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    傳統(tǒng)魚制品中優(yōu)良葡萄球菌的篩選與鑒定

    2012-09-12 13:36:22張琦琳林勝利聶小華
    食品工業(yè)科技 2012年13期
    關(guān)鍵詞:腌魚梅里耐鹽性

    張琦琳,林勝利,聶小華

    (浙江工業(yè)大學(xué)生物與環(huán)境工程學(xué)院,浙江杭州310014)

    傳統(tǒng)魚制品中優(yōu)良葡萄球菌的篩選與鑒定

    張琦琳,林勝利,聶小華*

    (浙江工業(yè)大學(xué)生物與環(huán)境工程學(xué)院,浙江杭州310014)

    從鹽干魚及糟腌魚中分離純化得到158株葡萄球菌,按照肉制品發(fā)酵劑篩選標(biāo)準(zhǔn),獲得3株優(yōu)良葡萄球菌S8、S61和S92,其具有良好的生長特性及耐鹽性。經(jīng)梅里埃VITEK-2全自動(dòng)微生物系統(tǒng)鑒定及16S rDNA序列分析,優(yōu)良葡萄球菌S8、S61和S92分別為沃氏葡萄球菌(Staphylococcus warneri)、松鼠葡萄球菌(Staphylococcus sciuri)和木糖葡萄球菌(Staphylococcus xylosus)。

    傳統(tǒng)魚制品,葡萄球菌,篩選,鑒定

    Abstract:According to the standards of meat fermentation starter,three Staphylococcus strains(S8,S61 and S92)with excellent characteristics were isolated and screened from traditional fish products.And the results of BioMerieux VITEK-2 automation microbe system and 16S rDNA sequence analysis showed that they were Staphylococcus warner,Staphylococcus sciuri and Staphylococcus xylosus respectively.

    Key words:traditional fish products;Staphylococcus;screening;identification

    大量研究結(jié)果表明,葡萄球菌在發(fā)酵制品的風(fēng)味形成中發(fā)揮著重要作用,近年來逐步成為國內(nèi)外傳統(tǒng)食品的研究熱點(diǎn)。已有研究發(fā)現(xiàn),葡萄球菌可將硝酸鹽還原成亞硝酸鹽,對脂肪自動(dòng)氧化引起的酸敗及由過氧化氫酶導(dǎo)致的褪色具有良好的抑制作用,同時(shí)其分泌的蛋白酶和脂肪酶可促進(jìn)發(fā)酵食品中特殊風(fēng)味的形成與積累,有效改善產(chǎn)品品質(zhì)[1-3]。Asiedu M[4]等人從非洲西部的一種自然發(fā)酵魚腸Enam Ne-Setaakye中成功分離出葡萄球菌。Fukami K[5-6]等人從日本鯖魚魚露中成功分離出木糖葡萄球菌,并將其應(yīng)用于泰國魚露發(fā)酵,顯著提高了魚露的風(fēng)味。Anihouvi VB[7]等人從發(fā)酵木薯魚中分離出芽孢桿菌、葡萄球菌、微球菌、鏈球菌、假單胞菌等,其中芽孢桿菌和葡萄球菌為優(yōu)勢菌株,分別占分離菌株總數(shù)的48.7%和27.3%,并且已證明其擁有適度的蛋白酶和脂肪酶活力。Tremonte P[8]等人將葡萄球菌、玫瑰微球菌聯(lián)合乳酸菌發(fā)酵培養(yǎng),研究表明葡萄球菌、玫瑰微球菌不但可促進(jìn)乳酸菌的生長,還可以增強(qiáng)菌株的蛋白水解活性。本實(shí)驗(yàn)以鹽干魚、糟腌魚等傳統(tǒng)魚制品為原料,依據(jù)肉制品發(fā)酵劑的篩選標(biāo)準(zhǔn),對其制品中葡萄球菌進(jìn)行分離純化,以期得到適合生產(chǎn)發(fā)酵魚肉制品的優(yōu)良菌株,為進(jìn)一步探討葡萄球菌在魚制品的應(yīng)用奠定良好的基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與儀器

    鹽干魚和糟腌魚 實(shí)驗(yàn)室自制;MSA培養(yǎng)基 蛋白胨10g,牛肉膏1g,D-甘露醇10g,氯化鈉75g,蒸餾水1000mL,pH7.2~7.6,121℃,滅菌20min,MSA固體培養(yǎng)基在此基礎(chǔ)上添加18g/L的瓊脂;耐鹽性實(shí)驗(yàn)培養(yǎng)基MSA液體培養(yǎng)基分別添加3%、6%、9%和12%的NaCl;產(chǎn)H2S培養(yǎng)基(醋酸鉛紙條法) 蛋白胨10g,氯化鈉5g,牛肉膏10g,半胱氨酸0.5g,蒸餾水1000mL,pH7.0~7.4,112℃,滅菌20~30min。另將普通濾紙剪成0.5~1cm寬的紙條,用5%~10%的醋酸鉛溶液將紙條浸透后烘干,置于培養(yǎng)皿中滅菌備用;葡萄糖產(chǎn)氣培養(yǎng)基 MSA液體培養(yǎng)基,加入倒置的杜氏小管,1.6%溴甲酚紫乙醇溶液0.625mL,121℃滅菌20min,配制時(shí)先將蛋白胨加熱溶解,調(diào)pH后加入溴甲酚紫,再加入葡萄糖;氨基酸脫羧酶培養(yǎng)基 蛋白胨5g,酵母提取物3g,葡萄糖1g,蒸餾水1000mL,1.6%溴甲酚紫乙醇溶液1mL,L-氨基酸5g或DL-氨基酸10g,pH6.8;石蕊牛奶培養(yǎng)基10g脫脂奶粉溶解于100mL水中,再加入4mL濃度為25g/L的石蕊,分裝試管,113℃滅菌15min;蛋白酶檢測培養(yǎng)基 以MSA固體培養(yǎng)基為基礎(chǔ)添加15%脫脂奶粉;脂肪酶檢測培養(yǎng)基 以MSA固體培養(yǎng)基為基礎(chǔ)添加15%的牛油及中性紅指示劑。

    超凈操作臺、YXQ-LS立式壓力蒸汽滅菌鍋、SPX-250B-Z型恒溫生化培養(yǎng)箱、GX-9070-MBE型恒溫鼓風(fēng)干燥箱 上海博訊實(shí)業(yè)有限公司;SP-75紫外可見分光光度計(jì) 上海光譜儀器有限公司;SKY-200B震蕩培養(yǎng)箱 上海蘇坤實(shí)業(yè)有限公司;Phs-3C型數(shù)字酸度計(jì) 杭州東星儀器設(shè)備廠;85-2數(shù)顯恒溫定時(shí)磁力攪拌器 杭州儀表電機(jī)有限公司;BS/BT4202S型Sartorious電子天平 賽多利斯公司;PCR儀 美國BIO-RAD。

    1.2 實(shí)驗(yàn)方法

    1.2.1 葡萄球菌的分離純化 無菌條件下,取鹽干魚、糟腌魚各10g,分別置于90mL無菌生理鹽水中勻漿并進(jìn)行梯度稀釋,選取2~3個(gè)適合稀釋梯度,采用MSA培養(yǎng)基傾注平板,30℃培養(yǎng)24h。隨機(jī)挑選單一菌落,平板劃線進(jìn)行分離,得到158株單一菌株[4]。

    1.2.2 優(yōu)良葡萄球菌的篩選 將分離得到的單一菌株進(jìn)行革蘭氏染色,過氧化氫酶活性檢測,溶菌酶、溶葡萄球菌素、呋喃唑酮、桿菌肽敏感性實(shí)驗(yàn),得葡萄球菌疑似菌株。在此基礎(chǔ)上進(jìn)一步進(jìn)行凝固酶實(shí)驗(yàn)、溶血實(shí)驗(yàn)、產(chǎn)粘實(shí)驗(yàn)、葡萄糖產(chǎn)氣實(shí)驗(yàn)、產(chǎn)H2O2實(shí)驗(yàn)、氨基酸脫羧酶實(shí)驗(yàn)、產(chǎn)氨實(shí)驗(yàn)、產(chǎn)H2S實(shí)驗(yàn)[9-10]、蛋白酶活性[11-12]及脂肪酶活性[12]檢測完成菌株的篩選。

    1.2.3 生長曲線的測定 將篩選所得菌株接種于MSA液體培養(yǎng)基,于30℃、150r/min下培養(yǎng),每隔2h取樣一次,于680nm測定OD值,以未接菌的MSA液體培養(yǎng)基為空白對照液。

    1.2.4 耐鹽性實(shí)驗(yàn) 將篩選所得菌株接種到分別添加有0%、3%、6%、9%、12%NaCl的MSA液體培養(yǎng)基中,于30℃、150r/min下培養(yǎng)24h,以未接菌的MSA液體培養(yǎng)基作為空白對照液,于680nm測定OD值。

    1.2.5 梅里埃VITEK-2系統(tǒng)鑒定 待測菌株經(jīng)純培養(yǎng)后,采用法國梅里埃生物公司革蘭氏陽性鑒定卡,VITEK-2全自動(dòng)微生物鑒定分析系統(tǒng)進(jìn)行鑒定,嚴(yán)格按照操作說明進(jìn)行操作。

    1.2.6 16S rDNA的PCR擴(kuò)增及序列分析 將篩選所得菌株接種至MSA固體培養(yǎng)基中,于30℃下培養(yǎng)24h。應(yīng)用一對通用引物(正向引物16S rDNA-F:5-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3;反向引物16S rDNAR:5-AAGGAGGTGATCCAGCCGCA-3)以基因組DNA為模板PCR擴(kuò)增16S rDNA基因[13]。

    PCR反應(yīng)體系(50μL):引物16S rDNA-F和16S rDNA-R各1.5μL,10×PCR緩沖液5μL,dNTP(2.5mmol/L)3μL,Taq酶(5U/μL)1μL,重蒸水38μL。滅菌牙簽挑取適量菌體,加入反應(yīng)體系內(nèi)。

    PCR程序設(shè)置如下:94℃預(yù)變性5min,94℃變性45s,50℃退火45s,72℃延伸1min,經(jīng)35個(gè)循環(huán)后72℃延伸10min。

    PCR產(chǎn)物采用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測后,送交上海INVITROGEN公司進(jìn)行測序,測得序列與NCBI數(shù)據(jù)庫中已知序列進(jìn)行比對及相似性分析。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 葡萄球菌的分離及篩選

    采用MSA培養(yǎng)基,從鹽干魚和糟腌魚中分離純化得158株單一菌株,其中革蘭氏陽性、球狀、H2O2酶陽性、溶葡萄球菌素和呋喃唑酮敏感、溶菌酶和桿菌肽不敏感的葡萄球菌疑似菌126株。依據(jù)肉制品發(fā)酵劑篩選標(biāo)準(zhǔn),篩選出能夠耐受6%NaCl、發(fā)酵蔗糖不產(chǎn)粘、發(fā)酵葡萄糖不產(chǎn)氣、不產(chǎn)H2O2、不產(chǎn)H2S、不產(chǎn)氨、不具有氨基酸脫羧酶活性及凝固酶反應(yīng)陰性、溶血實(shí)驗(yàn)陰性,同時(shí)具備良好的蛋白酶及脂肪酶活力的優(yōu)良葡萄球菌株3株(S8、S61及S92),如表1。

    表1 篩選葡萄球菌菌體形態(tài)及生理生化實(shí)驗(yàn)結(jié)果Table 1 Results of mycelia morphology and physiological biochemical test

    2.2 優(yōu)良葡萄球菌的生長特性

    2.2.1 生長曲線 將篩選得到的3株優(yōu)良葡萄球菌進(jìn)行液體培養(yǎng),分析其生長情況,如圖1所示。由圖可知,優(yōu)良葡萄球菌S8、S61和S92表現(xiàn)出相似的生長趨勢,皆從4h后進(jìn)入對數(shù)生長期,18h后進(jìn)入生長平穩(wěn)期,這表明篩選得到的三株優(yōu)良葡萄球菌均具備良好的生長特性。菌液OD值在0~1.0范圍內(nèi)存在線性關(guān)系,當(dāng)測定值超出線性范圍,則應(yīng)稀釋適當(dāng)比例后再進(jìn)行測定,經(jīng)換算最終確定菌液OD值。

    圖1 優(yōu)良葡萄球菌的生長曲線Fig.1 The growth curve of the excellent Staphylococcus

    2.2.2 耐鹽性實(shí)驗(yàn) 發(fā)酵肉制品加工過程中,食鹽具有調(diào)味、防腐保鮮及提高持水能力等作用。研究發(fā)現(xiàn)一定濃度的食鹽可抑制腐敗菌的生長,同時(shí)對發(fā)酵菌株也會產(chǎn)生一定的影響,因此一般要求發(fā)酵菌株耐鹽性可達(dá)6%[14]。

    耐鹽性實(shí)驗(yàn)(圖2)表明,NaCl含量對葡萄球菌的生長有著不同程度的影響,其中優(yōu)良葡萄球菌S8、S61和S92在3%~6%NaCl含量的MSA培養(yǎng)液中生長較為旺盛,此后隨著NaCl濃度的增加,其生長情況均受到不同程度的抑制,但在含有12%NaCl含量的培養(yǎng)液中仍可生長,培養(yǎng)液OD值依然保留在0.6~1.0之間,這說明優(yōu)良葡萄球菌S8、S61和S92具有較強(qiáng)的耐鹽性。

    圖2 優(yōu)良葡萄球菌的耐鹽性Fig.2 The salt tolerance of the excellent Staphylococcus

    2.3 優(yōu)良葡萄球菌的鑒定

    2.3.1 梅里埃VITEK-2系統(tǒng)鑒定結(jié)果 根據(jù)梅里埃VITEK-2系統(tǒng)鑒定結(jié)果分析(表2),優(yōu)良葡萄球菌S8可能為沃氏葡萄球菌,其匹配度為96%;優(yōu)良葡萄球菌S61可能為松鼠葡萄球菌,其匹配度為95%;優(yōu)良葡萄球菌S92可能為木糖葡萄球菌,其匹配度為99%。

    圖3 待測菌株P(guān)CR擴(kuò)增16S rDNA凝膠電泳圖Fig.3 The electrophoretogram of PCR-amplification of 16S rDNA from the strains

    表2 梅里埃VITEK-2鑒定結(jié)果Table 2 Identification results by VITEKⅡsystem

    2.3.2 16S rDNA分析及系統(tǒng)發(fā)育樹的構(gòu)建 用1%瓊脂糖凝膠對優(yōu)良葡萄球菌S8、S61和S92的16S rDNA擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行電泳檢測,經(jīng)溴乙錠染色后,三者均在1500bp左右出現(xiàn)熒光條帶,與預(yù)期結(jié)果一致(如圖3)。將PCR產(chǎn)物送交上海INVITROGEN公司進(jìn)行序列測定,測得優(yōu)良葡萄球菌S8、S61和S92的序列長度分別為1460、1472、1452bp。PCR產(chǎn)物測得序列采用軟件DNAStar、Clustalx與GenBank數(shù)據(jù)庫中的參考序列進(jìn)行Blast同源性比對,并應(yīng)用MEGA4.1軟件的鄰位相連(Neighbor-joining)法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(如圖4)。結(jié)果表明,優(yōu)良葡萄球菌S8、S61和S92的遺傳進(jìn)化分別與已知沃氏葡萄球菌(Staphylococcus warneri G7,Staphylococcus warneriR-38534,Staphylococcus warneri R-36520)、已知松鼠葡萄球菌(StaphylococcussciuriDSM 20345,StaphylococcussciuriCTSP9,Staphylococcus sciuri R10-5A)和已知木糖葡萄球菌(Staphylococcus xylosus AF515587,Staphylococcus xylosus AY395016,Staphylococcus xylosus 741)同處于一個(gè)最小分支,同源性高達(dá)99%~100%。

    結(jié)合梅里埃VITEK-2全自動(dòng)微生物系統(tǒng)鑒定結(jié)果,進(jìn)一步確定優(yōu)良葡萄球菌S8為沃氏葡萄球菌(Staphylococcus warneri),S61為松鼠葡萄球菌(Staphylococcussciuri),S92為木糖葡萄球菌(Staphylococcus xylosus)。

    圖4 優(yōu)良葡萄球菌S8、S61、S92的系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.4 The phylogenetic tree of excellent strains S8,S61,S92

    3 結(jié)論

    3.1 從鹽干魚和糟腌魚中篩選得到三株優(yōu)良葡萄球菌(S8、S61和S92),具有較好的蛋白酶活性和脂肪酶活性,且表現(xiàn)出良好的生長特性和耐鹽性。

    3.2 根據(jù)菌株形態(tài)特征、梅里埃VITEK-2全自動(dòng)微生物系統(tǒng)鑒定結(jié)果及16S rDNA序列測定綜合分析,葡萄球菌S8、S61和S92分別為沃氏葡萄球菌(Staphylococcus warneri)、松鼠葡萄球菌(Staphylococcus sciuri)和木糖葡萄球菌(Staphylococcus xylosus)。

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    Screening and identification of Staphy/ococcus from traditional fish products

    ZHANG Qi-lin,LIN Sheng-li,NIE Xiao-hua*
    (College of Biological and Environmental Engineering,Zhejiang University of Technology,Hangzhou 310014,China)

    TS254.1

    A

    1002-0306(2012)13-0178-04

    2011-09-29 *通訊聯(lián)系人

    張琦琳(1985-),女,碩士研究生,研究方向:食品生物技術(shù)。

    國家863專題項(xiàng)目(2007AA09z442)。

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