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    阿米卡星對小鼠內(nèi)耳水通道蛋白4表達的影響*

    2013-01-11 01:31:12陳觀貴徐亞麗毛敏丘理子
    聽力學及言語疾病雜志 2013年6期
    關鍵詞:米卡內(nèi)耳耳蝸

    陳觀貴 徐亞麗 毛敏 丘理子

    水通道蛋白(aquaporin,AQP)是一種存在于細胞膜、調(diào)節(jié)細胞內(nèi)外離子滲透壓的蛋白通道,對于包括神經(jīng)細胞在內(nèi)的各種組織細胞的水和電解質(zhì)平衡起到關鍵作用。在腦水腫、神經(jīng)炎、青光眼、癲癇、腫瘤、疼痛、肥胖、梅尼埃病等疾病治療中有良好的前景[1,2]。 目前已在哺乳動物體內(nèi)發(fā)現(xiàn)13種AQP亞型,即AQP 0~12,其中AQP1~7和AQP 9表達于內(nèi)耳[1,3]。氨基糖苷類抗生素(aminoglycoside antibiotics,AmAn)具耳毒性、腎毒性等副作用,但AmAn 的致聾機制仍未完全闡明。研究證明AmAn 可以下調(diào)腎組織AQP的表達從而導致腎濃縮功能下降[4],為了解AmAn是否也會影響內(nèi)耳AQP4 的表達,進而導致聽力損失,本研究擬通過對小鼠皮下注射阿米卡星后,檢測其內(nèi)耳AQP4蛋白及基因的表達變化,探討AQP4在阿米卡星耳毒性機制中的可能作用。

    1 材料與方法

    1.1實驗動物及分組 60只CBA/CaJ 小鼠,體重200~250 g,檢查外耳道通暢,鼓膜標志正常,對聲刺激反應靈敏。實驗動物編號后應用隨機數(shù)字表法隨機分為實驗組(皮下注射阿米卡星)和對照組(皮下注射等量生理鹽水),每組30只,其中各組用于耳蝸切片免疫組化檢測6只, Westen Blots檢測12只、RT-PCR檢測12只。

    1.2阿米卡星耳毒性模型的建立 實驗組動物根據(jù)前期實驗建立的耳毒性模型[5],采用阿米卡星皮下注射,450 mg/kg,每天1次,共14 d。對照組動物皮下注射等量重理鹽水。注射前和注射14 d后均行雙耳ABR檢測,證實致聾效果。于第二次行ABR檢測后即取耳蝸標本。

    1.3耳蝸切片制備及免疫組織化學染色 動物以1%戊巴比妥(50 mg/kg)腹腔注射深度麻醉,解剖暴露心臟,依次用4 ℃生理鹽水、4 ℃固定液(4%多聚甲醛磷酸鹽緩沖液,pH=7.4)灌流??焖贁囝^,取出雙側聽泡, 冰浴下解剖耳蝸組織,固定液中4 ℃過夜。放入10% EDTA鈉溶液(pH=7.4)中脫鈣14 d。石蠟包埋,取蝸軸平行切面連續(xù)切片,片厚約5 μm。耳蝸中軸切片,行免疫組織化學染色[5],觀察小鼠內(nèi)耳AQP4的表達,棕黃色為陽性表達細胞。

    1.4Western Blot檢測AQP4蛋白表達 小鼠麻醉后剪開右心耳流出血液,快速斷頭并打開聽泡,置入PBS溶液中,冰浴下在解剖顯微鏡下分離耳蝸組織(以每只動物的雙耳為一個計量單元),冰浴裂解組織后,13 000 rpm,40 ℃離心10 min,取上清,測定蛋白濃度。用 10 %的SDS-PAGE分離膠電泳,將蛋白分離產(chǎn)物轉移至 PVDF 膜上,添加多克隆AQP4抗體(Chemicon公司,美國),4 ℃過夜,添加二抗(羊抗兔 IgG-HRP,santa cruz,美國)室溫下溫育90 min,用ECL系統(tǒng)顯色曝光。以β-actin 為對照。

    1.5逆轉錄-聚合酶鏈反應(RT-PCR)檢測AQP4 mRNA表達 小鼠過量麻醉致死,70%酒精浸濕動物全身毛發(fā),斷頭,冰浴下解剖聽泡取出內(nèi)耳組織(以每只動物的雙耳為一個計量單元)。提取總RNA,按照一步式逆轉錄試劑盒 (QIAGEN公司,美國) 說明進行RT-PCR,以β- act in 為內(nèi)參照。 反應條件:50 ℃逆轉錄30 min,95 ℃初始激活15 min,94 ℃變性50 s, 60 ℃退火50 s,72 ℃延伸60 s, 35次循環(huán),72 ℃最后延長10 min。AQP4引物上游序列為 5’-ATGGTGGCTTTCAAAGGGGT-3’,下游序列為5’GATGGGCCCAACCCAATATAT-3′,擴增片段長度為610 bp; B-actin 引物上游序列為 5’-ATCCTGCGTCT GGACCTGG- 3’,下游序列為5’-TAGGCATTTCTGGAGAT-3’,擴增片段長度為 365 bp。擴增產(chǎn)物用1.5% 的瓊脂糖凝膠電泳,在凝膠成像系統(tǒng)上成像記錄。

    1.6統(tǒng)計學方法 Western Blot及RT-PCR電泳圖像結果采用Image-Pro Plus軟件進行分析,分別用目標條帶與內(nèi)參條帶的平均灰度值比值作為產(chǎn)物相對含量。用SPSS13.0統(tǒng)計軟件進行獨立樣本t檢驗。

    2 結果

    2.1實驗組阿米卡星致聾情況 實驗組小鼠注射阿米卡星14 d后,ABR反應閾均大于75 dB SPL,證明達到藥物致聾效果。注射過程中沒有小鼠死亡。

    2.2AQP4在內(nèi)耳的表達定位 對照組及實驗組耳蝸組織切片中均見AQP4陽性表達細胞位于Corti器的支持細胞(Hansen細胞、Claudius細胞等),而蝸軸螺旋神經(jīng)節(jié)、耳蝸外側壁等部位均未見陽性染色細胞。實驗組的陽性染色較對照組弱(圖1)。

    圖1 對照組(a)和實驗組(b)小鼠耳蝸AQP4的表達 (免疫組化×200)

    2.3兩組小鼠耳蝸AQP4蛋白及mRNA的表達量 Western Blot檢測顯示,對照組和實驗組均顯示30 kDa處有陽性目標條帶,β-actin為內(nèi)參蛋白(40 kDa)(圖2);RT-PCR檢測顯示,對照組和實驗組均顯示610 bp處有陽性目標產(chǎn)物, β-actin為內(nèi)參基因(365 bp)(圖3)。統(tǒng)計分析顯示,對照組和實驗組AQP4蛋白相對含量分別為0.672±0.074和0.479±0.108,對照組高于實驗組,差異有統(tǒng)計學意義(t=-5.120,P<0.01)。對照組和實驗組的AQP4 mRNA相對含量分別為0.701±0.107和0.460±0.080,對照組高于實驗組,差異有統(tǒng)計學意義(t=-6.232,P<0.01)。

    圖2 Western Blot檢測小鼠耳蝸AQP4蛋白表達

    1為對照組,2為實驗組,30 kDa處有陽性目標條帶AQP4,β-actin為內(nèi)參蛋白(40 kDa)

    圖3 RT-PCR檢測小鼠耳蝸AQP4表達

    1為marker,2為對照組,3為實驗組,610 bp處有AQP4陽性目標產(chǎn)物,β-actin為內(nèi)參蛋白(365 bp)

    3 討論

    AQP4是AQP家族中影響水通透性最高的蛋白,在小鼠及大鼠內(nèi)耳表達的部位非常相似,主要定位于Hensen細胞的基側質(zhì)膜、Claudius細胞和內(nèi)溝細胞的基底側質(zhì)膜,前庭部分的斑和嵴、耳蝸神經(jīng)、前庭神經(jīng)的中樞部上皮也有AQP4[6,7]。此外,大鼠和小鼠的前庭感受器周圍的支持上皮、聽神經(jīng)周圍的神經(jīng)膠質(zhì)細胞也有AQP4表達[8]。從本研究結果看, AQP4在小鼠內(nèi)耳中主要定位于Corti器的支持細胞,蝸軸螺旋神經(jīng)節(jié)、耳蝸外側壁等部位均未見陽性染色細胞。人體標本的免疫組化染色表明AQP4表達于外溝細胞、Hensen細胞、Claudius細胞、前庭支持細胞及內(nèi)淋巴囊上皮[9~11]。AQP4在內(nèi)耳組織的表達定位提示其可能參與維持內(nèi)耳感覺上皮的水滲透平衡,并且種屬間AQP4表達的相似性和調(diào)節(jié)序列的保守性提示AQP4在內(nèi)耳的功能高度保守和穩(wěn)定作用。

    AQP4的正常表達是維持聽功能所必須的。在基因敲除物模型研究中,目前已有AQP1、3、4、5 亞型的敲基因小鼠模型,其中只有 AQP4 敲基因小鼠有聽力損失[6,8,12]。研究發(fā)現(xiàn),缺乏 AQP4 的CD1 基因背景小鼠ABR反應閾顯著增高,聽力減退呈現(xiàn)出頻率依賴性,但光鏡下耳蝸形態(tài)學未見任何異常[6]。Nicchia[13]發(fā)現(xiàn)人類基因中D184E點突變可導致AQP4通透性改變從而導致聽力損失。另外,AQP4 可能與老年性聾有關,Christensen等[14]研究老年性聾小鼠耳蝸及下丘腦的AQP4 變化情況,發(fā)現(xiàn)隨著年齡增長,耳蝸AQP4基因的表達下調(diào)。本研究同樣發(fā)現(xiàn),實驗組小鼠內(nèi)耳AQP4表達明顯低于對照組,但其表達異常未導致內(nèi)耳形態(tài)學的改變,而導致小鼠ABR反應閾提高,故推測其導致聽力損失最可能的原因是改變了內(nèi)耳細胞內(nèi)水循環(huán)及離子濃度梯度的穩(wěn)定,從而影響毛細胞、支持細胞的功能以及聽神經(jīng)通路的傳達性能。

    多種因素參與AQP 的調(diào)節(jié),包括類固醇激素、抗利尿激素、水潴留、腎上腺鹽皮質(zhì)激素、細胞因子、病理生理狀態(tài)等,同時某些藥物也可以通過影響AQP的表達而導致疾病的發(fā)生。AmAn、化療藥、利尿藥等藥物的耳毒性是臨床常見問題,藥物性聾仍是我國聾兒的重要致病原因;關于AmAn 耳毒性機制存在各種理論,如膜功能受損、藥物在內(nèi)耳的高濃度蓄積、內(nèi)環(huán)境穩(wěn)定機制破壞、細胞代謝抑制、氧自由基損傷等,目前認為是多種機制所致。Lee等[4]研究慶大霉素導致腎濃縮功能障礙的機制,發(fā)現(xiàn)慶大霉素可以明顯減少大鼠腎內(nèi)AQP2 蛋白的表達,高濃度時還會影響AQP1 和AQP3 的表達,順鉑[15,16]、兩性霉素B[17]導致的腎毒性中AQP也有類似的改變。本研究結果顯示實驗組AQP4的蛋白及mRNA的表達均低于對照組,提示阿米卡星可導致小鼠內(nèi)耳AQP4表達的下調(diào),這可能是阿米卡星耳毒性的機制之一,同時也提示AmAn類藥物的腎毒性及耳毒性可能存在相似的分子作用機制,值得深入研究。

    4 參考文獻

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