趙 楠,李勇勇,邵明飛,郁章玉,3,秦 松
(1.曲阜師范大學(xué)化學(xué)與化工學(xué)院,山東 曲阜 273165;2.南京農(nóng)業(yè)大學(xué)資源與環(huán)境科學(xué)學(xué)院江蘇省海洋生物學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇 南京 210095;3.菏澤學(xué)院化學(xué)與化工系,山東 菏澤 274015;4.中國科學(xué)院煙臺海岸帶研究所生物資源實(shí)驗(yàn)室,山東 煙臺 264003)
螺旋藻是絲狀的多細(xì)胞藍(lán)藻,具有很高的藥用及營養(yǎng)價值,被聯(lián)合國糧油組織推薦為“21世紀(jì)最優(yōu)秀的食品”.螺旋藻中β-胡蘿卜素的含量非常豐富,所含的 β-胡蘿卜素達(dá) 1 700 mg/kg(干重)[1].β-胡蘿卜素是維生素A的前體物質(zhì),大量研究證實(shí)β-胡蘿卜素是有效的抗氧化劑,能消除人體中的活性氧,消除自由基,在防癌[2]抗癌[3]、預(yù)防心血管疾病,增強(qiáng)免疫功能[4]等方面有明顯作用[5].螺旋藻粉中的β-胡蘿卜素含量為所有食物之冠,比胡蘿卜中的β-胡蘿卜素含量還要高出10倍[6].β-胡蘿卜素作為螺旋藻綜合開發(fā)利用的一種功能因子,有很大的商業(yè)化前景.因此,有關(guān)螺旋藻中β-胡蘿卜素成分的研究和測定方法倍受重視.目前常用的測定β-胡蘿卜素含量的方法有紙層析法、分光光度法和高效液相色譜法[7,8].由于高效液相色譜法樣品的前處理較為麻煩且所需儀器昂貴,所以還未能廣泛普及.而紙層析法步驟比較繁瑣,故本文采用分光光度法進(jìn)行螺旋藻粉β-胡蘿卜素含量的測定,并對該方法操作條件進(jìn)行優(yōu)化.
螺旋藻粉,2011年12月份購于廣西,置于陰涼抽屜中避光保存.
儀器:恒溫水浴鍋,上海?,斣囼?yàn)設(shè)備有限公司產(chǎn)品;電子分析天平,上海舜宇恒平科學(xué)儀器有限公司產(chǎn)品;TU-1901紫外可見分光光度計(jì),北京普析通用有限責(zé)任公司產(chǎn)品;50 mL具塞比色管,分液漏斗等.
試劑:標(biāo)準(zhǔn)β-胡蘿卜素(Sigma公司產(chǎn)品,質(zhì)量分?jǐn)?shù)>97%),無水硫酸鈉、正庚烷、丙酮、無水乙醇、甲苯、乙酸乙酯、氯仿、甲醇、石油醚均為國產(chǎn)分析純.
取一定量的β-胡蘿卜素標(biāo)準(zhǔn)品,溶解在石油醚中,在波長300~600 nm范圍內(nèi),用紫外可見分光光度計(jì)進(jìn)行波譜掃描,得到 β-胡蘿卜素的特征吸收峰,作為β-胡蘿卜素的測定波長.
準(zhǔn)確稱取2.50 mg β-胡蘿卜素標(biāo)準(zhǔn)品,溶于石油醚,并定容于100 mL棕色容量瓶中,配制成25 ug/mL的β-胡蘿卜素標(biāo)準(zhǔn)溶液,分別吸取0.2,0.4,0.6,0.8,1.0 mL 于 5 個 10 mL 棕色容量瓶中,用石油醚定容,以石油醚為參比溶液,在450 nm處測定各樣品的吸光度,并繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線.
準(zhǔn)確稱取0.2 g左右的螺旋藻藻粉于50 mL的比色管中,加入30 mL提取劑和1 mL質(zhì)量濃度為400 g/L的KOH溶液,混合均勻;比色管放于35℃恒溫水浴中浸泡12 h后,將浸泡液過濾,濾液倒入內(nèi)盛50 mL的20 g/L硫酸鈉溶液的250 mL分液漏斗中,用10 mL提取劑沖洗濾渣,重復(fù)兩次,將洗液、過濾液收集到分液漏斗中.向分液漏斗中加入30 mL乙醚及100 mL蒸餾水,振搖后靜置分層,棄去下層溶液,上層溶液再重復(fù)萃取兩次.萃取所得上層溶液通過一裝有10 g無水硫酸鈉的小漏斗濾入100 mL棕色容量瓶中,用少量石油醚洗滌分液漏斗,并洗去無水硫酸鈉表面的色素,定容至刻度線,搖勻,用分光光度計(jì)測定其在450 nm處的吸光度.
在50 mL具塞比色管中加入0.2 g螺旋藻粉后,再分別加入30 mL下列溶液:V(正庚烷)∶V(丙酮)∶V(無水乙醇)∶V(甲苯)=10∶7∶6∶7;V(石油醚)∶V(丙酮)=1∶1;V(甲醇)∶V(石油醚)=2∶1;乙酸乙酯;V(石油醚)∶V(丙酮)=4∶1;V(丙酮)∶V(氯仿)=1∶2;V(丙酮)∶V(甲醇)=7∶2;石油醚.其余步驟按1.4所述步驟進(jìn)行操作.
在50 mL具塞比色管中加入0.2 g螺旋藻粉、30 mL 最佳提取劑后,分別于 25,35,45,55,65,75℃恒溫水浴中浸泡12 h,其余步驟按1.4所述步驟進(jìn)行操作.
在50 mL具塞比色管中加入0.2 g螺旋藻粉后,再分別加入 15,20,25,30,35,40 mL 最佳提取劑,于最佳浸提溫度恒溫水浴中浸泡12 h,其余步驟按1.4所述步驟進(jìn)行操作.
在50 mL具塞比色管中加入0.2 g螺旋藻粉、最佳提取劑體積的提取劑后,于最佳溫度恒溫水浴中,分別密封避光浸泡 2,4,6,8,10,12 h,其余步驟按1.4所述步驟進(jìn)行操作.
采用L9(33)正交試驗(yàn)表,以 V(正庚烷)∶V(丙酮)∶V(無水乙醇)∶V(甲苯)=10∶7∶6∶7為提取劑,選取浸提溫度、提取劑體積、浸提時間3個因素,每個因素取3個水平,其因素水平見表1.
表1 L9(33)正交試驗(yàn)的因素水平
β-胡蘿卜素的吸收光譜,如圖1所示.從圖1可見,β-胡蘿卜素在波長300~600 nm范圍內(nèi)有兩處較大的吸收峰,其中在450 nm處吸收峰值最大,是β-胡蘿卜素的特征吸收峰,本試驗(yàn)選擇450 nm作為β-胡蘿卜素的測定波長.
圖1 β-胡蘿卜素光譜掃描曲線
β-胡蘿卜素的質(zhì)量濃度(ρ)在0~2.5 ug/mL范圍內(nèi)與吸光度值(A)呈現(xiàn)很好的線性關(guān)系,如圖2所示.其標(biāo)準(zhǔn)曲線公式為:A=0.308 9ρ-0.008 8,r2=0.999 5.
圖2 β-胡蘿卜素的標(biāo)準(zhǔn)曲線
各提取劑對β-胡蘿卜素含量測定的影響見表2.由表2知,V(正庚烷)∶V(丙酮)∶V(無水乙醇)∶V(甲苯)=10∶7∶6∶7為最佳提取劑,其提取到的β-胡蘿卜素含量測定最高,以下實(shí)驗(yàn)中均以此為提取劑.
表2 提取劑對β-胡蘿卜素含量測定的影響
隨著浸提溫度的升高,β-胡蘿卜素的測定含量呈先增大后減小的趨勢,見表3.當(dāng)恒溫水浴溫度為35℃時,β-胡蘿卜素測定的含量最大,為134.15 mg/100g.此后隨著恒溫水浴溫度的升高,β-胡蘿卜素的測定含量開始平緩地減小.這表明適當(dāng)?shù)靥岣呓釡囟瓤商岣擀拢}卜素的測定含量,過高的溫度可能會影響β-胡蘿卜素的穩(wěn)定性,可能會使β-胡蘿卜素發(fā)生降解而被破壞,使得β-胡蘿卜素的測定含量較低.
表3 浸提溫度對β-胡蘿卜素含量測定的影響
當(dāng)提取劑體積為30 mL時,提取效果較好,此時提取物中的β-胡蘿卜素的測定含量達(dá)到最高值,見表4.試驗(yàn)表明,提取劑的體積過大或過小,都不利于β-胡蘿卜素的提取,因此30 mL為最佳提取劑體積.
表4 提取劑體積對β-胡蘿卜素含量測定的影響
當(dāng)浸提時間為12 h時,浸提效果最好,此時提取物中的β-胡蘿卜素測定含量達(dá)到最高值為134.15 mg/100 g,見表5.浸提時間過短,不利于β-胡蘿卜素的充分溶出.隨著浸提時間的延長,β-胡蘿卜素測定含量逐漸增大.
表5 浸提時間對β-胡蘿卜素含量測定的影響
β-胡蘿卜素含量測定的正交試驗(yàn)結(jié)果見表6.由表6可知,影響β-胡蘿卜素含量測定的因素依次為:浸提溫度>提取劑體積>浸提時間,最佳提取工藝為A2B2C3,即以V(正庚烷)∶V(丙酮)∶V(無水乙醇)∶V(甲苯)=10∶7∶6∶7為提取劑,提取劑體積為30 mL,浸提時間為12 h,浸提溫度為35℃.
表6 L9(33)正交試驗(yàn)結(jié)果與分析
1)β-胡蘿卜素易被氧化,見光易分解,故本試驗(yàn)須在遮光條件下進(jìn)行.樣品在提取過程中,遮光條件下浸泡12 h,在一定程度上減少了β-胡蘿卜素的損失,從而提高了β-胡蘿卜素的測定含量.
2)通過正交試驗(yàn)得出,提取β-胡蘿卜素的最佳工藝條件為:V(正庚烷)∶V(丙酮)∶V(無水乙醇)∶V(甲苯)=10∶7∶6∶7為提取劑,提取劑體積為30 mL,35℃下浸提12 h;在最佳工藝條件下β-胡蘿卜素的測定含量為134.5 mg/100 g.
3)本試驗(yàn)方法簡單,實(shí)驗(yàn)所需儀器均較為普通,便于企業(yè)生產(chǎn)過程對β-胡蘿卜素進(jìn)行快速檢測及監(jiān)控.
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