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    鉬酸鈉浸種薯對馬鈴薯幼苗建成的影響

    2013-04-29 00:44:03張超廉華
    山東農(nóng)業(yè)科學(xué) 2013年9期
    關(guān)鍵詞:馬鈴薯

    張超 廉華

    摘 要:以馬鈴薯克新13號為試材,用不同濃度的鉬酸鈉溶液浸種薯。結(jié)果表明,與對照相比,鉬酸鈉浸種薯處理后的馬鈴薯地上部及地下部干重、幼苗壯苗指數(shù)、葉片葉綠素含量、葉片蔗糖含量、根系活力、葉片淀粉含量、葉片還原糖含量、蔗糖轉(zhuǎn)化酶活性以及磷酸合成酶活性均有所提高。其中以2.0 mg/L鉬酸鈉溶液浸種薯對馬鈴薯幼苗建成最為有效。

    關(guān)鍵詞:馬鈴薯;鉬酸鈉;幼苗建成

    中圖分類號:S532.041文獻標(biāo)識號:A文章編號:1001-4942(2013)09-0047-05

    同其他作物一樣,馬鈴薯的生長和產(chǎn)量品質(zhì)的形成需要全營養(yǎng)的供應(yīng)。近年來,隨著馬鈴薯生產(chǎn)水平的不斷提高和氮、磷、鉀三要素施用量的不斷增加,土壤中微量元素的缺乏日益顯現(xiàn)出來,土壤中各種養(yǎng)分的不平衡已成為馬鈴薯產(chǎn)量提高的重要限制因素之一。微量元素的施用已被提到議事日程上來。本試驗用不同濃度的鉬酸鈉溶液對馬鈴薯種薯進行浸種處理,研究其對馬鈴薯幼苗建成的作用效應(yīng),為馬鈴薯生產(chǎn)合理施用鉬肥提供理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 供試材料

    供試品種為馬鈴薯克新13號。

    1.2 試驗方案

    試驗于2010~2012年在黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)室外盆栽基地進行。盆栽基質(zhì)為河沙。 試驗設(shè)4個鉬酸鈉處理:T1為0.1 mg/L;T2為0.5 mg/L;T3為2.0 mg/L;T4為5.0 mg/L;以清水為對照(CK)。播種前各處理及對照浸種薯24 h。 2012年5月7日選取萌發(fā)程度一致的頂芽薯塊(重25 g)播種,每處理播種36盆,完全隨機區(qū)組排列,重復(fù)3次。播種后每日澆1次不含鉬酸鈉的Hoagland營養(yǎng)液(表1),每3天用水淋洗1次。出苗后第5天開始取樣,各處理取代表性的植株5株,每5天取樣1次,共5次。

    1.3 測定指標(biāo)與方法

    1.3.1 植物學(xué)指標(biāo) 地上部干重、地下部干重測定:地上部與地下部鮮樣先用自來水沖洗2~3次,再用蒸餾水沖洗2次,用吸水紙吸干測其鮮重。將鮮樣置于105℃烘箱內(nèi)烘干30 min,再于60~70℃烘箱內(nèi)烘2 h(即恒溫干燥法),測地上部與地下部干重。

    壯苗指數(shù)采用以下公式進行計算:

    壯苗指數(shù) =(莖粗/株高+地下部干重/地上部干重)×全株干重

    1.3.2 生理指標(biāo) ①葉綠素含量的測定:采用乙醇-丙酮混合提取法。將丙酮和無水乙醇等量混合制成浸提液。稱取剪碎的葉片0.1 g左右,放入10 ml試管中,加入提取液并定容至10 ml,加塞置于暗處,于室溫下進行浸提。24 h后,待材料完全變白,利用分光光度計測定645 nm及663 nm的光密度,即可計算出葉綠素含量。

    ②根系活力測定:采用α-萘胺氧化法。將根系洗凈吸干附著的水,稱取1.0 g放入100 ml三角瓶中,加入40 μl/L的α-萘胺溶液和磷酸緩沖液各25 ml,混勻。靜置10 min后,從瓶中吸取2 ml溶液放入20 ml刻度試管中,將其余的溶液塞好瓶塞后,放在振蕩器上,在25℃下振蕩3~6 h,反應(yīng)時間完畢后,再取2 ml溶液放入另一刻度試管。在上述兩次及空白試管所吸取的2 ml測定液中,各加入10 ml蒸餾水,混勻后再加入1%對氨基苯磺酸1 ml和100 μl/L亞硝酸鈉溶液1 ml,混勻,置于室溫下5 min,使之顯色,然后加入蒸餾水,定容至20 ml,在20~60 min內(nèi)在510 nm波長下進行比色,測定其吸光度,由標(biāo)準(zhǔn)曲線查出α-萘胺含量,計算根系活力。

    ③葉片蔗糖、淀粉測定:均采用蒽酮比色法。

    ④葉片還原糖含量測定:采用3,5-二硝基水楊酸法。

    ⑤葉片蔗糖轉(zhuǎn)化酶活性測定:稱取1 g樣品,用預(yù)冷的蒸餾水在冰浴中研磨,定容至10 ml 試管中,置于冰箱中浸提3 h,離心15 min(4 000 r/min),收集上清液置于10 ml試管中用蒸餾水定容。吸取2 ml酶液,置于25 ml試管中,加入磷酸緩沖液5 ml,加10%蔗糖溶液1 ml,置于37℃水浴中30 min,加3,5-二硝基水揚酸1.5 ml,100℃水浴5 min,冷卻用蒸餾水定容至25 ml,在540 nm波長下比色測定吸光值,代入公式計算蔗糖轉(zhuǎn)化酶活性。

    ⑥葉片蔗糖磷酸合成酶活性測定:

    酶液制備:稱取樣品(葉片1 g),置于預(yù)冷的研缽中,分批加入5 ml提取緩沖液(100 mmol/L Tris-HCl 緩沖液,內(nèi)含5 mmol/L MgCl2,2 mmol/L EDTA-Na2, 2%乙二醇,0.2% BSA,2%PVP,5 mmol/L DTT),冰浴研磨提取,離心20 min(10 000 r/min),取上清液3 ml,置于透析緩沖液(25 mmol/L Tris-HCl緩沖液,內(nèi)含2.5 mmol/L MgCl2,1 mmol/L EDTA-Na2,1%乙二醇,1 mmol/L DTT)中4℃透析過夜,其間更換透析液3次,透析后酶液定容至5 ml備用。

    酶活性測定:取3支10 ml刻度試管,加入0.4 ml酶反應(yīng)液(100 mmol/L Tris-MES緩沖液,內(nèi)含10 mol/L果糖-6- 磷酸,5 mmol/L醋酸鎂,5 mmol/L DTT),0.1 ml UDPG和0.05 ml透析后的酶液,補水至1 ml,于30℃水浴中反應(yīng)10 min后,沸水浴3 min終止反應(yīng)。

    向各反應(yīng)試管中加入2 mol/L NaOH 0.1 ml,沸水浴10 min后,冷卻至室溫。加30%HCl 3.5 ml,0.1%間苯二酚1 ml,搖勻后于80℃保溫10 min,冷卻后于480 nm波長處比色,測定蔗糖生成的量。代入公式計算蔗糖磷酸合成酶活性,單位用蔗糖mg/gFW·min表示。

    1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析

    采用Excel和DPS軟件進行數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 鉬酸鈉浸種薯對馬鈴薯幼苗地上部和地下部干重及壯苗指數(shù)的影響

    圖1至圖3顯示,在出苗后5~25 d,鉬酸鈉濃度低于2.0 mg/L(即T3)時,馬鈴薯幼苗地上部、地下部干重及壯苗指數(shù)均隨鉬酸鈉濃度的增加和時間的推移而提高。當(dāng)鉬酸鈉濃度為5.0 mg/L(T4)時,幼苗地上部、地下部干重及壯苗指數(shù)在不同時期與T3處理相比均呈下降趨勢,說明

    2.2 鉬酸鈉浸種薯對馬鈴薯幼苗葉片葉綠素含量的影響

    2.3 鉬酸鈉浸種薯對馬鈴薯幼苗根系活力的影響

    2.4 鉬酸鈉浸種薯對馬鈴薯幼苗葉片蔗糖、淀粉和還原糖含量的影響

    3 小結(jié)

    鉬是植物必需的微量元素,鉬在植物體內(nèi)有多種生理功能,鉬對植物體內(nèi)的其他代謝活動也有一定的影響。本試驗結(jié)果表明,適量鉬酸鈉浸種薯即濃度為2.0 mg/L 左右時,在出苗后5~25 d內(nèi),能有效地增強幼苗的葉綠素含量和根系活力,提高壯苗指數(shù),從而改善幼苗質(zhì)量。

    適量鉬酸鈉浸種薯能促進馬鈴薯葉片中蔗糖的合成、轉(zhuǎn)化與運輸,提高葉片中蔗糖、還原糖及淀粉含量。在出苗后5~25 d內(nèi),葉片中的淀粉、蔗糖均呈現(xiàn)上升趨勢,還原糖含量呈下降趨勢,但變化緩慢,表明在苗后25 d內(nèi),光合作用加強,光合產(chǎn)物輸出量有限,葉中淀粉、蔗糖均有所積累。

    適量鉬酸鈉浸種薯對根系活力有一定的促進作用,從而增強吸收能力,增加地上部養(yǎng)分和水分的供應(yīng)量,有利于馬鈴薯植株建成,在一定程度上能夠提高光合產(chǎn)物的形成與轉(zhuǎn)化。本試驗與萬美亮等[2]用鉬酸銨拌種提高花生種子和幼苗的呼吸強度和根系活力試驗結(jié)果相符。

    參 考 文 獻:

    [1] 徐根娣,劉 鵬,任鈴鈴.鉬在植物體內(nèi)生理功能的研究綜述[J].浙江師范大學(xué)(自然科學(xué)版),2001,24(3):292-297.

    [2] 萬美亮,吳生桂,田廷亮,等.鉬酸銨拌種對花生早期生理和固氮能力的影響[J].中國油料作物學(xué)報,1993,2:60-62.

    [3] 謝慶華,吳毅歆.馬鈴薯品種營養(yǎng)成分分析測定[J].云南師范大學(xué)學(xué)報,2002,2(22):53-55.

    [4] 王煥強.馬鈴薯在青海的利用現(xiàn)狀與開發(fā)途徑[J].馬鈴薯雜志,1992,6(3):188-189.

    [5] 門福義,劉夢云.馬鈴薯栽培生理[M].北京:中國農(nóng)業(yè)出版社,1993,7-13,313-323.

    [6] Maso B,Moorp C B.Priciples of geochemistry[M].New York:Wiley,1982.

    [7] Coughland M P(ed).Molybdenum and molybdenum-containing enzymes[M].New York:Pergamon,1980.

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    [9] Stiefel E L.Molybdenum bolsters the bioinorganic bridge[J]. Science,1996,272(5268):1599-1600.

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    [11]喻 敏.冬小麥不同基因型的鉬效率及其生理基礎(chǔ)[D].武漢:華中農(nóng)業(yè)大學(xué),2000.

    [12]Johnson J L, Wadman S K. In:Scriver C R(eds).The metabolism basis of inherited disease (6th)[C].New York:McGraw-Hill Book Co., 1989,1463-1475.

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