印文靜,顏海華,馮亞松,田 潔,王勝軍 (.江蘇省泰州市第四人民醫(yī)院,江蘇 泰州 5300;.江蘇大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)與醫(yī)學(xué)技術(shù)學(xué)院,江蘇 鎮(zhèn)江 03)
細(xì)胞培養(yǎng)是現(xiàn)代生物醫(yī)學(xué)的重要技術(shù)之一,在細(xì)胞生物學(xué)、生物化學(xué)、臨床檢驗(yàn)學(xué)等領(lǐng)域應(yīng)用較為廣泛,成為闡釋生命現(xiàn)象、發(fā)病機(jī)理和篩選藥物的重要手段,已成為醫(yī)藥生物技術(shù)產(chǎn)業(yè)的重要部分之一[1]。差速貼壁法由Kreider和Pleasure等較早報(bào)道[2]。該方法更加便于研究者簡便探索細(xì)胞特別是胚胎干細(xì)胞誘導(dǎo)分化的機(jī)制,并有利于對結(jié)果進(jìn)行精確、快速的檢測。因此通過單層貼壁誘導(dǎo)途徑進(jìn)行細(xì)胞的培養(yǎng)、分化的研究報(bào)道越來越多[2]。本文對近年來采用差速貼壁法培養(yǎng)動(dòng)物及人細(xì)胞的文獻(xiàn)進(jìn)行綜述如下。
胚胎干細(xì)胞是具有自我更新和多向分化能力的一類增殖旺盛的細(xì)胞,具有向機(jī)體各種組織細(xì)胞分化的潛能[3]。徐超等運(yùn)用差速貼壁法分離鼠纖維母細(xì)胞(MEF)和小鼠胚胎干細(xì)胞(ES)[4],實(shí)驗(yàn)不但找到了分離MEF和ES的最佳時(shí)間(約1.5 h),而且結(jié)果還顯示,差速貼壁后的GD3細(xì)胞仍然擁有保持其干細(xì)胞的全能性,其單克隆的形成率也和差速貼壁前的GD3細(xì)胞無顯著差異,在很大程度上為差速貼壁法在干細(xì)胞分化中的應(yīng)用提供了有力的實(shí)驗(yàn)證明。李甫強(qiáng)等運(yùn)用差速貼壁法分離純化綠色熒光蛋白(GFP)轉(zhuǎn)基因小鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞[5]。實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,隨著首次換液時(shí)間的延長,貼壁細(xì)胞密度增多,BMSCs的比例減少。首次換液時(shí)間在接種后2 h的細(xì)胞純度高,但細(xì)胞密度低;24 h后的細(xì)胞密度高而純度低;8 h后的細(xì)胞密度大具有較高的純度,傳代后的GFP轉(zhuǎn)基因小鼠BMSCs能穩(wěn)定表達(dá)GFP。傅淑平等采用差速貼壁法觀察梓醇對SD大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞增殖及骨向分化的影響[6]。結(jié)果表明,梓醇具有促BMSCs增殖及骨向分化的作用。而所采用的差速貼壁法為實(shí)驗(yàn)提供了較好的技術(shù)手段。劉虎仙等重復(fù)利用Ⅳ型膠原以差速貼壁法分選表皮干細(xì)胞[7],研究表明,利用快速貼壁法可以得到較高純度的表皮干細(xì)胞,合理回收利用Ⅳ型膠原以快速貼壁法分選表皮干細(xì)胞是一種實(shí)用而經(jīng)濟(jì)的方法。丁維進(jìn)等運(yùn)用改良的差速貼壁法分離肌源干細(xì)胞[8],研究結(jié)果提示應(yīng)用改良的差速貼壁法和有限稀釋技術(shù)可以分離得到小鼠來源肌源干細(xì)胞及其克隆集落。
袁軍等探討差速貼壁法從早期人胚股骨分離、純化骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(BMSCs)的可行性,并觀察培養(yǎng)細(xì)胞是否向神經(jīng)元樣細(xì)胞誘導(dǎo)分化[9]。研究結(jié)果表明,原代培養(yǎng)第3天可見塑料培養(yǎng)瓶內(nèi)有長梭形細(xì)胞生長,至第10天前后形成集落樣克隆,傳至第4代后呈單層漩渦狀排列的長梭形的成纖維樣細(xì)胞,已無明顯細(xì)胞克隆形成,經(jīng)多次傳代,細(xì)胞保持良好的增殖能力和穩(wěn)定的性狀;免疫細(xì)胞化學(xué)方法顯示未誘導(dǎo)細(xì)胞神經(jīng)元烯醇化酶、神經(jīng)巢蛋白、膠質(zhì)纖維酸性蛋白陰性,誘導(dǎo)后細(xì)胞神經(jīng)元烯醇化酶、神經(jīng)巢蛋白呈陽性,膠質(zhì)纖維酸性蛋白陰性,間接證實(shí)培養(yǎng)所得細(xì)胞是BMSCs。他們認(rèn)為差速貼壁培養(yǎng)法從早期人胚股骨中分離純化BMSCs,去除可能的成纖維細(xì)胞污染,是簡便有效的,可供有關(guān)研究參考選擇。
田鋒等采用經(jīng)改良的取材和差速貼壁法培養(yǎng)純化嗅SD大鼠黏膜嗅鞘細(xì)胞(OECs)[10],以探求更加簡單、高效的嗅黏膜OECs取材和培養(yǎng)純化方法。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,體外培養(yǎng)的嗅黏膜OECs形態(tài)主要有扁圓形或油煎蛋形、梭形或雙極、多突起形,培養(yǎng)14 d嗅黏膜OECs純度為85%,嗅黏膜OECs最長可以存活35 d。研究認(rèn)為,采用改良的取材和差速貼壁法培養(yǎng)、純化的嗅黏膜OECs,方法簡單、高效,培養(yǎng)的嗅黏膜OECs的純度可以達(dá)到細(xì)胞移植的要求。李玉安等探討單次差速貼壁法純化培養(yǎng)成年大鼠嗅球嗅鞘細(xì)胞的可行性,實(shí)驗(yàn)通過18 h單次差速貼壁法純化培養(yǎng)的嗅鞘細(xì)胞經(jīng)NGFRp75免疫熒光鑒定后,純度可達(dá)70% ~80%,形態(tài)上以雙極和三極細(xì)胞為主,伴有少許單極及多極細(xì)胞[11]。研究結(jié)果表明,應(yīng)用18 h單次差速貼壁法純化培養(yǎng)嗅鞘細(xì)胞是一種簡便、穩(wěn)定、經(jīng)濟(jì)、快捷的方法。
王斌等采用不同純化方法原代培養(yǎng)人胚嗅球嗅鞘細(xì)胞(OECs)[12],以差速貼壁法為基礎(chǔ)結(jié)合阿糖胞苷法、無血清饑餓法和間斷神經(jīng)營養(yǎng)因子3(NT3)法純化培養(yǎng)人胚嗅球OECs,觀察不同純化方法下OECs生長變化,采用免疫細(xì)胞化學(xué)染色進(jìn)行純度鑒定。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,差速貼壁結(jié)合間斷NT3法可獲得高純度狀態(tài)良好的OECs,是一種簡單實(shí)用的OECs純化培養(yǎng)方法。
李辰運(yùn)等采用密度梯度離心法分離培養(yǎng)大鼠骨髓血管內(nèi)皮祖細(xì)胞[13],于包被人纖連蛋白的25 ml培養(yǎng)瓶中貼壁培養(yǎng),收集48 h后的未貼壁細(xì)胞培養(yǎng)至第7天,實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,差速貼壁法是獲得穩(wěn)定、高純度的內(nèi)皮祖細(xì)胞培養(yǎng)方法。
李建輝等利用免疫組化、免疫熒光及流式細(xì)胞術(shù)對培養(yǎng)的人臍血內(nèi)皮祖細(xì)胞進(jìn)行鑒定,建立一種內(nèi)皮祖細(xì)胞的培養(yǎng)方法[14],研究也同樣表明,差速貼壁法培養(yǎng)內(nèi)皮祖細(xì)胞的經(jīng)濟(jì)、可靠、穩(wěn)定。
陳振兵等采用Ⅺ型膠原酶和胰蛋白酶消化法及差速貼壁法分離細(xì)胞獲取小鼠肌源性干細(xì)胞,進(jìn)行體外原代和傳代培養(yǎng)[15]。實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,采用差速貼壁法可從失神經(jīng)骨骼肌內(nèi)分離出肌源性干細(xì)胞,體外培養(yǎng)的肌源性干細(xì)胞具有良好的增殖能力,適用于組織工程和基因治療。孫浩林等采用胰蛋白酶、Ⅱ型膠原酶先后消化Wistar大鼠椎間盤髓核組織,差速貼壁法分離純化大鼠腰椎間盤髓核細(xì)胞[16]。研究結(jié)果表明,原代培養(yǎng)、兩次差速貼壁法分離純化的大鼠髓核細(xì)胞代謝旺盛、表型一致。張群等將人毛囊外根鞘細(xì)胞(HHORSC)接種在Ⅸ型膠原涂被的培養(yǎng)皿上進(jìn)行黏附分選,試驗(yàn)組細(xì)胞和對照組細(xì)胞分別進(jìn)行K15、β1-整合素、外皮蛋白免疫熒光和流式細(xì)胞術(shù)檢測細(xì)胞超微結(jié)構(gòu)并測定克隆形成率[17]。研究結(jié)果表明試驗(yàn)組 K15和β1-整合素的表達(dá)分別為(70.1±6.7)% 和(82.4±9.3)%,對照組相應(yīng)為(32.1±8.9)% 和(30.3±1.3)%,外皮蛋白兩組間的表達(dá)為(26.7±8.6)%和(79.2±15.3)%,兩組間差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。研究認(rèn)為差速貼壁法可初步分選、純化人毛囊干細(xì)胞。
采用差速貼壁法進(jìn)行細(xì)胞培養(yǎng)具有經(jīng)濟(jì)、可靠、速度快、不用抗有絲分裂藥物抗血清和補(bǔ)體等優(yōu)點(diǎn),在動(dòng)物及人組織細(xì)胞的培養(yǎng)上具有廣泛用途。但由于該方法本身的缺陷,成纖維細(xì)胞含量高于其他方法,在使用該方法培養(yǎng)細(xì)胞時(shí)需多加注意。但我們相信該方法將在以后的應(yīng)用會(huì)越來越廣泛。
[1] 李 常,葛正行,李 波.大鼠氣道成纖維細(xì)胞的分離、培養(yǎng)及鑒定[J]. 吉林醫(yī)學(xué),2012,33(19):4043.
[2] Kreider B Q,Messing A,Doan H,et al.Enrichment of schwann cell cultures from neonatal rat sciatic nerve by differential adhesion[J].Brain Res,1981,207(2):433.
[3] 胡一新,黃 璟.小鼠胚胎干細(xì)胞飼養(yǎng)層的制備[J].吉林醫(yī)學(xué),2009,30(9):778.
[4] 徐 超,黃華榮,俞 宏,等.分離MEF和ES細(xì)胞的差速貼壁法研究[J].分子細(xì)胞生物學(xué)報(bào),2006,39(5):477.
[5] 李甫強(qiáng),周鴻鷹,羊惠君,等.差速貼壁法純化分離GFP轉(zhuǎn)基因小鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞[J].四川大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版),2006,37(2):301.
[6] 傅淑平,張榮華.不同濃度梓醇對SD大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞增殖及骨向分化的影響[J].時(shí)珍國醫(yī)國藥,2012,23(10):2398.
[7] 劉虎仙,賈赤宇,付小兵,等.重復(fù)利用IV型膠原以差速貼壁法分選表皮干細(xì)胞[J].中國臨床康復(fù),2006,10(13):38.
[8] 丁維進(jìn),唐 乙,宋艷玲,等.應(yīng)用改良差速貼壁法和有限稀釋技術(shù)分離培養(yǎng)小鼠來源肌源干細(xì)胞[J].中國組織工程研究與臨床康復(fù),2011,15(36):6797.
[9] 袁 軍,單立冬,楊天明,等.差速貼壁法分離培養(yǎng)早期人胚骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞[J].東南大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版),2005,24(4):218.
[10] 田 鋒,姜曙祥,賀西京,等.經(jīng)改良的取材和差速貼壁法培養(yǎng)純化嗅黏膜嗅鞘細(xì)胞[J].細(xì)胞與分子免疫學(xué)雜志,2009,25(12):1189.
[11] 李玉安,徐華梓,李萬里.單次差速貼壁法純化培養(yǎng)大鼠嗅神經(jīng)鞘細(xì)胞的實(shí)驗(yàn)研究[J].實(shí)用醫(yī)學(xué)雜志,2009,25(10):1562.
[12] 王 斌,賀西京,歷 強(qiáng),等.不同純化方法體外培養(yǎng)人胚嗅球嗅鞘細(xì)胞[J].四川大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版),2008,39(6):1023.
[13] 李辰運(yùn),陳劍秋,孫晉津,等.差速貼壁法培養(yǎng)大鼠骨髓內(nèi)皮祖細(xì)胞的實(shí)驗(yàn)研究[J].天津醫(yī)藥,2011,39(4):353.
[14] 李建輝,初少莉,姬開達(dá),等.差速貼壁法體外培養(yǎng)人臍血內(nèi)皮祖細(xì)胞的實(shí)驗(yàn)研究[J].中華高血壓雜志,2005,16(5):450.
[15] 陳振兵,洪光祥,陳燕花,等.差速貼壁法體外培養(yǎng)失神經(jīng)骨骼肌肌源性干細(xì)胞的生物學(xué)特性[J].中國臨床康復(fù),2006,10(33):7.
[16] 孫浩林,李淳德.原代培養(yǎng)差速貼壁法分離純化大鼠腰椎間盤髓核細(xì)胞[J].中國組織工程研究與臨床康復(fù),2011,15(46):8569.
[17] 張 群,楊光輝,叢 笑,等.差速貼壁法分選人毛囊干細(xì)胞的研究[J].中華實(shí)驗(yàn)外科學(xué)雜志,2006,23(6):755.