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    顱縫早閉癥相關(guān)實驗熒光定量PCR內(nèi)參基因的選擇研究

    2012-12-14 03:29:04楊嫻嫻JodieHatfieldSusanHinze穆雄錚PeterAndersonBarryPowell
    組織工程與重建外科雜志 2012年3期
    關(guān)鍵詞:內(nèi)參試劑盒標(biāo)本

    楊嫻嫻 Jodie T Hatfield Susan J Hinze 穆雄錚 Peter J Anderson Barry C Powell

    實時熒光定量PCR(RT-qPCR)作為檢測基因 表達(dá)譜的高通量、高精度的方法,在生物學(xué)研究中已得到廣泛應(yīng)用。采用穩(wěn)定的內(nèi)參基因?qū)Ψ磻?yīng)進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)化,可以增加該方法的敏感度、可重復(fù)性和動態(tài)范圍,理想的內(nèi)參基因在所研究的組織、細(xì)胞和實驗條件下均恒定表達(dá)。管家基因是維持細(xì)胞最低限度功能必不可少的基因,在所有類型細(xì)胞中都表達(dá),是廣泛應(yīng)用的內(nèi)參基因,如β-actin(肌動蛋白)、GAPDH(甘油醛-3-磷酸脫氫酶)、B2M(微球蛋白)及18S RNA等[1]。然而,很多研究表明,管家基因在不同組織、細(xì)胞以及不同條件下,表達(dá)量并非永遠(yuǎn)恒定,甚至差別很大,至今尚未發(fā)現(xiàn)在所有條件下均恒定表達(dá)的管家基因[2-4]。因此,對特定基因表達(dá)研究中候選管家基因的表達(dá)穩(wěn)定性進(jìn)行評價,篩選出最為穩(wěn)定的管家基因作為內(nèi)參,對于保證研究結(jié)果的真實可靠至關(guān)重要。目前已有不少相關(guān)的統(tǒng)計分析軟件,如 geNorm、Norm Finder、Bestkeeper等用于內(nèi)參基因的篩選[2,5-6]。

    目前,在顱骨成骨與顱縫閉合過程中基因表達(dá)的研究方面,RT-qPCR分析并未根據(jù)所研究組織細(xì)胞的種類或不同的實驗條件而選擇合適的內(nèi)參基因,多數(shù)仍簡單采用β-actin或GAPDH作為內(nèi)參。

    本實驗選擇與顱骨成骨、顱縫閉合相關(guān)的常用的3組實驗標(biāo)本,分別為:Fgfr2cC342Y/+小鼠顱縫組織、顱縫早閉患者體外培養(yǎng)顱縫原代細(xì)胞和體外培養(yǎng)的小鼠Kusa 4b 10成骨細(xì)胞株,以常用的候選管家基因作為研究對象,利用geNorm軟件對RT-qPCR結(jié)果進(jìn)行分析,以篩選出在不同組織細(xì)胞中表達(dá)最為穩(wěn)定的管家基因作為內(nèi)參。

    1 材料與方法

    1.1 主要試劑與儀器

    RNase ZAP、DEPC、 青鏈霉素、Alizarin Red S、Tris(Sigma-Aldrich 公司,美國);Trizol、SuperScriptTMⅢ逆轉(zhuǎn)錄試劑盒、FBS、α-MEM 培養(yǎng)液、10 mM dNTPs(Invitrogen 公司,美國);10× PCR Buffer、25 mM MgCl2、AmpliTaqGold DNA polymerase(Applied Biosystems公司,美國);KAPA SYBR FAST qPCR 試劑盒 (Kapa Biosystems公司,美國);geNormTM Housekeeping Gene Selection試劑盒(Primer Design公司,英國);其余試劑均為分析純。

    GeneAmp PCR System 9700基因擴(kuò)增儀(PE Applied Biosystems公司, 美國);Rotor-Gene 6000 Real-Time PCR 儀(Corbett Reserach,Qiagen公司,德國);高速臺式離心機(jī)5415D(Eppendorf公司,德國);G:BOX凝膠成像分析儀(Syngene公司,英國);NanoVue超微量分光光度計(GE公司,美國);解剖顯微鏡(Motic公司,香港);倒置相差顯微鏡(Leica公司,德國)。

    1.2 實驗動物與細(xì)胞

    Fgfr2cC342Y/+雄性小鼠 (美國華盛頓大學(xué)Chad Perlyn教授惠贈),Swiss雌性小鼠(購自阿德萊德婦女兒童醫(yī)院動物實驗中心)。

    顱縫原代細(xì)胞取材來源于7名接受經(jīng)顱徑路顱縫早閉癥手術(shù)的患者,預(yù)先均按照規(guī)定簽署實驗研究知情同意書。

    Kusa 4b 10細(xì)胞株為小鼠骨髓基質(zhì)來源的成骨前體細(xì)胞[7](澳大利亞St.Vincent醫(yī)學(xué)研究所惠贈)。

    1.3 方法

    1.3.1 標(biāo)本取材與分組

    1.3.1.1 Fgfr2cC342Y/+小鼠顱縫組織

    Fgfr2cC342Y/+雄性小鼠與Swiss雌性小鼠配種繁殖。子代中將出現(xiàn)野生型(WT,+/+)或雜合子(Het,+/-)2種基因型。提取鼠尾組織抽提基因組DNA進(jìn)行基因型鑒定,并進(jìn)行鼠耳標(biāo)記。孕鼠經(jīng)剖宮獲取胎鼠,切取實驗用顱縫組織后,提取鼠尾組織進(jìn)行基因型鑒定。按“QIAGEN全血和組織DNA抽提試劑盒”進(jìn)行操作,PCR擴(kuò)增突變基因外顯子,引物序列為Forward:5'-CAAGCAAGCTCAACAG GAGAG-3'和 Reverse:5'-GCTGTGCTGCTGAGAGTTTTG-3'。 PCR 產(chǎn)物瓊脂糖凝膠電泳分析,根據(jù)野生型出現(xiàn)224 bp條帶,雜合子出現(xiàn)290 bp突變等位基因條帶,確定基因型。

    選擇胚胎第16.5天、18.5天以及出生后第0、1、5、10天的Fgfr2cC342Y/+小鼠,分別切取冠狀縫、后額縫、矢狀縫、人字縫復(fù)合組織和顱頂骨(顱縫復(fù)合組織包括顱縫間質(zhì)、成骨緣及其下硬腦膜,切取顱縫時盡可能留小于1 mm成骨緣),分管標(biāo)記置于5 mL EP管中,-80℃保存。選擇不同天數(shù)、不同基因型、不同個體來源、不同顱縫來源的組織標(biāo)本共18個(表1)。

    1.3.1.2 顱縫早閉癥患者體外培養(yǎng)顱縫原代細(xì)胞

    患者基因型分析檢驗是否存在FGFR1-3和Twist基因突變[8]。顱縫組織經(jīng)膠原酶消化、組織塊體外培養(yǎng)收集原代細(xì)胞[9]。選擇不同顱縫來源、正常或早閉顱縫、不同傳代數(shù)的細(xì)胞標(biāo)本進(jìn)行g(shù)eNorm研究(表 2)。

    1.3.1.3 體外培養(yǎng)小鼠Kusa 4b 10成骨細(xì)胞株

    細(xì)胞置于T75培養(yǎng)瓶,含10%熱滅活的FBS和100 IU/mL青、鏈霉素的α-MEM培養(yǎng)液,37℃恒溫混合氣體(5%CO2、95%O2)環(huán)境中培養(yǎng),視細(xì)胞生長情況,每隔2~3 d換液一次。鏡下觀察,約80%生長融合時,細(xì)胞傳代。

    成骨誘導(dǎo),當(dāng)細(xì)胞數(shù)為5000(傳代第20代)時,移至3板24孔培養(yǎng)皿,次日加入成骨誘導(dǎo)液(α-MEM,15%FBS,10 mM β-磷酸甘油,50 μg/mL抗壞血酸,100 IU/mL青、鏈霉素)培養(yǎng),3 d換液一次,誘導(dǎo)培養(yǎng)21 d,收集細(xì)胞進(jìn)行茜素紅(Alizarin Red S)鈣結(jié)節(jié)染色:細(xì)胞經(jīng)70%乙醇固定后,加入0.1%Alizarin Red S溶液染色10min,水洗,室溫下干燥,染色后細(xì)胞加入乙酸∶甲醇(1∶1)脫染色 30min,提取的染料由分光光度儀A450定量分析。分別收集誘導(dǎo)(誘導(dǎo)后 3 d、7 d、14 d和 21 d)與非誘導(dǎo)細(xì)胞(培養(yǎng) 0 d、3 d、7 d、14 d 和 21 d)進(jìn)行 geNorm 分析。

    1.3.2 RNA抽提與逆轉(zhuǎn)錄

    顱縫組織與細(xì)胞標(biāo)本按Trizol法抽提總RNA,加入糖原充分混勻共沉淀,應(yīng)用20μL DEPC蒸餾水55℃促溶10min獲得RNA標(biāo)本;胚胎顱縫標(biāo)本極小,將相同基因型、2只小鼠的同一顱縫來源標(biāo)本置于同一EP管中進(jìn)行抽提以增加RNA產(chǎn)量。A260/A280、1%瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行RNA純度及濃度測定。

    分別取500 ng Fgfr2cC342Y/+小鼠顱縫組織RNA、250 ng人顱縫細(xì)胞RNA和1 μg Kusa 4b 10細(xì)胞RNA,采用SuperScriptTMⅢFirst-Strand Synthesis System試劑盒20μL體系進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)。

    Fgfr2cC342Y/+小鼠顱縫組織cDNA經(jīng)不含RNase/DNase的高壓水1∶3比例稀釋,人顱縫細(xì)胞cDNA 1∶4稀釋,Kusa 4b 10細(xì)胞cDNA 1∶10稀釋。所有反應(yīng)均設(shè)定相應(yīng)No-RT陰性對照(即逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)中,由高壓水替代SuperscriptⅢ逆轉(zhuǎn)錄酶)。

    1.3.3 geNorm分析

    針對不同的標(biāo)本類型,設(shè)計三組單獨的geNorm分析實驗,分別采用小鼠或人geNormTM Housekeeping Gene Selection試劑盒(提供候選內(nèi)參基因PCR擴(kuò)增引物)。RT-qPCR反應(yīng)采用KAPA SYBR FAST qPCR Kit試劑盒,10μL qPCR 反應(yīng)體系包含5μL 2× Kapa Master Mix,0.5μL 基因特異性 20×引物,1.43μL cDNA 和 3.07μL 高壓水。 在 Rotor-Gene 6000 Real-time PCR儀上進(jìn)行PCR反應(yīng),反應(yīng)程序按①95℃ 3min,②95℃ 3 sec,③60℃ 25 sec,回到步驟②,共40個循環(huán)。

    每一個RNA標(biāo)本均設(shè)3復(fù)孔,每一板PCR反應(yīng)均設(shè)定空白對照(NTCs),反應(yīng)結(jié)束后通過熔解曲線分析、凝膠電泳以及測序等鑒定產(chǎn)物的特異性。采用geNorm V3.5軟件進(jìn)行候選管家基因穩(wěn)定性分析[2]。通過該軟件計算出每個管家基因的表達(dá)穩(wěn)定值M,以及每個管家基因的表達(dá)相對于其他每一個待測管家基因表達(dá)的變異平均值V。M值越小,代表基因表達(dá)越穩(wěn)定,M<0.5視為穩(wěn)定內(nèi)參基因的典型閾值[10];V確定用作校準(zhǔn)的最佳管家基因數(shù)目,軟件建議V<0.15為選擇閾值[2]。

    1.3.4 目的基因表達(dá)水平與所選內(nèi)參基因的相關(guān)性研究

    Fgfr2cC342Y/+小鼠顱縫組織實驗中,選擇出生后第0、1、5、10天的野生型和突變型小鼠各6只,分別取材獲得冠狀縫標(biāo)本共48個,進(jìn)行RT-qPCR實驗,檢測成骨標(biāo)志骨鈣素(OC)和堿性磷酸酶(ALP)的表達(dá)水平。OC,F(xiàn)orward:5'-ACCTCACAGATGCCAA GCC-3',Reverse:5'-ATCTGGGCTGGGGACTGAG-3';ALP,F(xiàn)orward:5’-GGGACGAATCTCAGGGTACA-3',Reverse:5'-AGTAACTGGGGTCTCTCTCTTT-3’。PCR反應(yīng)前行目的基因擴(kuò)增效率檢測,即標(biāo)準(zhǔn)曲線建立,擴(kuò)增效率應(yīng)滿足100%±5%要求。分別選擇geNorm分析所得的針對本類標(biāo)本①單個最穩(wěn)定管家基因,②最穩(wěn)定基因組合以及③最不穩(wěn)定基因進(jìn)行結(jié)果分析,采用qBasePLUS軟件[10],可同時選多個內(nèi)參基因,并考慮每一反應(yīng)的擴(kuò)增效率進(jìn)行結(jié)果校對。

    2 結(jié)果

    2.1 候選管家基因選擇

    geNormTM Housekeeping Gene Selection試劑盒針對小鼠或人不同種類,各提供12個管家基因作為候選內(nèi)參。兩種試劑盒中所含候選基因基本一致,僅小鼠試劑盒中Canx和Ubc基因(表3),在人試劑盒中替換為SF3A1和TOP1基因(表4)。

    本實驗選擇與顱骨成骨、顱縫閉合相關(guān)的常用3組實驗標(biāo)本,分別為:①Crouzon綜合征Fgfr2cC342Y/+小鼠顱縫組織;②顱縫早閉癥患者體外培養(yǎng)顱縫原代細(xì)胞;③小鼠Kusa 4b 10成骨細(xì)胞株。經(jīng)體外成骨誘導(dǎo)培養(yǎng)21 d,茜素紅鈣結(jié)節(jié)染色驗證細(xì)胞是否存在成骨礦化。結(jié)果顯示,細(xì)胞在誘導(dǎo)培養(yǎng)2周后(14 d、21 d),與非誘導(dǎo)培養(yǎng)細(xì)胞或第0天細(xì)胞相比,礦化顯著增加,P<0.05(圖 1)。

    2.2 RNA與qPCR質(zhì)量控制

    檢測實驗標(biāo)本RNA純度與濃度(表5)。嚴(yán)格選擇凝膠電泳中含清晰18S與28S核糖體兩條條帶的RNA標(biāo)本進(jìn)行RT-qPCR反應(yīng),PCR擴(kuò)增效率均在100%±5%范圍內(nèi)。通過熔解曲線分析、凝膠電泳以及測序等鑒定產(chǎn)物的特異性。此外,通過閾值設(shè)定對每一標(biāo)本的3個副孔原始Ct值進(jìn)行挑選,排除SD>0.1標(biāo)本組;排除>10%基因組DNA污染的no-RT標(biāo)本。

    2.3 geNorm程序分析結(jié)果

    從http://medgen.ugent.be/~jvdesomp/genorm網(wǎng)站下載geNorm程序,對各個管家基因的表達(dá)穩(wěn)定性進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)分析,從而選擇最合適的內(nèi)參。根據(jù)3組實驗標(biāo)本進(jìn)行g(shù)eNorm分析。

    結(jié)果顯示,F(xiàn)gfr2cC342Y/+小鼠顱縫組織,Cyc1-Gapdh-Canx為最佳組合,在分析數(shù)據(jù)時,推薦選取這3個管家基因Ct值的幾何平均值作為內(nèi)參來對目的基因表達(dá)進(jìn)行校正;顱縫早閉癥患者體外培養(yǎng)顱縫原代細(xì)胞,18S rRNA和ATP5B為最佳組合;體外培養(yǎng)的小鼠Kusa 4b 10成骨細(xì)胞株,18S rRNA和Canx為最佳組合(圖2、表6)。

    2.4 選擇不同內(nèi)參基因?qū)δ康幕騌T-qPCR的結(jié)果影響顯著

    骨鈣素(OC)由分化晚期的成骨細(xì)胞分泌,作為成熟成骨細(xì)胞的功能標(biāo)志物[11];堿性磷酸酶(ALP)為成骨細(xì)胞分化的早期標(biāo)志[12]。在Fgfr2cC342Y/+小鼠顱縫組織實驗中,隨顱骨發(fā)育、顱縫閉合,二者表達(dá)水平逐漸增加[13-14]。geNorm 分析結(jié)果顯示:Cyc1 或 Gapdh為最穩(wěn)定管家基因,18S rRNA為最不穩(wěn)定基因,Cyc1-Gapdh-Canx為軟件推薦的最穩(wěn)定基因組合。

    表1 Fgfr2cC342Y/+小鼠顱縫組織geNorm分析標(biāo)本Table 1 RNA sample list of geNorm assay of mouse suture tissues

    表2 顱縫早閉患者體外培養(yǎng)顱縫原代細(xì)胞geNorm分析標(biāo)本Table 2 RNA sample list of geNorm assay of human suture cells

    表3 geNorm分析試劑盒候選管家基因(鼠)Table 3 geNormTM housekeeping gene selection kit candidates(Mouse)

    分別選擇①Cyc1、②18S rRNA、③Cyc1-Gapdh-Canx組合作為內(nèi)參基因,對目的基因PCR結(jié)果進(jìn)行校對,分析出生后第0、1、5、10天OC和ALP的表達(dá)趨勢(圖3)。當(dāng)選擇Cyc1或Cyc1-Gapdh-Canx組合作為內(nèi)參時,OC的表達(dá)趨勢基本一致(圖3a、b);相反,以18S rRNA進(jìn)行校對時,出生后第5天和第10天的OC表達(dá)水平與前二者相比約下降1/2(圖3c)。選擇單個最穩(wěn)定基因或組合時,出生后第10天的OC表達(dá)水平顯著增加,為出生后第0天的30倍,若選擇最不穩(wěn)定基因,則表達(dá)水平僅增加達(dá)10倍,反映出最不穩(wěn)定基因?qū)Y(jié)果統(tǒng)計的顯著影響(圖3g)。ALP表達(dá)水平表現(xiàn)出相似的影響趨勢(圖3d-f、h):當(dāng)選擇 3 基因組合時,出生后第 0、1、10 天,突變型較野生型ALP表達(dá)顯著增加。當(dāng)選擇18S rRNA,ALP突變型與野生型僅出生后第0天存在顯著差異;選擇Cyc1,則二者無差異。

    表4 geNorm分析試劑盒候選管家基因(人)Table 4 geNormTM housekeeping gene selection kit candidates(Human)

    圖1 Kusa 4b 10細(xì)胞茜素紅礦化染色檢測Fig.1 Induction of mineralization in Kusa 4b 10 cells

    表5 RNA質(zhì)量與產(chǎn)量Table 5 RNA quality and quantity

    圖2 顱縫早閉癥相關(guān)實驗管家基因穩(wěn)定性geNorm分析Fig.2 Housekeeping gene stability in craniosynostosis-related mouse suture tissues and human suture cells and Kusa 4b 10 osteoblasts using geNorm analysis

    表7 geNorm分析總結(jié)Table 7 Summary of geNorm results

    3 討論

    實時定量熒光PCR研究中內(nèi)參基因的選擇是一個極其重要的環(huán)節(jié),內(nèi)參基因選擇是否恰當(dāng)將對分析結(jié)果帶來很大的影響。證據(jù)表明,若在任何情況下都不加選擇地使用單一的內(nèi)參基因,將會給實驗帶來很大的誤差。Vandesompele等[2]研究認(rèn)為,單獨使用一個內(nèi)參基因在25%的樣品中導(dǎo)致了3倍的表達(dá)誤差,在10%的樣品中誤差甚至達(dá)到6.4倍。因此,在利用定量PCR進(jìn)行基因表達(dá)分析之前,首先要根據(jù)特定的實驗材料和實驗條件選擇合適的管家基因作為內(nèi)參基因,用于篩選最適管家基因的軟件相繼推出,如 geNorm、Norm Finder和 BestKeeper等[6,15]。

    geNorm是一款用來從多個管家基因中選擇最適合特定實驗材料和反應(yīng)條件內(nèi)參基因的統(tǒng)計學(xué)分析軟件,該軟件能夠計算出每個管家基因的表達(dá)穩(wěn)定值M,以及每個管家基因的表達(dá)相對于其他每一個待測管家基因表達(dá)的變異平均值V。M值越低,管家基因的表達(dá)越穩(wěn)定。在有些情況下,由于實驗條件及實驗材料復(fù)雜,可能無法找出非常穩(wěn)定表達(dá)的單個管家基因,或因?qū)Ρ磉_(dá)定量的精確度要求很高,或因在檢測一些表達(dá)量變化不太顯著的目的基因時,使用單個管家基因不能符合實驗的要求,此時需要利用多個管家基因來共同作為內(nèi)參基因進(jìn)行校正,以盡量減少校正過程中的誤差。同時使用2個或2個以上穩(wěn)定表達(dá)的管家基因,來對目的基因的表達(dá)進(jìn)行校正,已成為定量PCR研究中的一個新的準(zhǔn)則[10]。各管家基因的配對變異度V值可以指導(dǎo)內(nèi)參基因的數(shù)目選擇,Vandesompele等[2]建議,當(dāng)配對變異度V<0.15時,則無需加入更多的管家基因來進(jìn)行校正,如V2/3<0.15,表明只需選擇2個內(nèi)參基因作標(biāo)準(zhǔn)化指標(biāo)。

    在顱縫早閉癥基因表達(dá)的定量研究中,目前尚未選擇內(nèi)參基因,多數(shù)隨機(jī)選取傳統(tǒng)ACTB、GAPDH或18S rRNA作為內(nèi)參。本研究選取了3組代表性標(biāo)本,分別選擇不同種屬geNorm試劑盒來篩選合適的內(nèi)參基因。實驗組RNA取材應(yīng)盡量涵蓋各種不同類型的標(biāo)本,使選擇出的內(nèi)參基因更為符合實際實驗設(shè)計需求。例如:小鼠顱縫組織標(biāo)本選擇,包括不同類型顱縫、顱縫發(fā)育不同時期和不同基因型(野生型或突變型)標(biāo)本;人顱縫細(xì)胞標(biāo)本選擇包括來源于不同畸形患者的不同類型顱縫、不同傳代數(shù)細(xì)胞;Kusa 4b 10細(xì)胞株標(biāo)本選擇包括體外誘導(dǎo)與非誘導(dǎo)成骨兩種條件下、不同誘導(dǎo)天數(shù)的培養(yǎng)細(xì)胞。

    本實驗中Biogazelle公司開發(fā)的qbasePLUS分析軟件[10]基于傳統(tǒng)2-ΔΔCt原理,結(jié)合geNorm分析可設(shè)定多個管家基因,軟件自動將管家基因的幾何平均值作為內(nèi)參對目的基因進(jìn)行校對,同時結(jié)合每一次PCR反應(yīng)的擴(kuò)增效率,獲得目的基因的最終相對定量,節(jié)省了計算時間,分析結(jié)果也更為精確。

    有趣的是,雖然實驗選取的3組代表性標(biāo)本均與顱縫相關(guān),但是每一個單獨geNorm分析所列出的內(nèi)參基因穩(wěn)定性列表卻完全不同,而且不同標(biāo)本GAPDH、ACTB和18S rRNA在穩(wěn)定性列表中的排名存在較大的差異。上述結(jié)果提示,在設(shè)計RT-qPCR實驗之前,應(yīng)針對所選擇的標(biāo)本類型與種類,進(jìn)行管家基因穩(wěn)定性分析。其他學(xué)科的PCR研究也驗證了這一觀點,即未經(jīng)過篩選的管家基因用于結(jié)果校對,缺乏可信度,將使實驗存在較大誤差[16-18]。

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