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    蛋白酶體抑制劑MG-132改善大鼠心肌梗死后心肌肥厚

    2012-09-15 08:00:06陳章榮吳新華羅開良向玉鸞
    基礎醫(yī)學與臨床 2012年11期
    關鍵詞:蛋白酶體左室心肌細胞

    陳章榮,吳新華*,羅開良,何 泉,向玉鸞

    (1.大理學院附屬醫(yī)院心內科,云南大理6710000;2.重慶醫(yī)科大學第二附屬醫(yī)院心內科,重慶410010;3.重慶醫(yī)科大學第一附屬醫(yī)院心內科,重慶410016)

    心肌梗死后非梗死區(qū)心肌細胞肥大是心肌梗死后心肌重塑的重要特征之一,參與心衰的發(fā)生發(fā)展過程,防治病理性心肌細胞肥大對防治心肌重塑及心衰的發(fā)生發(fā)展有重要意義。近年來的研究表明,蛋白酶體系統(tǒng)的活性增加與心肌肥厚有明顯關系,應用蛋白酶體抑制劑能改善壓力負荷過重的心肌肥厚[1-2]。研究表明蛋白酶體抑制劑PS-519通過抑制NF-κB的活性,抑制炎性因子表達而減輕小鼠心肌肥厚[3]。用MG-132可以使肥大心肌細胞的體積縮小[4]。另外的研究表明蛋白酶體抑制劑MG-132通過抑制NF-κB活性,減輕炎癥因子表達而減輕減輕大鼠心肌缺血再灌注的損傷[5]。因此,推測MG-132可以通過抑制NF-κB活性改善心肌梗死后心肌肥厚,本研究對此進行探討。

    1 方法

    1.1 動物心肌梗死模型的建立及給藥方法

    健康清潔級體質量相近的SD大鼠,雌雄各半,購于重慶醫(yī)科大學動物中心(合格證號:SCXK[渝]2007-0001),體質量250±50 g。心肌梗死模型制作參照文獻[6]進行。胸骨左緣第2~4肋開胸,以左冠脈主干為標志,在左心耳下方2 mm處進針,6/0號絲線結扎左前降支,當結扎區(qū)域變白,心電圖多于兩個肢導聯(lián)出現(xiàn)ST段上抬至少0.2 mV,則判斷為造模成功。將造模成功且術后24 h仍存活的大鼠隨機分為MI組和MG組。另設假手術(SH)組,SH組在相同冠脈部位只穿線不結扎。每組動物均為6只。MG組于術后24 h腹腔內注射MG-132(Calbiochem公司)0.1 mg/(kg·d)[7],連續(xù)給藥28 d,MI 組及SH組給0.9%氯化鈉注射液對照。

    1.2 超聲心動圖、左室質量指數及標本采集

    大鼠在處死前均行超聲心動圖(HP/SONOS 5500多普勒超聲儀,探頭頻率4~10 MHz),測定左室后壁厚度。處死動物,摘取心臟,剔除血管組織及右心室,稱取左心室濕重,除以體質量獲得左室質量指數(mg/g)。然后沿左心室長軸分為3份,心底部及心尖部置于液氮速凍后置-70℃保存用于反轉錄-聚合酶鏈反應(RT-PCR)檢測。中間部分切成3 mm的薄片,4%多甲醛溶液固定24 h后,石蠟包埋,切成5 μm厚的切片。

    1.3 非梗死區(qū)心肌細胞表面積、周長及平均直徑

    每個標本選2張?zhí)炖切杉t染色切片,用北航CM-2000B型生物醫(yī)學圖像分析系統(tǒng),測量天狼猩紅染色切片中心心肌細胞各種形態(tài)參數。每張切片選擇5個視野,計算機自動計算出各視野中心肌細胞形態(tài)參數值:心肌細胞面積、周長及平均直徑。

    1.4 半定量RT-PCR檢測NF-κB及IL-1β表達

    隨機取各組大鼠心肌組織,按Trizol法提取心肌組織總RNA,經1%瓊脂糖凝膠電泳證實RNA的完整性后,采用紫外分光光度計測定其濃度。取2 μg總RNA,以AMV反轉錄酶(Toyobo公司,日本)合成cDNA,取反轉錄產物進行PCR反應。反轉錄反應體系為:Oligo 5 μL,總 RNA 7 μL,L.5 ×RT 緩沖液4 μL,10 mmol/L dNTP 2 μL,RNAase 抑制劑1 μL,ReverTraAce 1 μL。反轉錄反應條件:30 ℃10 min,42℃ 60 min,85℃ 5 min。引物由上海博尚生物公司合成,NF-κB P65:上游5'-CAGCACATC CAGACAGACACCA-3',下游 5'-GCTGCTAAAAGAA TCCTCAAAACC-3',產物長度480 bp;IL-1β:上游 5'-CACCTTCTTTTCCTTCATCTTTG-3',下游 5'-AAGAC AAACCGCTTTTCCATC-3',產物長度381 bp;β-actin:上游 5'-CAGCTTCTTCTAGTGCCGTTCC-3',下游 5'-GGAGTCAGGTGTTTCTGGTGGAG-3', 產 物 長 度219 bp。反應體系:滅菌蒸餾水35 μL,10×PCR 緩沖液5 μL,上 游 引 物 1.5 μL,下 游 引 物 1.5 μL,10 mmol/L dNTPs 4 μL,Taq 酶1 μL,cDNA 2 μL。NF-κB P65的PCR反應條件:94℃預變性5 min后,94 ℃變性10 s,54 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,30個循環(huán)后,72℃延伸5 min;IL-1β及β-actin的退火溫度分別為50℃、58℃,其余反應條件與NF-κB P65反應條件相同。PCR產物經含Goldview的1.5%瓊脂糖凝膠電泳,經凝膠成像系統(tǒng)拍照、掃描。QuantityOne4.6軟件進行圖像分析計算 NF-κB P65及IL-1β產物相對量。吸光面積積分比值表示DNA含量,以NF-κB P65及IL-1β與β-actin擴增條帶的吸光面積積分比值評定mRNA表達水平。

    1.5 免疫組化檢測NF-κB、IL-1β蛋白質表達

    用免疫組織化學SP法(SP試劑盒購于北京中杉金橋生物技術有限公司;兔抗大鼠 NF-κB P65 IgG、兔抗大鼠IL-1β IgG為Santa Cruz)觀察心肌細胞NF-κB P65和IL-1β蛋白表達情況。石蠟包埋切片脫蠟,梯度乙醇浸泡,PBS沖洗,5%山羊血清封閉后,兔抗大鼠NF-κB P65 IgG和兔抗大鼠IL-1β(抗體濃度1∶100)孵育4℃過夜。次日分別滴加生物素標記山羊抗兔IgG(二抗)和辣根酶標記鏈霉卵白素,DAB顯色,蘇木精復染,封片,拍照。高倍鏡下觀察核因子P65蛋白表達情況,半定量分析方法參照文獻[8]所述,以心肌細胞核中出現(xiàn)棕色顆粒為陽性細胞,計算陽性指數(PI),PI=(陽性細胞數/視野內總細胞數)×100%。每片觀察5個非重疊高倍視野,取平均值。IL-1β以心肌細胞胞質出現(xiàn)現(xiàn)棕色顆粒為陽性細胞,每片隨機觀察5個非重疊高倍視野,用計算機圖像分析系統(tǒng)(Image proplus 5.1,Media Cybernetics,USA)計算積分吸光度值(IA)作為半定量參數。

    1.6 統(tǒng)計學分析

    所有資料采用SPSS12.0軟件統(tǒng)計包進行分析,計量資料以均數±標準差(±s)表示,兩組之間的比較采用t檢驗。

    2 結果

    2.1 左室后壁厚度、左室質量指數

    與SH組比較,MI組和MG組左室后壁厚度、左室質量指數增加(P<0.01),而MG組大鼠的上述指標均得到明顯改善(P<0.01)(表1)。

    表1 各組的左室后壁厚度、左室質量指數Table 1 The values of left ventricle posterior wall thickness and left weight index in all groups(x ± s,n=6)

    2.2 非梗死區(qū)心肌細胞形態(tài)學參數

    與SH組比較,MI組和MG組心肌細胞表面積、周長、平均直徑顯著增加 (P<0.01),而MG組大鼠的上述指標均得到明顯改善 (P<0.01)(圖1,表2)。

    2.3 NF-κB和IL-1β的mRNA表達

    與SH 組相比,MI組和 MG 組 NF-κB、IL-1β 的mRNA表達量明顯增加(P<0.01),與MI組相比,MG組的mRNA表達明顯降低(P<0.01)(圖2,表3)。

    圖1 各組的細胞表面積、周長及直徑Fig 1 The myocardial cell surface area,perimeter and direct in all groups(×200)

    表2 各組的細胞表面積、周長、直徑Table 2 The myocardial cell surface area,perimeter and direct in all groups(x ± s,n=6)

    圖2 大鼠心肌NF-κB、IL-1β的RT-PCR結果Fig 2 The mRNA levels of NF-kappaB P65 and IL-1β in all groups

    表3 NF-κB、IL-1β的 mRNA 表達量Table 3 The mRNA levels of NF-kappaB P65 and IL-1β in all groups(x ± s,n=6)

    2.4 NF-κB、IL-1β的蛋白質表達

    結果見,MI組和MG組NF-κB、IL-1β的蛋白質表達量相對于SH組明顯增加(P<0.01),MG組與MI組相比,其蛋白質表達量明顯降低(P<0.01)(圖3,表 4)。

    3 討論

    圖3 免疫組化法檢測NF-κB和IL-1β蛋白質表達Fig 3 The myocardial cell surface area,perimeter and direct in all groups(×200)

    表4 NF-κB、IL-1β的蛋白質表達量Table 4 The protein levels of NF-kappaB P65 and IL-1βin all groups(x ± s,n=6)

    泛素-蛋白酶體系統(tǒng)在心肌細胞的生長、發(fā)育中扮演重要角色[9],其功能失調與心肌缺血、肥厚、纖維化以及心肌細胞凋亡有關[10]。心肌肥厚模型中心內膜下心肌的蛋白酶體亞基表達增加,活性增強,應用蛋白酶體抑制劑改善心肌肥厚成為可能[1]。體外實驗表明應用MG-132可以使肥大心肌細胞的體積縮?。?],體內實驗表明,MG-132可改善壓力負荷過重導致的心肌肥厚[2]。然而,尚未見MG-132改善心肌梗死后心肌肥厚的研究報道,鑒于此,本研究進行探討。

    本研究制作大鼠心肌梗死模型,測量左室后壁厚度及計算左室質量指數,計算非梗死區(qū)的心肌細胞的形態(tài)學參數如心肌細胞的直徑、周長和表面積。結果顯示MI組的上述指標較sham組增加,說明心肌梗死后發(fā)生了非梗死區(qū)肥厚。而MG組的上述指標較MI組明顯降低,說明MG-132干預能改善梗死后非梗死區(qū)的心肌肥厚。心肌梗死后心肌處于缺血狀態(tài),出現(xiàn)大量損傷蛋白,泛素蛋白酶體活性代償性增加。當泛素蛋白酶體的活性過高時,一方面促進心肌肥厚抑制物如環(huán)磷酸腺苷受體降解,導致心肌肥厚[9];另一方面,泛素蛋白酶體活性過高促進NF-κB激活,NF-κB 激活與心肌肥厚有密切關系[11]。蛋白酶體抑制劑通過抑制蛋白酶體活性,能減輕心肌肥厚[1]。本研究的結果表明,小劑量MG-132可以改善心肌梗死大鼠非梗死區(qū)的心肌肥厚。

    本研究在基因和蛋白質水平對NF-κB、IL-1β在心肌細胞中的表達進行檢測。結果顯示MI組的NF-κB蛋白質和mRNA表達增加,證明NF-κB在心肌梗死后存在持續(xù)激活,最近的研究也證明了心肌梗死后存在 NF-κB 的激活[12]。激活的 NF-κB 通過增加炎性細胞因子的表達,這些因子通過一系列的信號通路參與心肌細胞肥大過程。本研究中,MI組的IL-1β在基因和蛋白質水平呈現(xiàn)高表達,說明了心肌梗死后心肌肥厚過程中存在炎性細胞因子的表達增加,這與文獻[13]報道相符。IL-1β可通過活化C-JUN氨基端激酶/應激活化蛋白激酶以及促分裂原活化蛋白激酶級聯(lián)反應信號通路導致心肌肥厚[14],使用 MG-132后 NF-κB 及其下游的炎性細胞因子(如IL-1β)降低,IL-1β的表達與NF-κB成一致變化,證實MG-132通過抑制NF-κB激活,降低炎性細胞因子如IL-1β的表達水平使非梗死區(qū)心肌肥厚得到改善。

    雖然本實驗證實了MG-132能改善大鼠心肌梗死后心肌肥厚,為心肌梗死的治療提供了一種新的思路和方法。然而,由于心肌肥厚的機制較為復雜,MG-132是否通過其他機制改善心肌肥厚以及其抑制NF-κB激活的具體機制尚有待進一步的研究。

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