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    利用雙雜交系統(tǒng)篩選并鑒定與GPR30相互作用的蛋白

    2013-04-07 11:34:49蕾,常宏,徐
    河北醫(yī)科大學學報 2013年4期
    關鍵詞:雙雜交哺乳動物文庫

    張 蕾,常 宏,徐 東

    (1.首都醫(yī)科大學宣武醫(yī)院心臟中心,北京100053;2.河北醫(yī)科大學基礎課教學部生物化學教研室,河北石家莊050091)

    ·論 著·

    利用雙雜交系統(tǒng)篩選并鑒定與GPR30相互作用的蛋白

    張 蕾1,常 宏2*,徐 東1

    (1.首都醫(yī)科大學宣武醫(yī)院心臟中心,北京100053;2.河北醫(yī)科大學基礎課教學部生物化學教研室,河北石家莊050091)

    目的篩選并鑒定與GPR30相互作用的蛋白,為GPR30蛋白亞細胞定位和功能研究提供線索。方法應用酵母雙雜交技術,構建誘餌表達載體Pgbk/GPR30,與人卵巢互補DNA(complementary DNA,cDNA)文庫共轉化酵母菌AH109,篩選陽性克隆并測序。利用哺乳動物雙雜交系統(tǒng)驗證GPR30與候選蛋白的相互作用。結果從人卵巢cDNA文庫中篩選出4個與GPR30結合的蛋白基因,分別是小G蛋白Rab8a、Rab40a、NM23-H2和TACC3。其中,小G蛋白Rab8a、Rab40a與GPR30的相互作用在哺乳動物雙雜交系統(tǒng)中得到驗證。結論小G蛋白Rab8a和Rab40a可能參與了GPR30細胞內(nèi)轉運或與GPR30參與的信號轉導有關。

    受體,雌激素;雙雜交系統(tǒng)技術;卵巢

    雌激素是一種重要的內(nèi)分泌激素,尤其對維持女性多種器官的生理功能具有不可替代的作用,并與乳腺癌、卵巢癌、子宮內(nèi)膜癌的發(fā)生發(fā)展密切相關。在細胞分子水平上,雌激素的作用是通過細胞內(nèi)雌激素受體(estrogen receptor,ERα)介導的。ERα與ERβ作為轉錄調節(jié)因子的功能已被廣泛研究。但20世紀90年代,一種新型的ER即G蛋白耦聯(lián)受體30(G protein-coupled receptor 30,GPR30)被數(shù)個研究團隊相繼分離出來。GPR30在不表達ER與ER的靶器官中參與對雌激素的生理反應,并且與乳腺癌、宮頸癌等惡性腫瘤的發(fā)生發(fā)展有關[1-4]。但是,目前對GPR30的功能尚不十分明確,尤其是亞細胞功能定位與參與的信號轉導途徑仍有很大爭議[5-7]。為此,本研究結合酵母雙雜交與哺乳動物雙雜交系統(tǒng),從人卵巢cDNA文庫中篩選與GPR30相互作用的蛋白,旨在為進一步研究GPR30功能提供線索。

    1 材料與方法

    1.1 材料:大腸桿菌JM109為河北醫(yī)科大學基礎課教學部生物化學教研室保存。酵母菌株AH109,營養(yǎng)缺陷培養(yǎng)基,pGBK質粒與matchmaker人卵巢cDNA蛋白表達文庫為Clontech公司產(chǎn)品。CheckMate Mammalian Two-Hybrid System與Dual-Luciferase Reporter Assay System購自Promega公司。DNA重組所用限制性內(nèi)切酶,T4DNA連接酶,PCR相關試劑,膠回收試劑盒及質粒提取試劑盒均購自TAKARA公司。細胞培養(yǎng)用DMEM培養(yǎng)基及胎牛血清,轉染試劑lipofectamine2000購自Invitrogen。HEK293細胞株為贈送。引物合成及測序由華大基因公司完成。

    1.2 方法

    1.2.1 誘餌質粒的構建與鑒定:PCR擴增GPR30全長,上下游引物5′端分別引入EcoRI與BamHI位點。PCR產(chǎn)物經(jīng)回收與pGBKT7載體同時用EcoRI與BamHI雙酶切。酶切產(chǎn)物回收后以T4DNA連接酶連接。重組質粒pGBK-GPR30以測序鑒定。

    1.2.2 誘餌蛋白毒性和自激活檢測:將空質粒pGBKT7與重組質粒pGBKT7-GPR30分別轉化酵母AH109細胞,SD/-Trp缺陷培養(yǎng)基30℃培養(yǎng)72h。挑取單克隆菌落至液體SD/-Trp培養(yǎng)基30℃振蕩培養(yǎng)24h,比較兩者光密度600(optical density 600,OD600)值,明確GPR30蛋白對酵母菌株AH109有無毒性。將pGBKT7-GPR30質粒轉化AH109細胞,再將轉化的細胞分別鋪在不同的缺陷培養(yǎng)板SD/-Trp、SD/-His/-Trp、SD/-Ade/-Trp上,30℃96h觀察酵母生長情況。

    1.2.3 人卵巢cDNA文庫篩選:將等量的pGBKT7-GPR30質粒與文庫質粒共同轉化AH109細胞,轉化產(chǎn)物鋪在50個直徑150mm的SD/-Ade/-His/-Leu/-Trp缺陷培養(yǎng)板上,30℃培養(yǎng)至克隆出現(xiàn)(6~9d)。

    1.2.4 陽性文庫質粒的分離:利用酵母質粒提取試劑盒提取酵母質粒,氯化鈣法轉化JM109大腸桿菌感受態(tài)細胞,鋪LB/Amp板,提取陽性菌落質粒。

    1.2.5 陽性質粒的酶切分類和再驗證;將篩選出的陽性質粒,用內(nèi)切酶HindⅢ酶切并進行電泳,將相對分子質量一致的質粒歸為一組。每組選取1個質粒與pGBKT7-GPR30質粒以一對一方式再次轉化AH109細胞,在SD/-Ade/-His/-Trp缺陷培養(yǎng)板上驗證。驗證陽性者送測序。測序結果利用美國國家生物技術信息數(shù)據(jù)庫進行同源性比對。

    1.2.6 利用哺乳動物雙雜交系統(tǒng)驗證:GPR30與候選蛋白的相互作用PCR擴增GPR30全長,上下游引物5′端分別引入BamHI與KpnI位點。PCR產(chǎn)物經(jīng)回收與pBIND載體同時用BamHI與KpnI雙酶切。酶切產(chǎn)物回收后以T4DNA連接酶連接。以同樣方法將候選基因插入pACT質粒中。將GPR30-pBIND與候選基因-pACT質粒共轉染HEK293細胞,按照Dual-luciferase reporter assay system說明書進行操作,檢測熒光素酶報告基因活性。

    2 結 果

    2.1 重組質粒的構建與鑒定:重組質粒經(jīng)EcoRI與BamHI酶切,有約1120bp片段插入(圖1)。測序表明插入片段與GPR30開放閱讀框序列完全相符,無堿基突變和缺失,插入方向正確,未發(fā)生讀碼框架改變。

    2.2 誘餌蛋白的毒性和自激活檢測:pGBKTGPR30與pGBKT7轉化的AH109酵母細胞培養(yǎng)24h后,OD600分別為1.033與1.041,表明誘餌蛋白對AH108細胞無明顯毒性。

    對照pGBKT7-GPR30轉化的AH109酵母細胞在SD/-Trp培養(yǎng)板上的生長情況,在SD/-His/-Trp和SD/-Ade/-Trp培養(yǎng)板上無克隆生長,證明pGBKT-GPR30質粒對報告基因無自激活作用(圖2)。

    2.3 文庫篩選及陽性克隆鑒定:pGBKT-GPR30與人卵巢cDNA文庫共轉化AH109酵母細胞后,在SD/-Ade/-His/-Leu/-Trp缺陷培養(yǎng)基上獲得46個克隆。全部克隆經(jīng)酵母質粒提取后,再在大腸桿菌JM109中擴增。將46個質粒以HindⅢ酶切并進行電泳。相同大小的酶切片段視為同一插入片段。這樣,共得到8組陽性克隆質粒。將這8個質粒與pGBKT-GPR30一對一轉化AH109細胞進一步排除假陽性,最終得到6個陽性克?。▓D3)。測序及比對結果表明,有2個為線粒體蛋白,是常見的假陽性序列。其余4個克隆,分別編碼Rab8a、Rab40a、GGA3和TACC3蛋白,做進一步鑒定(圖4)。

    2.4 陽性克隆的哺乳動物雙雜交鑒定:將Rab8a、Rab40a、GGA3和TACC3編碼序列插入pACT載體,與GPR30-pBIND載體共轉染HEK293細胞,檢測細胞中螢火蟲熒光素酶含量表明,Rab8a和Rab40a攜帶的報告基因成功激活螢火蟲熒光素酶表達(圖5)。

    3 討 論

    GPR30可與雌激素特異性結合并介導環(huán)磷酸腺苷活化,但其作用模式和效應與ER不同,且與ER沒有同源性[8]。同時,GPR30具有經(jīng)典的7次跨膜結構,屬G蛋白耦聯(lián)受體家族。因此,可視為一種新型的雌激素膜性受體。但是,還未揭示GPR30是如何參與惡性腫瘤的發(fā)生發(fā)展過程,甚至其亞細胞定位仍存在很大爭議。有報道[5]指出,在共聚焦顯微鏡下觀察到綠色熒光蛋白標記的GPR30主要集中在COS-7細胞的內(nèi)質網(wǎng)中。但亦有報道[9]指出HEK293細胞中GPR30表達在細胞膜上。本實驗利用酵母和哺乳動物雙雜交系統(tǒng)成功地篩選到2個可能的GPR30相互作用蛋白,Rab8a和Rab40a,為進一步研究GPR30的亞細胞定位和參與的信號途徑提供了線索。Rab蛋白是小分子三磷酸鳥苷結合蛋白家族中最大的亞家族。在人類已經(jīng)發(fā)現(xiàn)超過60余種Rab蛋白,它們廣泛參與細胞內(nèi)囊泡的運輸,調節(jié)生物體內(nèi)各種蛋白在細胞內(nèi)外的正確運輸和分配[10]。其中Rab8更是被報道參與GPCR從內(nèi)質網(wǎng)到細胞膜的定向運輸[11]。而Rab40,至今并沒有深入的細胞功能研究。我們推測,或許Rab8和Rab40在不同細胞和組織的表達差異,造成了GPR30在不同的細胞模型中有不同的亞細胞定位。本實驗利用酵母雙雜交與哺乳動物雙雜交系統(tǒng)相結合的方法,對尋找結構復雜蛋白的相互作用蛋白進行了探索。在酵母雙雜交系統(tǒng)中,由于蛋白質表達在酵母細胞中,往往不能象在哺乳動物細胞中進行正確的三維折疊和翻譯后修飾,從而易造成假陽性。因此,酵母雙雜交的結果通常要進行免疫共沉淀等實驗進一步確認。而GPR30屬7次跨膜結構蛋白,存在大量的疏水區(qū),在相對溫和的細胞裂解液中不易溶解。在含有較強變性劑的細胞裂解液中,蛋白質與蛋白質的相互作用又容易被破壞。因此,利用免疫共沉淀驗證多次跨膜受體的相互作用蛋白易造成假陰性。因此,在設計本實驗時,我們利用哺乳動物雙雜交系統(tǒng)做進一步驗證。哺乳動物雙雜交系統(tǒng)具有與酵母雙雜交系統(tǒng)相同的作用原理,但是蛋白在哺乳動物細胞中表達,其構象和修飾接近生理狀態(tài),容易排除假陽性[12]。本實驗中,NM23-H2和TACC3由于無法在哺乳動物雙雜交系統(tǒng)中得到證明而被排除。

    綜上所述,本實驗成功鑒定出與GPR30相互作用的2個蛋白——同屬小G蛋白家族的Rab8和Rab40,為進一步研究GPR30在細胞內(nèi)的轉運提供了線索。(本文圖見封二)estrogen receptor,GPR30,with breast tumor metastasis and transactivation of the epidermal growth factor receptor[J].Steroids,2008,73(9/10):870-873.

    [2]FILARDO EJ,GRAEBER CT,QUINN JA,et al.Distribution of GPR30,a sevenmembrane-spanning estrogen receptor,in primary breast cancer and its association with clinicopathologic determinants oftumor progression[J].Clin Cancer Res,2006,12(21):6359-6366.

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    (本文編輯:趙麗潔)

    [1]FILARDO EJ,QUINN JA,SABO E.Association of themembrane

    SCREENING OF GPR30 INTERACTING PROTEINS BY TWO-HYBRID SYSTEM

    ZHANG Lei1,CHANG Hong2*,XU Dong1
    (1.Department of Cardiology,Xuanwu Hospital,Capital Medical University,Beijing 100053,China;2.Department of Biochemistry,the School of Basic Medical Sciences,Hebei Medical University,Shijiazhuang 050091,China)

    receptors,estrogen;two-hybrid system techniques;ovary

    R349.81

    A

    1007-3205(2013)04-0378-03

    2013-02-25;

    2013-04-02

    張蕾(1974-),女,湖北武漢人,首都醫(yī)科大學宣武醫(yī)院主治醫(yī)師,醫(yī)學碩士,從事影像學及細胞生物學診斷研究。

    *通訊作者。E-mail:ch720321@126l.com

    10.3969/j.issn.1007-3205.2013.04.003

    【關鍵詞】ABSTRACT:ObjectiveTo screen and identify the GPR30 interacting proteins and provide clues for GPR30 protein subcellular localization and cellular function.M ethodsThe bait expression vector pGBK/GPR30 was constructed and co-transformed with human ovarian cDNA library into yeast AH109 cells for yeast two-hybrid screening.Candidate interacting proteins were confirmed by mammalian twohybrid system.ResultsThe genes coding for four proteins that can bind to GPR30 were selected from human ovarian cDNA library,small G proteins Rab8a,Rab40a,NM23-H2 and TACC3.And the interaction between GPR30 and small G proteins Rab8a,Rab40awas confirmed bymammalian two-hybrid system.Conclusion Small G proteins Rab8a and Rab40amay be involved in the intracellular transport of GPR30 or GPR30 mediated signal transduction by direct interaction.

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