu)水產(chǎn)品的冷鏈儲運過程中的品質(zhì)保持提供依據(jù)。
養(yǎng)殖大黃魚(活魚)舟山東皇漁業(yè)科技發(fā)展有限公司提供,為海水網(wǎng)箱激流養(yǎng)殖的閩東族種,平均條重在500~600g之間;竹葉抗氧化物(AOB-Ⅲ)杭州尤美特科技有限公司提供,總酚含量25%,其中異葒草苷含量1.2%;茶多酚 浙江大學(xué)茶學(xué)系提供,茶多酚含量為85%;殼聚糖(食品級)浙江金殼生物化學(xué)有限公司,乙酰化程度為95%;本實驗所用化學(xué)試劑 均為分析純;所用水 均為蒸餾水。
KJELTEC 2300全自動定氮儀 瑞典福斯特卡托公司;7530G紫外可見(UV-VIS)分光光度計 上海惠普分析儀器有限公司;AGB5型電子天平(十萬分之一)美國METTLER TOLEDO公司;DELTA pH計 瑞士梅特勒-托利多儀器有限公司;高效液相色譜儀 美國Waters 2695,配置Waters PDA2996檢測器;TA.XT.plus質(zhì)構(gòu)儀 英國Stable Micro System公司。
1.2.1 大黃魚處理方式 將運回的鮮活大黃魚試樣采用碎冰凍死后,隨機(jī)分成四組,分別為竹葉抗氧化物(AOB)實驗組(0.1%AOB、0.2%AOB水溶液),陽性對照組(0.2%茶多酚水溶液)和空白對照組(生理鹽水)。各組大黃魚用溶液浸泡15min,取出瀝干后均勻涂抹殼聚糖溶液(1.5%殼聚糖+0.5%冰乙酸+0.5%甘油),并用蒸煮袋包裝后放置于(4±1)℃冰箱中。樣品從放入冰箱開始,每2d測定一次,至第12d止。
1.2.2 魚肉pH測定 參考Arashisar等[5]的方法,稱取10g全魚肉樣品(沿脊骨剖切,去魚頭、魚尾、魚皮、內(nèi)臟,取全部魚肉,用組織搗碎機(jī)打碎)于燒瓶中,加入煮沸冷卻的蒸餾水100mL,攪勻后用pH計測其上清液pH。
1.2.3 魚肉 K值測定 按照J(rèn)ohn M Rvder[6]的方法進(jìn)行大黃魚ATP關(guān)聯(lián)物的萃取:取5g絞碎均勻的整魚魚肉(同上)于燒杯中,向燒杯中加入25mL冷卻的高氯酸(0.06mol/L),充分勻漿后,3000r/min下離心10min去沉淀,取上清液10mL,用1mol/L KOH調(diào)節(jié)pH至6.5~6.8。靜置30min后于3000r/min下離心10min去除沉淀,取10mL上清液在-80℃凍藏用于后期檢測。整個過程均在0~4℃下操作。
大黃魚ATP關(guān)聯(lián)物的高效液相色譜(HPLC)檢測條件:色譜柱 ODS C18(250mm×4.6mm),用0.04mol/L KH2PO4、0.06mol/L K2HPO4混和溶液作為流動相進(jìn)行平衡和梯度洗脫。上樣量為10μL,液相流速為 1mL/min,柱溫為 37℃,紫外檢測器波長為254nm。
K值的計算方法:魚肌肉中ATP按ATP→ADP→AMP→IMP→HxR→Hx途徑降解,其K值計算公式如式(1):
式中,ATP、ADP、AMP、IMP、HxR、Hx 分別代表腺苷三磷酸、腺苷二磷酸、腺苷酸、肌苷酸、次黃嘌呤核苷、次黃嘌呤的濃度(μmol/g,濕基)。K值越小表示鮮度越好,K值越大則鮮度越差。
1.2.4 魚肉中2-硫代巴比妥酸值(TBA)的測定 參考Siu等[7]的TBA測定方法,稱取10g攪碎均勻魚肉(同上)于燒杯中,向燒杯中加入25mL純水,充分勻漿后,再加入5%三氯乙酸(TCA)25mL,充分?jǐn)嚢杈鶆?,靜止30min,過濾,再用5%三氯乙酸將濾液定容至50mL。取5mL上清液于比色管中,然后向比色管中加入5mL的TBA溶液(0.02mol/L)。將上述混合液在(80±1)℃的恒溫水浴加熱40min,之后冷卻至室溫后,在532nm下測定吸光度。TBA值用丙二醛的質(zhì)量分?jǐn)?shù)表示,單位為mg/kg。TBA值單位為mg丙二醛/kg樣品。
1.2.5 魚肉中揮發(fā)性鹽基氮(TVB-N)含量的測定按照SC/T 3032-2007《水產(chǎn)品中揮發(fā)性鹽基氮的測定》[8]測定。
1.2.6 背肌的質(zhì)構(gòu)分析 測定時取背脊部魚肉,并將魚肉切成:長(7.0±1.0)cm、寬(4.0±1.0)cm、高(1.0±0.2)cm的魚塊,在TPA模式下測定。測定指標(biāo)包括硬度、彈性和咀嚼性、粘性、膠黏性、內(nèi)聚性、回復(fù)性。TPA模式參數(shù)設(shè)定參考戴志遠(yuǎn)等[9]的方法,測定具體參數(shù)為:使用平底柱形探頭p/75(75mm直徑),測試前速率3mm/s,測試速率1mm/s,測試后速率1mm/s,壓縮程度50%,停留間隔時間5s,負(fù)重探頭類型:Auto=5g,數(shù)據(jù)收集率:200,環(huán)境溫度:12~16℃。每個樣品測6次,取平均值。
實驗數(shù)據(jù)采用SPSS 17.0 for windows軟件進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)分析。結(jié)果用平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示,顯著性檢驗采用單因素方差分析(One-Way ANOVA),采用LSD方法進(jìn)行多重比較,以p<0.05時為差異顯著。
對某些水產(chǎn)品,pH可以作為鮮度變化的一項重要參考指標(biāo)[10]。養(yǎng)殖大黃魚魚肉的初始pH為6.81,在冷藏過程中pH呈先降后升的趨勢。這是因為魚體死后其肌肉中糖原經(jīng)過糖酵解途徑后產(chǎn)生乳酸等物質(zhì),而使其肌肉中pH下降;之后隨著魚肉鮮度下降,肌肉中蛋白質(zhì)被分解,產(chǎn)生像氨和三甲胺等物質(zhì),這些物質(zhì)多數(shù)呈現(xiàn)堿性,這又導(dǎo)致貯藏后期魚肌肉中的pH 逐漸上升[11]。
圖1為不同保鮮劑處理的試樣在冷藏過程中pH的變化。根據(jù)空白對照組pH變化情況,冷藏前8d,魚肉以肌肉中糖原酵解產(chǎn)生乳酸為主,實驗組和茶多酚對照組pH均高于空白對照組,AOB組高于對照組,表明AOB能有效抑制糖原酵解,且效果優(yōu)于茶多酚;8d以后,蛋白質(zhì)分解產(chǎn)物含量明顯增加,魚肉腐爛明顯,pH直線上升,實驗組和茶多酚對照組pH均低于空白對照組,且0.2%AOB組低于茶多酚對照組,結(jié)果表明,AOB具有延緩魚肉腐爛的作用,其保鮮作用優(yōu)于0.2%茶多酚。
圖1 不同保鮮劑處理的大黃魚魚肉在冷藏過程中pH的變化Fig.1 Changes in pH of different fish samples during cold storage over time
硫代巴比妥酸值(TBA value)是檢測油脂氧化酸敗的有效方法,被廣泛用于測定脂類食品,特別是肉類和水產(chǎn)品脂肪氧化酸敗的程度,是判斷魚肉脂肪氧化程度的重要指標(biāo)[12]。不同處理的試樣在冷藏過程中TBA值的變化如圖2所示。
大黃魚魚肉初始的 TBA值為0.024mg/kg,在(4±1)℃的冷藏過程中呈現(xiàn)逐漸上升的趨勢。12d后空白對照組的 TBA值達(dá)到了0.304mg/kg,0.1%AOB實驗組為 0.278mg/kg,茶多酚對照組為0.170mg/kg,而0.2%AOB實驗組為0.152mg/kg。前8d,0.2%AOB組的TBA值一直穩(wěn)定在較低的水平上,其他組并無顯著性差異;8d后,空白對照組和0.1%AOB組的TBA值迅速增長,而茶多酚對照組和0.2%AOB組雖然也有所增長,但仍遠(yuǎn)低于空白對照組。從TBA法測定結(jié)果分析,不同處理組的抗氧化性能強(qiáng)弱順序依次為:0.2%AOB>0.2%茶多酚>0.1%AOB>空白對照組。可見,以0.2%濃度AOB溶液處理的效果最佳。研究表明,油脂的自動氧化是一個自由基鏈反應(yīng),黃酮類化合物可以通過清除自由基,達(dá)到抗氧化的效果[13]。
揮發(fā)性鹽基氮(Total volatile basic nitrogen,TVB-N)主要包括甲胺、二甲胺和三甲胺,它們是蛋白和非蛋白含氮化合物降解的產(chǎn)物[14]。魚死后,隨著蛋白質(zhì)的分解,三甲胺、二甲胺和氨類增多,產(chǎn)生腐敗氣味,影響魚肉的感官品質(zhì)和營養(yǎng)價值,TVB-N值是評價魚肉腐敗程度的重要指標(biāo)[15]。
經(jīng)過不同保鮮劑處理的試樣的TVB-N值變化如圖3所示。按照SC/T 3101-2010的規(guī)定,TVB-N≤13mg/100g屬于一級新鮮度,≤30mg/100g為合格品。養(yǎng)殖大黃魚魚肉初始的 TVB-N值(0d)為10.89mg/100g,為一級新鮮度;2d時,各組都超過了13mg/100g;4d時空白對照組顯著上升,達(dá)到29.53mg/100g,而經(jīng)保鮮劑處理的組變化不大。第6d時,各組的TVB-N值均顯著上升,但仍≤30mg/100g,仍為合格品;到第8d,空白對照組和0.2%AOB實驗組的TVB-N值>30mg/100g;第10d,只有0.1%AOB組的TVB-N值≤30mg/100g,仍為合格品。從以上TVB-N測定結(jié)果分析,各組試樣的抗氧化強(qiáng)弱順序依次為:0.1%AOB>0.2%茶多酚>0.2%AOB>空白對照組,以0.1%的AOB添加量為佳。
圖2 不同處理的大黃魚魚肉在冷藏過程中TBA值隨時間的變化Fig.2 Changes in thiobarbituric acid(TBA)of different fish samples during cold storage over time
圖3 不同處理的大黃魚魚肉在冷藏過程中TVB-N值隨時間的變化Fig.3 Changes in TVB-N value of different fish samples during cold storage over time
質(zhì)構(gòu)儀質(zhì)地多面分析(Texture Profile Analysis,TPA)是通過模擬人口腔的咀嚼運動對試樣進(jìn)行兩次壓縮,采用力學(xué)測試方法來模擬質(zhì)構(gòu)變化,它可以模擬反映出魚肉硬度、粘附性等參數(shù)[16]。硬度表現(xiàn)為人體的觸覺-柔軟或堅硬,使食品達(dá)到一定變形所需要的力,食品保持形狀的內(nèi)部結(jié)合力[17]。經(jīng)過保鮮劑處理和空白對照組大黃魚的硬度變化如表1所示。
不同處理的背肌試樣在冷藏過程中硬度隨時間的變化見表1。各組硬度的初始值第2d時均無顯著差異(p>0.05);貯藏第4d,0.2%AOB組顯著大于空白對照組(p<0.05);貯藏第6d,兩實驗組和陽性對照組均顯著大于空白對照組(p<0.05);貯藏第8d,兩實驗組的硬度顯著大于空白對照組(p<0.05),而陽性對照組則跟空白對照組無顯著性差異(p>0.05);貯藏第10d,兩實驗組的跟空白對照組無顯著差異(p>0.05),陽性對照組顯著小于空白對照組(p<0.05);貯藏第12d,0.1%AOB組顯著低于空白對照組(p<0.05),0.2%AOB組和陽性對照組顯著高于空白對照組(p<0.05)。從整體看,隨著保藏時間的延長,各組的硬度呈逐漸下降趨勢,可能是因為魚肉的腐敗變質(zhì)導(dǎo)致魚肉的硬度下降。下降幅度0.2%AOB組最小,與陽性對照組相比效果更好。這表明,0.2%的AOB對冷藏期間大黃魚魚肉的硬度有一定的保護(hù)效果。
粘附性是下壓一次后將探頭從試樣中拔出所需的能量大小,反映了在咀嚼魚肉時,食品表面與其物體(舌、齒、腭等)粘在一起的力。粘附性參數(shù)能夠反映魚肉細(xì)胞間結(jié)合力大小,細(xì)胞間結(jié)合力減少,則粘附性值增大[18]。經(jīng)過保鮮劑處理和對照組養(yǎng)殖大黃魚的粘附性變化如表2所示。
分析組間的粘附性數(shù)據(jù),發(fā)現(xiàn)各組并無顯著性差異,這說明粘附性并不能作為評判AOB處理對大黃魚品質(zhì)影響的指標(biāo)。
表1 不同處理的背肌試樣在冷藏過程中硬度隨時間的變化(g)Table 1 Changes in hardness of the back muscles of different fish samples during cold storage over time(g)
表2 不同處理的背肌試樣在冷藏過程中粘附性隨時間的變化(g·s)Table 2 Changes in adhesion of the back muscles of different fish samples during cold storage over time(g·s)
因在死亡早期,細(xì)菌數(shù)量較少,但魚體自身的酶仍有活性,魚的早期鮮度取決于自身的生物化學(xué)反應(yīng)。K值能反映魚體死后ATP降解反應(yīng)進(jìn)行的程度,適合對魚類早期的鮮度作出評定[19]。我國國家標(biāo)準(zhǔn)中雖然尚未采用K值作為鮮度指標(biāo),但在一些研究部門和水產(chǎn)品出口的鮮度檢測中已開始利用K值來評價魚肉鮮度。許多學(xué)者對K值與魚鮮度的關(guān)系進(jìn)行過研究[20],利用K值評價大多數(shù)魚種的鮮度是比較適宜的,一般認(rèn)為即殺魚的K值在10%以下,作為生魚片的新鮮魚K值大約在20%以下,20%~40%為二級鮮度,60%~80%為初期腐敗魚[21]。經(jīng)過保鮮劑處理和對照組養(yǎng)殖大黃魚在冰藏條件下K值的變化如圖4。
圖4 不同處理的大黃魚魚肉在冷藏過程中K值隨時間的變化Fig.4 Changes in K value of different fish samples during cold storage over time
由圖4可知,隨著冷藏天數(shù)的增加,K值呈現(xiàn)上升趨勢。冷藏0~4d的K值增加幅度最為明顯,4d后增長較緩慢,到8d后K值再次明顯上升。新鮮魚肉的K值為8.46%,冷藏2d后,除空白對照組,其他組都在20%以下,但接近20%。根據(jù)K值評價大黃魚新鮮度,實驗組和對照組大黃魚冷藏2d內(nèi)仍達(dá)到新鮮魚要求,而空白組大黃魚則為二級鮮度。到第4d后,各組K值變化趨于平緩。4~8d內(nèi),K值變化不明顯,維持在40%左右,各組魚均達(dá)到二級鮮度要求。8d后,空白組大黃魚K值顯著增加,到10d已達(dá)62.25%,表明大黃魚開始腐敗。而兩個對照組和實驗組K值變化較小,仍顯著低于60%。從以上K值測定結(jié)果分析,AOB和茶多酚均能有效延長大黃魚的貯藏時間,不同保鮮劑處理的效果依次為:0.1%AOB>0.2%茶多酚>0.2%AOB>空白對照組,以0.1%的AOB添加量為最佳。
本研究以養(yǎng)殖大黃魚為實驗對象,對竹葉抗氧化物和茶多酚的保鮮效果進(jìn)行了對比研究,表明二者均能顯著延緩大黃魚在冷藏期間的腐敗變質(zhì)。采用0.1%的AOB溶液浸漬、輔以1.5%殼聚糖溶液的涂膜處理,可將(4±1)℃冷藏條件下的人工養(yǎng)殖大黃魚的貨架期延長,表明竹葉抗氧化物作為一種天然來源的生物保鮮劑在對產(chǎn)品領(lǐng)域的應(yīng)用前景廣闊。
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