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    低氧環(huán)境下肺腺癌A549細胞自噬及m iR-155表達變化的研究

    2012-08-09 03:02:08徐麗瑤鐘小軍符碧琪李麗芳蔡阿橋
    實用臨床醫(yī)學 2012年10期
    關鍵詞:常氧孔板低氧

    徐麗瑤,李 勇,鐘小軍,符碧琪,李麗芳,蔡阿橋

    (南昌大學第一附屬醫(yī)院腫瘤科,南昌330006)

    細胞自噬是一種依賴溶酶體的降解途徑,它對維持細胞生長、分化及內環(huán)境穩(wěn)態(tài)發(fā)揮重要作用。腫瘤細胞可通過自噬緩解代謝壓力,克服營養(yǎng)缺乏和低氧環(huán)境得以生存。低氧時肺腺癌A549細胞自噬活性增強,但其具體調控機制尚未明確。microRNA作為一種轉錄后調節(jié)機制,在多個生物學過程中發(fā)揮作用。新近研究表明:microRNA可通過沉默自噬信號通路上的關鍵蛋白,參與自噬多個環(huán)節(jié)的調控[1],但microRNA可否作用于低氧誘導A549細胞自噬過程尚未見報道。本研究通過觀察體外常氧和低氧培養(yǎng)環(huán)境下人肺腺癌A549細胞miR-155,自噬標記蛋白LC3及自噬體變化,為探討miR-155與自噬關系的研究打下一定的基礎。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    人肺腺癌A549細胞 (中國科學院上海細胞庫);RPMI-1640培養(yǎng)基、胎牛血清(美國Hyclone公司);胰酶(北京索萊寶科技有限公司);蛋白提取試劑盒(美國Pierce公司);PCR儀(美國 ABI公司);引物(大連 Takara 公司);Trizol、SYBR-GREEN Real-Time試劑盒(美國Invitrogen公司);三氣培養(yǎng)箱(日本SANYO公司);蛋白電泳儀、電轉儀(美國Bio-Rad公司)。

    1.2 方法

    1.2.1 細胞培養(yǎng)

    人肺腺癌A549細胞用含10%胎牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)基于37℃,5%CO2/95%空氣(常氧)飽和濕度培養(yǎng)箱常規(guī)傳代培養(yǎng)。取生長狀態(tài)良好的A549細胞經0.25%胰酶消化后,根據(jù)后續(xù)實驗的不同,分別接種于60 mm培養(yǎng)皿、6孔板及96孔板中培養(yǎng)12 h。更換新鮮培養(yǎng)基后置于37℃,1%O2/5%CO2/94%N2三氣培養(yǎng)箱中,繼續(xù)后續(xù)實驗。

    1.2.2 實驗分組

    分別在常氧(20%O2/5%CO2/75%N2)(常氧組)及低氧 (1%O2/5%CO2/94%N2)(低氧組)環(huán)境下培養(yǎng)A549細胞。

    1.3 自噬體水平測定

    取接種于60mm培養(yǎng)皿中的A549細胞,分別于0、24、48 h用不含EDTA的胰酶消化細胞,PBS洗3次,加入新配的4%多聚甲醛,4℃過夜。然后將細胞沉淀放入1%的四氧化鋨中,室溫固定1 h,經一系列脫水及包埋后,固定于銅網上用電鏡觀察。

    1.4 LC3蛋白水平測定

    取接種于6孔板中的A549細胞,于0、24、48 h后收集細胞,冷PBS洗2次,加入細胞裂解液于4℃裂解 20 min,12 000 r·min-1離心 20 min,收集上清,提取細胞總蛋白,BCA法測蛋白濃度。取20μg樣品煮沸變形后進行Tricine-SDS-PAGE電泳、轉膜,5%脫脂奶粉37℃封閉2 h,一抗4℃孵育過夜,洗膜;二抗37℃孵育1 h,ECL法顯影;分析條帶灰度值,以目的條帶與β-Actin調對灰度比值來表示蛋白相對表達量。

    1.5 m iR-155水平測定

    取接種于6孔板中的A549細胞,于0、24、48 h后收集細胞,按照TRIzol試劑 (Invitrogen,CA,USA)說明書,常規(guī)方法抽提總RNA。依照說明書操作ABI 7500 Fast Real-Time PCR System。反轉錄條件:總 RNA100 ng·20 μL-1反應液。 16 ℃ 20min,30 ℃30 s60個循環(huán),42℃30 s,50℃1 s。 70℃孵育 15min。PCR 條件:RT產物 1μL,miR-X 1μL,引物 1μL,10×SYBR Green I 0.5 μL。95 ℃ 10min,95 ℃ 15 s,60℃ 60 s。MiRNA的相對表達量用2-△△ct的方法來進行比較。U6作為內參。

    1.6 統(tǒng)計學方法

    2 結果

    2.1 低氧對A549細胞自噬標記蛋白LC3蛋白表達的影響

    LC3分為LC3Ⅰ和LC3Ⅱ,當自噬形成時,LC3Ⅰ轉變?yōu)長C3Ⅱ。與常氧組相比,低氧組LC3II表達水平上調,LC3Ⅰ表達水平下調,LC3Ⅱ/LC3Ⅰ比值升高(0.46±0.03)倍(圖 1)。

    圖1 常氧或低氧條件下A549細胞中LC3Ⅱ/LC3Ⅰ比值變化

    2.2 A549細胞m iR-155表達水平的變化

    相較常氧組,低氧組miR-155表達上調,于24、48 h 分別增加(1.45±0.23)倍及(2.10±0.32)倍(圖2)。

    圖2 常氧或低氧環(huán)境下A549細胞miR-155表達變化

    3 討論

    自噬是指細胞在饑餓、能量代謝缺乏等應激狀態(tài)下的一種“自我吞食”過程[2]。肺癌等實體腫瘤在發(fā)生發(fā)展過程中,由于腫瘤細胞的快速增殖和血管新生的相對滯后,腫瘤內部常處于低氧狀態(tài)。低氧可誘導細胞自噬的發(fā)生,本實驗結果也證實,低氧培養(yǎng)時,A549細胞自噬體數(shù)量及LC3II表達較常氧培養(yǎng)時明顯增高。

    自噬作為一種防御機制,在應激狀態(tài)下特別是缺氧條件下對維持腫瘤細胞存活具有積極作用。這種作用是通過一些腫瘤相關信號轉導通路完成的,其中包括哺乳動物的雷帕霉素靶蛋白復合物1(mTORC1)依賴的信號轉導通路、Beclin1網絡系統(tǒng)、LKB1-AMPK信號轉導通路及p53相關自噬信號轉導通路等[3],而細胞自噬的調控則是一個動態(tài)的、涉及多分子的復雜過程,其具體機制目前尚未得到完全闡明。

    MicroRNA(miRNAs)是一類長約 22 nt大小的非編碼RNA分子,通過影響靶mRNA的穩(wěn)定性和(或)翻譯效率對基因表達起負性調控作用。MicroRNA作為一種轉錄后調節(jié)機制,廣泛參與自噬多個環(huán)節(jié)的調控。 L.B.Frankel等[2]研究發(fā)現(xiàn),miR-101 通過靶向STMN1、RAB5A和ATG4D抑制 MCF-7細胞自噬發(fā)生。而miR-30則通過下調Beclin1的表達下調T98G 細胞自噬水平[3]。

    N.Yanaihara 等[4]研究發(fā)現(xiàn),肺腺癌組織中 miR-155高表達與預后不良相關,但其具體機制未明。miR-155可否通過調控肺癌自噬水平從而影響預后引起大家的關注。U.Bruning等[5]證實 miR-155可負性調控低氧誘導因子HIF-1α表達。實體腫瘤處于低氧微環(huán)境中,低氧誘導因子HIF-1α(hypoxia-inducible factor 1 alpha)可大量表達,其活性顯著增強[6]。 HIF-1α 可上調 bcl-2/腺病毒 E1B19kD 相互作用蛋白 BNIP3表達[7],BNIP3則通過干擾 Beclin-1與bcl-2及bcl-XL之間的相互作用而誘導自噬的發(fā)生[8]。因此,本實驗選取肺腺癌A549細胞作為研究對象,觀察不同氧濃度細胞自噬水平及miR-155表達量變化,結果發(fā)現(xiàn),低氧可成功誘導A549細胞自噬發(fā)生,同時觀察到在自噬被誘發(fā)同時,miR-155水平明顯增高。故筆者推測miR-155可能通過作用于自噬信號通路的相關分子影響低氧環(huán)境中A549細胞自噬水平。因本研究觀察時間點過少,有必要增加時間點,以進一步發(fā)現(xiàn)miR-155與自噬改變的相關性。明確miR-155與自噬的關系,以及miR-155調控低氧介導的A549細胞自噬途徑的相關靶點及具體機制是下一步研究的重點。

    [1]Fu L L,Wen X,Bao JK,et al.MicroRNA-modulated autophagicsignalingnetworksin cancer[J].IntJBiochem Cell Biol,2012,44(5):733-736.

    [2]Frankel L B,Wen J,Lees M,H yer-Hansen M,et al.MicroRNA-101 is a potent inhibitor of autophagy[J].The EMBO Journal,2011,30(22):4628-4641.

    [3]Zhu H,Wu H,Liu X,et al.Regulation of autophagy by a beclin 1-targeted microRNA,miR-30a,in cancer cells[J].Autophagy,2009,5(6):816-823.

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    [5]Bruning U,Cerone L,Neufeld Z,et al.MicroRNA-155 promotes resolution of hypoxia-inducible factor 1alpha activity during prolonged hypoxia[J].Mol Cell Biol,2011,31(19):4087-4096.

    [6]Ke Q,Costa M.Hypoxia-inducible factor-1 (HIF-1)[J].Mol Pharmacol,2006,70(5):1469-1480.

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    [8]Maiuri M C,Le Toumelin G,Criollo A,et al.Functional and physical interaction between Bcl-X(L) and a BH3-like domain in Beclin-1 [J].EMBO J,2007,26(10):2527-2539.

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