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    亞甲藍(lán)血漿病毒滅活對(duì)凝血因子的影響

    2012-09-27 11:20:24趙樹(shù)銘劉鳳君蔣天倫
    重慶醫(yī)學(xué) 2012年11期
    關(guān)鍵詞:小辮子光化學(xué)凝血因子

    宋 敏,趙樹(shù)銘,劉鳳君,郭 輝,蔣天倫△

    (第三軍醫(yī)大學(xué)西南醫(yī)院,1:輸血科;2:檢驗(yàn)科,重慶 400038)

    近年來(lái),隨著人們生活水平和醫(yī)療保障水平的不斷提高,輸血的安全性問(wèn)題,越來(lái)越受到公眾的重視和關(guān)注,雖然對(duì)獻(xiàn)血員都進(jìn)行了篩選,但是由于當(dāng)前科技水平的限制,檢測(cè)方法較為局限,存在病毒標(biāo)記物檢測(cè)技術(shù)的局限性、窗口期、試劑敏感性、檢測(cè)病毒種類(lèi)的局限性等[1],血液輸注仍無(wú)法達(dá)到“零風(fēng)險(xiǎn)”。由于有些病毒顆粒片段存在于血漿中[2],輸注血漿傳播某些傳染病的可能性高于全血,故對(duì)血漿進(jìn)行病毒滅活是當(dāng)前提高輸血安全性的重要措施。目前已有的血漿病毒滅活方法很多[3],但對(duì)于單袋血漿病毒滅活最常用的是亞甲藍(lán)(MB)光化學(xué)法血漿病毒滅活[4-5],該方法現(xiàn)已在我國(guó)多家血站實(shí)行。據(jù)報(bào)道,MB光化學(xué)血漿病毒滅活方法幾乎可以滅活所有細(xì)胞外的含脂薄膜病毒,如可經(jīng)血液傳播的艾滋病毒(HIV),乙型肝炎病毒(HBV),丙型肝炎病毒(HCV)等[6],但對(duì)于細(xì)胞內(nèi)的病毒不具滅活作用,因此,在采用該方法進(jìn)行血漿病毒滅活的同時(shí),還需濾除血液中的白細(xì)胞[7]。但是,如果經(jīng)過(guò)病毒滅活處理后,雖然殺滅或去除了可能存在的病毒,但卻對(duì)其中的有效血液成分的活性和(或)活力造成嚴(yán)重?fù)p傷,那就失去了病毒滅活的意義。尤其是現(xiàn)已證明冷沉淀是所有血液成分中病毒含量最高的[2],用病毒滅活血漿制備冷沉淀就顯得尤為重要了。基于此,本研究對(duì)冷沉淀的主要有效成分且對(duì)病毒滅活較為敏感的凝血因子Ⅷ(FⅧ)及纖維蛋白原(Fib)進(jìn)行了如下實(shí)驗(yàn)研究。

    1 材料與方法

    1.1 儀器與試劑 日本藍(lán)橋血凝儀(Sysmex CA-7000),淄博中保康醫(yī)用病毒滅活柜(ZBK-YBM-01),BECKMAN 低溫離心機(jī)(Jb-MC Centrifuge),SANYO速凍冰箱(CFC-free型),四聯(lián)采血袋(南京賽爾金),含有MB添加元件的病毒滅活柜配套一次性病毒滅活血袋(淄博中??担現(xiàn)ib檢測(cè)試劑(德國(guó) Marburg Lot:537511),F(xiàn)Ⅷ:C(FⅧ活性)檢測(cè)試劑(德國(guó) Marburg Lot:500881B)。

    1.2 標(biāo)本來(lái)源 均來(lái)自本血站街頭無(wú)償獻(xiàn)血血液標(biāo)本。隨機(jī)抽取16袋400mL全血,于6h內(nèi)進(jìn)行血液成分分離。將所得血漿充分混勻后無(wú)菌等量分裝于兩個(gè)相同空血袋內(nèi),熱合封口后分別歸為實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組。同時(shí)留取血漿小辮子一份,做好標(biāo)記用于檢測(cè)FⅧ及Fib。整個(gè)操作過(guò)程嚴(yán)格按照標(biāo)準(zhǔn)操作規(guī)程(SOP)文件(根據(jù)《血站質(zhì)量管理規(guī)范》制定)要求進(jìn)行。

    1.3 血漿病毒滅活處理 采用一次性病毒滅活血袋對(duì)血漿進(jìn)行病毒滅活處理主要有兩個(gè)步驟:光照及過(guò)濾。作者通過(guò)無(wú)菌操作將兩組血漿與一次性血漿病毒滅活專(zhuān)用血袋相連,其中實(shí)驗(yàn)組血漿中加入 MB(濃度1μmol/L),對(duì)照組血漿中不加入MB,兩組血漿同時(shí)放入病毒滅活輻照箱內(nèi)進(jìn)行光照處理(光照強(qiáng)度25 000~30 000 1ux,溫度5~10℃,擺動(dòng)頻率60次/分鐘條件下作用30min),光照后分別留取血漿小辮子一份,做好標(biāo)記用于檢測(cè)FⅧ及Fib;按要求過(guò)濾后再分別留取血漿小辮子一份,做好標(biāo)記備檢。將三組備檢小辮子立即放于-50℃冰箱速凍。整個(gè)操作過(guò)程嚴(yán)格按照SOP文件(根據(jù)《血站質(zhì)量管理規(guī)范》制定)要求進(jìn)行。

    1.4 凝血因子檢測(cè) 3d后,于-50℃冰箱取出三組小辮子,37℃水浴箱中復(fù)溶后,立即檢測(cè)FⅧ及Fib。Sysmex CA-7000血凝儀檢測(cè)原理為免疫比濁法。檢測(cè)過(guò)程嚴(yán)格按照凝血因子檢測(cè)操作規(guī)程進(jìn)行。

    1.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 結(jié)果在SPSS11.0統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件上進(jìn)行t檢驗(yàn)分析,P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié) 果

    實(shí)驗(yàn)組與對(duì)照組FⅧ:C及Fib濃度病毒滅活處理前后、光照前后變化差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)表1、2,兩組過(guò)濾前后比較差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),見(jiàn)表3。

    表1 兩組血漿病毒滅活處理前后凝血因子減少值(±s)

    表1 兩組血漿病毒滅活處理前后凝血因子減少值(±s)

    組別 n FⅧ:C(%) Fib(g/L)對(duì)照組16 4.54±7.58 0.05±0.069實(shí)驗(yàn)組16 32.81±10.47 1.06±0.260

    表2 兩組血漿光照前后凝血因子減少值(±s)

    表2 兩組血漿光照前后凝血因子減少值(±s)

    組別 n FⅧ:C(%) Fib(g/L)對(duì)照組16 4.27±8.22 0.01±0.066實(shí)驗(yàn)組16 32.63±11.37 0.95±0.290

    表3 兩組血漿過(guò)濾前后凝血因子減少值(±s)

    表3 兩組血漿過(guò)濾前后凝血因子減少值(±s)

    組別 n FⅧ:C(%) Fib(g/L)對(duì)照組16 0.27±4.83 0.04±0.029實(shí)驗(yàn)組16 0.18±6.36 0.11±0.280

    3 討 論

    MB光化學(xué)法血漿病毒滅活技術(shù)已相當(dāng)成熟,該方法進(jìn)行血漿病毒滅活操作簡(jiǎn)便,且能滅活幾乎所有有包膜病毒[8],但是,關(guān)于用MB光化學(xué)法病毒滅活后的血漿能否用于制備符合質(zhì)量要求的冷沉淀還尚有爭(zhēng)議[9-12]。本實(shí)驗(yàn)中將同一人份血漿均分為兩份,分別進(jìn)行加入MB與未加MB光照處理,觀察MB光化學(xué)法血漿病毒滅活對(duì)冷沉淀中較為重要且較敏感的凝血因子的影響,實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,MB光化學(xué)法血漿病毒滅活對(duì)FⅧ及Fib均有較大程度上的影響。加入MB的實(shí)驗(yàn)組血漿經(jīng)病毒滅活后,F(xiàn)Ⅷ:C平均損失率達(dá)40.5%,F(xiàn)ib平均損失率達(dá)47.6%,與未加入MB的對(duì)照組比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。同時(shí)由三組數(shù)據(jù)對(duì)比可看出,病毒滅活過(guò)程中FⅧ:C及Fib的損耗主要來(lái)源于MB光化學(xué)反應(yīng),而單純光照處理影響不大,且實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組過(guò)濾前后FⅧ:C及Fib濃度的損失率相比較差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。本實(shí)驗(yàn)中,考慮到冷沉淀制備過(guò)程中人為因素影響較大,如冷沉淀中血漿保留量的影響等,未直接跟蹤檢測(cè)在制備為冷沉淀以后凝血因子的水平,而是留取檢測(cè)標(biāo)本后均按照冷沉淀原料血漿保存過(guò)程處理:三組小辮子標(biāo)本留取后立即放于-50℃冰箱速凍,待3 d以后于37℃水浴箱中復(fù)溶待檢,故本實(shí)驗(yàn)可以對(duì)制備成冷沉淀后質(zhì)量進(jìn)行預(yù)測(cè)。由于通過(guò)常規(guī)標(biāo)準(zhǔn)操作制備冷沉淀時(shí),凝血因子也還會(huì)有一定的損失,故由實(shí)驗(yàn)結(jié)果可看出病毒滅活血漿制備為冷沉淀后凝血因子活性不符合質(zhì)量要求標(biāo)準(zhǔn)。因此,在血液成分制備中,可考慮先將新鮮冰凍血漿制備成冷沉淀后再將血漿進(jìn)行病毒滅活。

    目前輸血安全性已獲得顯著提高,總體上血液已非常安全,但是由于病毒窗口期以及檢測(cè)試劑靈敏度等問(wèn)題,仍然存在輸血傳播艾滋病和肝炎等傳染病的危險(xiǎn)。據(jù)報(bào)道美國(guó)90%以上輸血傳播HIV和HBV以及75%以上輸血傳播HCV的危險(xiǎn)均來(lái)自窗口期感染獻(xiàn)血[13]。我國(guó)血站主要采用ELISA(酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn))方法對(duì)血液中HBV,HCV及HIV等進(jìn)行檢測(cè),該法試劑靈敏度差異較大且窗口期較長(zhǎng)[14],而據(jù)報(bào)道即便是用靈敏度較高的核酸檢測(cè)也只能將HIV檢測(cè)窗口期由22d縮短到12d,HCV檢測(cè)窗口期由70d縮短到14d[15]。另外尚有很多未被認(rèn)識(shí)或一時(shí)難以找到有效檢測(cè)手段的病毒存在經(jīng)輸血傳播給受血者的危險(xiǎn)。因此,對(duì)血液成分進(jìn)行病毒滅活處理,是從根本上控制或杜絕經(jīng)輸血途徑傳播疾病的重要措施?,F(xiàn)在都提倡成分輸血,對(duì)于所有血液成分中病毒含量最高、輸注危險(xiǎn)性最大的冷沉淀,則更應(yīng)進(jìn)行病毒滅活處理后用于臨床。但是我國(guó)目前推廣使用的MB光化學(xué)法血漿病毒滅活對(duì)血漿中一些有效成分,尤其是凝血因子影響較大,病毒滅活后血漿不適合用于制備冷沉淀,因此,還有待努力尋找一種更安全可靠的病毒滅活技術(shù),以更大限度地提高輸血安全性。

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