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    卡馬西平對(duì)成年癲癇間大鼠海馬齒狀回Brd U/Neu N表達(dá)水平及其對(duì)空間記憶的影響

    2012-06-14 06:27:00權(quán)青云楊嫣華李宏圖趙曉娟林芝惠
    卒中與神經(jīng)疾病 2012年2期
    關(guān)鍵詞:抗癲癇海馬癲癇

    權(quán)青云 楊嫣華 李宏圖 李 峰 趙曉娟 林芝惠

    癲癇間是一組由大腦神經(jīng)元異常放電所引起的一組臨床癥狀,對(duì)患者及社會(huì)造成較大危害,尤其是對(duì)患者認(rèn)知功能的損害。目前國(guó)內(nèi)外研究已證實(shí)在成年哺乳動(dòng)物,包括人類的整個(gè)生命過(guò)程中海馬齒狀回均有新生的神經(jīng)元產(chǎn)生[1]。近年不少報(bào)道關(guān)于癇間性發(fā)作誘導(dǎo)的損傷刺激海馬齒狀回(dentate gyrus,DG)的內(nèi)源性神經(jīng)前體細(xì)胞的神經(jīng)發(fā)生[2]。抗癲癇間藥是目前控制癲癇間癥狀的最主要的治療方法。雖抗癲癇間藥對(duì)癲癇間后海馬DG新生成熟神經(jīng)元的產(chǎn)生已有報(bào)道[3],但這些新生神經(jīng)元與認(rèn)知之間的關(guān)系報(bào)道較少。本實(shí)驗(yàn)運(yùn)用氯化鋰和匹羅卡品聯(lián)合誘導(dǎo)成年大鼠癲癇間持續(xù)狀態(tài)(status epilepticus,SE)模型,通過(guò)5-溴脫氧尿核苷(5-bromodeoxyuridine,Brd U)標(biāo)記新生的神經(jīng)細(xì)胞,利用Brd U與神經(jīng)元核性蛋白(Neu N)雙標(biāo)記觀察卡馬西平(Carbamazepine,CBZ)對(duì)海馬齒狀回內(nèi)源性神經(jīng)前體細(xì)胞分化為成熟神經(jīng)元的情況,同時(shí)利用行為學(xué)分析評(píng)價(jià)大鼠的空間記憶,為進(jìn)一步探討卡馬西平對(duì)癲癇間患者認(rèn)知影響提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 主要試劑及藥品 氯化鋰、匹羅卡品、Brd U(5 g/支)均購(gòu)自sigma公司;大鼠來(lái)源抗Brd U單克隆抗體(100 ug/支)購(gòu)于Santa公司;小鼠來(lái)源的Neu N抗體(500 ug/支)購(gòu)于Chemicon公司;生物素化山羊抗大鼠Ig G抗體、生物素化馬抗山羊IgG抗體、辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的鏈酶親和素購(gòu)于sigma公司;Alexa Fluor 594山羊抗大鼠IgG(H+L)(0.5 ml/支)購(gòu)于 molecule probe;Alexa Fluor 488猴抗小鼠IgG(H+L)抗體(0.5 ml/支)購(gòu)于 molecule probe。

    CBZ,商品名:得理多,200 mg/片,北京諾華制藥有限公司,國(guó)藥準(zhǔn)字H11022279。

    行為學(xué)分析環(huán)境:安靜的測(cè)試室,燈光、光線均勻,不透明的塑料測(cè)試箱(60 cm×42 cm×37 cm),SONY數(shù)碼攝像機(jī),3個(gè)尺寸相同,形狀、顏色不同的物體,其中2個(gè)完全相同,體積為大鼠體積的1/2~1倍,重量大于大鼠體重。

    1.1.2 動(dòng)物來(lái)源及飼養(yǎng)條件 32只Sprague-Dawley(SD)成年雄性大鼠,體重200 g(購(gòu)自第四軍醫(yī)大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心),動(dòng)物飼養(yǎng)室12 h光-暗循環(huán)(6:00-18:00),溫度20~25℃,濕度30~60%,食物和水自由攝取。喂養(yǎng)5 d后開(kāi)始進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。

    1.2 方法

    1.2.1 SE模型制作及分組 腹腔注射氯化鋰(180 mg/kg),20 h后腹腔注射匹羅卡品(30 mg/kg),當(dāng)大鼠癇間性發(fā)作達(dá)Ⅳ級(jí)或Ⅳ級(jí)以上并持續(xù)達(dá)90 min或抽搐致瀕危時(shí)給予腹腔注射苯巴比妥鈉50 mg/kg終止發(fā)作[4]。發(fā)作級(jí)別按 Racine分級(jí)[5],癇間性發(fā)作達(dá)到Ⅳ級(jí)或以上,解除癇間性發(fā)作后狀態(tài)良好者視為合格SE模型。正常大鼠以相同容積的0.9%氯化鈉取代氯化鋰、匹羅卡品和苯巴比妥鈉。隨機(jī)分為4小組(正常對(duì)照組,SE組,CBZ組,SE+CBZ組),每小組各8只大鼠。

    1.2.2 藥物用法 于SE后5 h給各大鼠分別灌胃,正常對(duì)照組(蒸餾水,1 ml/200 g),CBZ組(CBZ 120 mg·kg-1·d-1,4 mg/ml,1 ml/200 g)[6],2次/d,8:00-20:00。于SE后第6 d為各大鼠腹腔注射Brd U(50 mg/kg),共2次,間隔2 h。

    1.2.3 行為學(xué)檢測(cè)方法[7]

    在處死前3 d各組大鼠每天熟悉適應(yīng)測(cè)試箱45 min,同時(shí)熟悉適應(yīng)空測(cè)試盒5 min,連續(xù)3 d后進(jìn)行測(cè)試。(1)將每只大鼠置于鋪有墊料的測(cè)試盒適應(yīng)1 min;(2)在測(cè)試盒規(guī)定的位置放入2個(gè)完全相同的物體,觀察大鼠探索物體15 min后(熟悉階段),將大鼠放至動(dòng)物房;(3)3 h后將大鼠及兩個(gè)不同的物體(其中1個(gè)是熟悉的物體)同時(shí)再次放入測(cè)試盒,觀察大鼠探索物體15 min(測(cè)試階段)。在測(cè)試過(guò)程中整個(gè)過(guò)程被攝像機(jī)記錄。觀察每只大鼠探索兩個(gè)物體的累計(jì)時(shí)間及測(cè)試階段探索物體前30 s中探索新物體所占比例,并進(jìn)行分析。大鼠探索物體的主要標(biāo)準(zhǔn):(1)大鼠的鼻子指向物體的距離必須小于它頭的長(zhǎng)度;(2)大鼠探索物體的過(guò)程胡須必須運(yùn)動(dòng)。排除標(biāo)準(zhǔn):(1)站在物體上頭向別處張望;(2)身體不經(jīng)意接觸物體;(3)趴在物體上、靠著物體不動(dòng)。在下一個(gè)大鼠測(cè)試前每個(gè)物體和測(cè)試盒均用75%酒精徹底擦洗。

    1.2.4 取材 分別給以各組大鼠戊巴比妥鈉(50 mg/kg)過(guò)量麻醉后,打開(kāi)胸腔,由心尖經(jīng)二尖瓣至主動(dòng)脈,0.9%氯化鈉100 ml快速灌注,然后4%多聚甲醛400 ml先快后慢灌注30 min,取腦,4%多聚甲醛后固定2 h,20%蔗糖溶液沉底。冰凍切片機(jī)切片,留取海馬部位連續(xù)冠狀位切片,片厚30μm,每隔5張取一張腦片為一組收集于0.01M磷酸鉀鹽緩沖 生 理 鹽 水 (potassium phosphate-buffered saline,KPBS)中備用。

    1.2.5 免疫熒光染色 取各組大鼠的其中1組腦片,(1)行Brd U變性;(2)加大鼠抗Brd U單克隆抗體(1∶500)及小鼠抗 Neu N 單克隆抗體(1∶200)4℃孵育36 h;(3)避光環(huán)境下加山羊抗大鼠(1∶500)及驢抗小鼠(1∶500)熒光二抗室溫下孵育4 h;(4)避光環(huán)境下貼片,50%甘油封片,使用日本OLYMPUS X2100共聚焦顯微鏡觀察照相。

    2 結(jié) 果

    2.1 行為學(xué)分析 各組大鼠探索兩個(gè)物體行為的總時(shí)間無(wú)明顯差異(P>0.05)(圖1A)。但是3 h后測(cè)試,對(duì)照組及CBZ+SE組大鼠在探索物體的前30 s時(shí)間內(nèi)探索新物體的所占比例明顯高于SE組(P<0.05)(圖1B)。

    2.2 各組大鼠海馬DG區(qū)新生神經(jīng)細(xì)胞分化為成熟神經(jīng)元的情況 日本OlympusBX2100共聚焦顯微鏡下(×400倍)觀察發(fā)現(xiàn),各組大鼠海馬DG區(qū)Brd U/NeuN雙陽(yáng)性細(xì)胞主要分布在顆粒細(xì)胞層,少數(shù)分布在門(mén)區(qū),呈單個(gè)或兩個(gè),沒(méi)有叢集性,細(xì)胞核形態(tài)比較規(guī)則(圖2A)。SE組海馬齒狀回顆粒細(xì)胞層Brd U/NeuN雙陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)較正常對(duì)照組明顯減少(P<0.05),但是SE+CBZ組Brd U/NeuN雙陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)量與SE組相比明顯增多(P<0.05)(圖2B)。

    圖1 A 各組大鼠探索物體總時(shí)間(s)

    圖1 B 各組大鼠探索物體前30 s內(nèi)探索新物體所占比例

    圖2 A 各組大鼠齒狀回新生成熟神經(jīng)元情況(×400倍)

    圖2 B 各組大鼠平均每只大鼠海馬齒狀回Brd U/Neu N+細(xì)胞的數(shù)量

    3 討 論

    本實(shí)驗(yàn)采用氯化鋰-匹羅卡品腹腔注射造模,整個(gè)發(fā)作過(guò)程同人類SE相似。在SE后5 h給大鼠灌胃CBZ,發(fā)現(xiàn)CBZ明顯促進(jìn)新生神經(jīng)細(xì)胞存活,并增加新生成熟神經(jīng)元產(chǎn)生,與以往研究結(jié)果大致一致[8]。同時(shí),從行為學(xué)分析發(fā)現(xiàn),CBZ抗癲癇間治療后的SE大鼠空間記憶、學(xué)習(xí)能力明顯改善。而癲癇間大鼠探索新物體與舊物體的時(shí)間各占一半,提示癲癇間大鼠空間記憶能力明顯下降,與以往實(shí)驗(yàn)結(jié)果一致[7]。因此,可以推測(cè)CBZ較長(zhǎng)時(shí)間抗癲癇間治療明顯提高新生成熟神經(jīng)元產(chǎn)生,是CBZ改善癲癇間大鼠的空間記憶、學(xué)習(xí)能力的實(shí)驗(yàn)室依據(jù)之一。

    目前AEDs癲癇間藥物是臨床治療癲癇的最主要、最有效手段之一,CBZ為三環(huán)類抗驚厥劑,是目前傳統(tǒng)的AEDs之一,臨床應(yīng)用廣泛,對(duì)癲癇間精神運(yùn)動(dòng)性發(fā)作、大發(fā)作、限局性發(fā)作及混合性發(fā)作均有效。由于癲癇間具有不可預(yù)測(cè)性、發(fā)作性、長(zhǎng)期服藥性等特點(diǎn),不少患者誤認(rèn)為癲癇間發(fā)作只要在發(fā)作期控制即可,對(duì)生命造成的威脅不大,長(zhǎng)期服用較繁瑣,依從性不高。因此,臨床觀察癲癇間患者不正規(guī)抗癲癇間治療癲癇間患者均存在不同程度的智能損害,并且越嚴(yán)重的癲癇間發(fā)作智能損害越嚴(yán)重,這在以往的研究中也已證實(shí)[9]。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,在癲癇間后CBZ干預(yù)28 d后發(fā)現(xiàn)新生成熟神經(jīng)元明顯增多,同時(shí)行為學(xué)研究發(fā)現(xiàn)雖然此組大鼠探索物體的累計(jì)時(shí)間與其他組別無(wú)明顯差別,但在探索物體30 s時(shí)間內(nèi)探索新物體所占的時(shí)間比例明顯高于SE組,幾乎與正常對(duì)照組相同。對(duì)于這一現(xiàn)象,本研究推測(cè)CBZ可以改善SE大鼠的空間記憶能力。另外,本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)SE組大鼠自發(fā)性癲癇間發(fā)作頻繁,CBZ干預(yù)SE組大鼠在實(shí)驗(yàn)14 d后幾乎無(wú)自發(fā)性癲癇間發(fā)作。這也為臨床上我們發(fā)現(xiàn)癲癇間患者長(zhǎng)時(shí)間服用CBZ,可控制癲癇間發(fā)作,并且有助于改善患者智能提供理論依據(jù)。

    盡管我們發(fā)現(xiàn)長(zhǎng)時(shí)間CBZ抗癲癇間干預(yù)治療可以有效控制癲癇間癥狀,增加新生成熟神經(jīng)元的產(chǎn)生,同時(shí)有效改善癲癇間大鼠的空間記憶、學(xué)習(xí)能力。但這些新生成熟神經(jīng)元在改善智能方面的作用機(jī)制還需進(jìn)一步研究。正確引導(dǎo)新生神經(jīng)元發(fā)揮正面的、積極的作用將會(huì)為癲癇間患者帶來(lái)新的希望。

    1 Chen J,Cai F,Cao J,et al.Long-term antiepileptic drug administration during early ife inhibits hippocampal neurogenesis in the developing brain.J Neurosci Res,2009,87(13):2898-2907.

    2 Jessberger S,Zhao C,Toni N,et al.Seizure-associated,aberrant neurogenesis in adult rats characterized with retrovirus-mediated cell labeling.Neurosci,2007,27(35):9400-9407.

    3 Jing Chen,Qing Yunguan,F(xiàn)ang Yang,et al.Effects of lamotrigine and topiramate on hippocampal neurogenesis in experimental temporal-lobe epilepsy.Brain research,2010,13(13),270-282.

    4 Fang Yang,Jin Cunwang,Jun-Liang Han,et al.Different Effects of Mild and Severe Seizures on Hippocampal Neurogenesis in A-dult Rats.Hippocampus,2008,18(5):460-468.

    5 Kreicbergs A,Tribukait B,Willems J,et al.DNA flow analysis of soft tissue tumors.Cancer,1987,59(1):128-133.

    6 Jari Nissinena,Asla Pitkanen.Effect of antiepileptic drugs on spontaneous seizures in epileptic rats.Epilepsy Research,2007,73(2):181-191.

    7 Jessberger S,Nakashima K,Clemenson Jr GD,et al.Epigenetic Modulation of Seizure-Induced Neurogenesis and Cognitive Decline.J Neurosci,2007,27(22):5967-5975.

    8 權(quán)青云,林芝惠,徐曉霞,等.卡馬西平對(duì)匹羅卡品誘導(dǎo)成年癲癇間大鼠海馬齒狀回神經(jīng)發(fā)生的影響.卒中與神經(jīng)疾病,2011,18(2):78-81,92.

    9 李茂林,權(quán)青云,林芝惠.不同程度的癇間性發(fā)作對(duì)成年大鼠空間學(xué)習(xí)記憶影響的研究.腦與神經(jīng)疾病雜志,2010,18(2):148-151.

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