何 苗(綜述),王子衛(wèi)(審校)
(重慶醫(yī)科大學附屬第一醫(yī)院普通外科,重慶 400016)
表觀遺傳指不涉及DNA序列改變的,可隨細胞分裂而遺傳的基因組修飾作用,包括DNA甲基化(DNA methylation)、組蛋白修飾(如乙?;?、甲基化、磷酸化、泛素化等)、染色質重塑、基因組印跡、RNA干擾(RNA interference,RNAi)等。表觀遺傳參與基因表達調控,提供DNA編碼信息的時空表達指令。表觀遺傳學即研究表觀遺傳現象規(guī)律的科學,主要從基因組修飾角度研究基因表達的調控機制。DNA甲基化和RNA干擾(特別是小RNA)是表觀遺傳學研究焦點和重心。不少研究證實,DNA甲基化異常或RNA干擾異常與腫瘤發(fā)生、發(fā)展密切相關[1]?,F就DNA甲基化與小RNA基本理論進行概述,并綜述它們在腫瘤研究中的聯系。
DNA甲基化是在甲基轉移酶(DNA methyltransferase,DNMTs)作用下,由S-腺苷酰-L-甲硫氨酸提供甲基,在DNA分子胞嘧啶5號碳原子上結合甲基團,形成5-甲基胞嘧啶,生成甲基化DNA[2]。其有如下特點:常發(fā)生于DNA分子5'-CpG-3'序列,而基因啟動子常富集CpG序列(即CpG島);作用于DNA復制后,轉錄前,不改變DNA一級結構調控基因轉錄;是哺乳動物細胞內DNA合成后唯一自然修飾方式。DNA甲基化調控基因轉錄的機制是:甲基化DNA與甲基化CpG結合蛋白(methyl-CpG-binding protein,MeCPs)結合,MeCPs的MBD結構域(methyl-CpG-binding domain,MBD)通過招募組蛋白去乙?;感纬赊D錄抑制復合物,進而促使染色體形態(tài)改變,不利于DNA解旋和解鏈,最終抑制基因轉錄[3]。即 DNA 甲基化抑制基因轉錄。通常各種細胞具有相對特異的基因組甲基化譜,這在促進組織器官發(fā)育、維持細胞正常功能、調節(jié)細胞適應環(huán)境等方面發(fā)揮重要作用。但腫瘤細胞中,正常甲基化模式異常改變,表現為全基因組廣泛低甲基化及抑癌基因高甲基化[4],目前在不同腫瘤中已證實多種抑癌基因高甲基化,且與腫瘤分化、侵襲、轉移、臨床分級、復發(fā)、預后等密切相關[5]。故各類腫瘤相對特異的異常甲基化譜可望用于腫瘤診治[6]。
RNAi是部分特殊RNA誘導同源基因mRNA降解或抑制其翻譯,從而調節(jié)基因表達的現象。RNAi通常是轉錄后水平的遺傳信息調控(區(qū)別于DNA甲基化的轉錄水平)。目前,腫瘤中對RNAi現象的研究集中在小RNA,包括微小RNA(microRNA,miRNA)和小干擾RNA(small interference RNA,siRNA)。
2.1 miRNA基本理論 miRNA是一類長18~26 nt的非編碼小分子核苷酸,源于生物自身基因組。細胞核內miRNA基因在RNA聚合酶Ⅱ作用下先產生初級 miRNA(pri-miRNA),pri-miRNA在胞核內被RNA酶Ⅲ切割為發(fā)夾狀miRNA前體(pre-miRNA),pre-miRNA再被 exportin-5轉運至細胞質,由 RNA酶Ⅲ進一步切割為 miRNA:miRNA雙鏈[7],然后其中一條鏈被降解,遂形成成熟miRNA。miRNA可與RNA誘導沉默復合體(RNA-induced silencing complex,RISC)選擇性結合,成熟單鏈miRNA在RISC中通過堿基互補結合于同源基因mRNA,并降解或抑制該mRNA翻譯,從而調控基因表達[8](圖1)。人類基因中約1/3受miRNA表達調控,涉及生長、發(fā)育、凋亡、增殖、腫瘤等領域。由于miRNA源于生物自身基因組,故基于miRNA的RNAi是生物自身參與基因表達調控的方式。
2.2 siRNA基本理論 siRNA源于雙鏈RNA(double-stranded RNA,dsRNA)。dsRNA分子在胞質中經RNA酶Ⅲ切割為21~23 nt的小片段,即形成siRNA。siRNA在解旋酶作用下分解為兩條單鏈,由反義鏈與核酸內切酶、外切酶、解旋酶等結合形成RISC。單鏈siRNA在RISC中與同源基因mRNA通過堿基配對結合,并降解此mRNA或抑制其翻譯,從而實現基因轉錄后表達調控[9](圖1)。因 dsRNA源自外來病毒、轉座子或自身基因組,故基于siRNA的RNAi是生物自身及外來遺傳物質參與基因表達調控的共同途徑。
3.1 miRNA的DNA甲基化調控 腫瘤研究已證實部分腫瘤相關miRNA受DNA甲基化轉錄調節(jié);腫瘤中miRNA異常與其基因甲基化異常相關。例如Hashimoto等[10]采用 miRNA 芯片及定量反轉錄-聚合酶鏈反應研究胃癌,發(fā)現胃癌組織及細胞中miR-181c顯著降低,而miR-181c基因CpG島是異常甲基化的;用甲基轉移酶抑制劑5-aza-CdR處理胃癌細胞可激活miR-181c,并抑制胃癌增殖。Ando等[11]也發(fā)現具有抑癌作用的miR-124a在正常胃黏膜、癌旁組織、胃癌組織中表達逐漸降低,而其基因異常甲基化程度卻在上述組織中逐漸明顯,并與Hp感染顯著相關。Tsai等[12]研究人19號染色體的miRNA基因簇(C19MC),也發(fā)現胎盤組織中C19MC因序列上游17.6 kb處CpG島低甲基化而高表達,但在胃癌細胞AGS和宮頸癌細胞HeLa中卻因高甲基化而不表達;5-aza-CdR可激活C19MC并抑制AGS及HeLa增殖。Huang等[13]研究子宮內膜癌,也發(fā)現miR-129-2異常表達與其異常甲基化相關。Vrba等[14]研究乳腺上皮腫瘤和乳腺間質腫瘤,也證實miR-200c表達差異受DNA甲基化和組蛋白修飾調節(jié)。類似發(fā)現還很多,提示DNA甲基化不僅調節(jié)蛋白編碼基因的表達,也調節(jié)miRNA。
3.2 間接作用于DNA甲基化的miRNA 這里的“間接作用”指部分miRNA通過靶向抑制DNMTs或MeCP2而間接改變腫瘤基因甲基化譜,從而間接調節(jié)腫瘤基因轉錄。例如,Das等[15]探索了全反式維甲酸促進神經母細胞瘤分化的表觀遺傳機制。發(fā)現神經母細胞瘤中全反式維甲酸可促進miR-152表達,而miR-152可靶向抑制甲基轉移酶DNMT1和DNMT3B,從而激活了因異常甲基化而失活的82種基因,最終促進腫瘤分化。Braconi等[16]探索了炎性因子白細胞介素6參與膽管上皮癌發(fā)生的表觀遺傳機制。發(fā)現白細胞介素6可抑制miR-148a、miR-152、miR-301表達,而這些 miRNA正好靶向抑制 DNMT1;高表達的 DNMT1促使抑癌基因 Rassf1a及p16INK4a異常甲基化并失活,終致腫瘤發(fā)生。Garzon等[17]研究急性髓樣白血病也發(fā)現,miR-29b可靶向抑制甲基轉移酶DNMT3A和DNMT3B,從而改變基因組甲基化譜;如抑癌基因p15和ESR1就在轉染miR-29b后因啟動子去甲基化而激活,進而抑制癌細胞。
Wada等[18]研究8種胃癌細胞及11例胃癌組織,發(fā)現 miR-212在胃癌中顯著降低;而轉染 primiR-212可抑制胃癌細胞增殖。進一步試驗證實,miR-212靶向抑制甲基化CpG結合蛋白MeCP2;轉染pri-miR-212可抑制MeCP2蛋白表達,但不影響其mRNA水平。因MeCP2是參與DNA甲基化抑制轉錄的重要功能蛋白,故推測miR-212可通過調節(jié)MeCP2而影響基因甲基化對轉錄的調節(jié)。
利用生物信息學技術(如miRanda、PicTar等)還可預測很多靶向DNMTs及MeCPs的miRNA。結合上述研究,推測miRNA不僅受DNA甲基化轉錄調節(jié),也間接反作用于DNA甲基化,并調節(jié)轉錄。
3.3 間接作用于DNA甲基化的siRNA siRNA是RNA干擾的重要成員,但腫瘤研究中對內源性siRNA關注較少,故甚少見DNA甲基化調節(jié)siRNA的報道。目前siRNA常為人工合成,并作為抑制靶基因的科研工具而廣泛用于腫瘤基因功能研究。已不少學者發(fā)現,靶向抑制 DNMTs和 MeCPs的外源性siRNA可間接調節(jié)腫瘤基因甲基化譜。如 Deng等[19]構建Dnmt3a-siRNA并將之轉染黑素瘤細胞,發(fā)現Dnmt3a被剔除后,黑素瘤細胞中主要組織相容復合體Ⅰ(MHCⅠ)、主要組織相容復合體Ⅱ(MHCⅡ)、反式作用子Ⅱ(Ciita)等基因發(fā)生去甲基化并重新表達,進而抑制腫瘤的增殖、侵襲和轉移。Lopez-Serra等[20]研究了 MeCPs的 MBD 結構域,構建靶向MBD-mRNA的siRNA,發(fā)現抑制MBD后,宮頸癌細胞HeLa中部分因異常甲基化而失活的基因可重新表達,進而抑制腫瘤細胞增殖。Kim等[21]研究一種特殊甲基轉移酶Dnmt3L。構建Dnmt3L-siRNA轉染癌細胞,發(fā)現Dnmt3L被剔除后,共有242種基因甲基化譜發(fā)生改變,其中204種的甲基化譜是Dnmt3L與 Dnmt1、Dnmt3a、Dnmt3b共同參與調節(jié)的,而有15種基因甲基化譜是由Dnmt3L單獨調節(jié)的,如胸腺嘧啶轉葡糖激酶等。Kurita等[22]構建DNMT1-siRNA及DNMT3b-siRNA轉染肝癌細胞,發(fā)現肝癌的增殖受抑制及凋亡增加,且對化療的敏感性增強。進一步試驗證實,DNMT1及 DNMT3b被siRNA剔除后,肝癌中因啟動子甲基化而失活的caspase-8可重新轉錄,進而抑制肝癌。目前,這種DNMTS-siRNA介導的腫瘤基因甲基化調節(jié)逐漸被重視,并可望用于腫瘤基因治療。
3.4 直接作用于DNA甲基化的siRNA及miRNA“直接作用”指不通過靶向DNMTs而直接結合靶基因并誘導其DNA甲基化。例如,Kawasaki等[23]研究乳腺癌細胞MCF-7,發(fā)現靶向E-cadherin及HER2啟動子CpG島的外源性siRNAs可顯著促進兩種基因啟動子甲基化,并抑制它們轉錄。進一步試驗發(fā)現,剔除 DNMT1和 DNMT3B后,上述 siRNA介導的DNA甲基化抑制現象則消失。提示siRNA可靶向結合基因啟動子,并在DNMTs作用下促進該基因甲基化,進而抑制轉錄。Tan等[24]研究了多種腫瘤細胞,發(fā)現 miR-10a可抑制 hoxd4表達。分析原因發(fā)現miR-10a可靶向結合hoxd4啟動子CpG島,并促進hoxd4啟動子甲基化;且用甲基轉移酶抑制劑處理癌細胞后,上述miR-10a介導的hoxd4甲基化轉錄抑制也消失。提示miRNA亦可靶向結合基因啟動子,并通過DNMTs促進基因甲基化而抑制轉錄。
上述siRNA或miRNA直接靶向基因并導致啟動子甲基化的機制尚不清。有學者認為這種小RNA介導的靶基因甲基化修飾是通過轉錄因子TTF-1,并被DNMT3b特異識別而實現的[25]。腫瘤中類似研究尚少,需繼續(xù)探索。
miRNA及siRNA與DNA甲基化調節(jié)轉錄的關系十分密切。miRNA不僅受DNA甲基化轉錄調節(jié),也通過靶向Dnmts或MeCPs間接反作用于基因甲基化。這是對miRNA靶向mRNA在轉錄后水平調節(jié)基因表達的補充。siRNA通常是轉錄后水平抑制靶蛋白表達的科研工具,現也證明靶向Dnmts或MeCPs的siRNA可間接改變基因組甲基化譜,從而用于腫瘤治療。此外,植物中內源性siRNA可直接結合靶基因并調節(jié)其DNA甲基化譜[26];雖類似的siRNA或miRNA直接介導靶基因甲基化的報道已在腫瘤中出現,但還相對欠缺,且腫瘤中內源性siRNA是否受DNA甲基化調節(jié)也不清楚,故需繼續(xù)探索。
細胞發(fā)生癌變時常先出現表觀遺傳異常,例如,抑癌基因異常甲基化、癌基因去甲基化、miRNAs異常表達等。對它們的檢測和調節(jié)將對腫瘤診治產生巨大影響,這是腫瘤基因診療未來的研發(fā)方向。具體歸納如下:①探索各類腫瘤不同階段基因組甲基化譜差異和miRNAs差異,為腫瘤分子診斷提供依據;②異常甲基化的病因研究,為腫瘤預防提供理論依據;③腫瘤基因異常甲基化靶向治療研究,在轉錄水平治療腫瘤;④建立siRNA穩(wěn)定轉染并持續(xù)作用的方法,在轉錄后水平治療腫瘤;⑤因RNAi機制復雜,且其靶向性并非絕對特異,故人工RNAi技術對細胞的毒副作用尚待探索。
近年表觀遺傳學在腫瘤方面的研究突飛猛進,但人們清楚的仍舊是冰山一角。表觀遺傳貫穿生命全過程,作用巨大,人類表觀基因組計劃是宏偉而艱苦的工程,需要更多學者前赴后繼地探索。
[1]Esteller M.Epigenetics in cancer[J].N Engl J Med,2008,358(11):1148-1159.
[2]Cheng X,Blumenthal RM.Mammalian DNA methyltransferases:a structural perspective[J].Structure,2008,16(3):341-350.
[3]Klose RJ,Bird AP.Genomic DNA methylation:the mark and its mediators[J].Trends Biochem Sci,2006,31(2):89-97.
[4]Yegnasubramanian S,Haffner MC,Zhang Y,et al.DNA hypomethylation arises later in prostate cancer progression than CpG island hypermethylation and contributes to metastatic tumor heterogeneity[J].Cancer Res,2008,68(21):8954-8967.
[5]Park SY,Kook MC,Kim YW,et al.CpG island hypermethylator phenotype in gastric carcinoma and its clinicopathological features[J].Virchows Arch,2010,457(4):415-422.
[6]Yoo CB,Jones PA.Epigenetic therapy of cancer:past,present and future[J].Nat Rev Drug Discov,2006,5(1):37-50.
[7]Lee Y,Ahn C,Han J,et al.The nuclear RNase III Drosha initiates microRNA processing[J].Nature,2003,425(6956):415-419.
[8]de Fougerolles A,Vornlocher HP,Maraganore J,et al.Interfering with disease:a progress report on siRNA-based therapeutics[J].Nat Rev Drug Discov,2007,6(6):443-453.
[9]Stevenson M.Therapeutic potential of RNA interference[J].N Engl J Med,2004,351(17):1772-1777.
[10]Hashimoto Y,Akiyama Y,Otsubo T,et al.Involvement of epigenetically silenced microRNA-181c in gastric carcinogenesis[J].Carcinogenesis,2010,31(5):777-784.
[11]Ando T,Yoshida T,Enomoto S,et al.DNA methylation of microRNA genes in gastric mucosae of gastric cancer patients:its possible involvement in the formation of epigenetic field defect[J].Int J Cancer,2009,124(10):2367-2374.
[12]Tsai KW,Kao HW,Chen HC,et al.Epigenetic control of the expression of a primate-specific microRNA cluster in human cancer cells[J].Epigenetics,2009,4(8):587-592.
[13]Huang YW,Liu JC,Deatherage DE,et al.Epigenetic repression of microRNA-129-2 leads to overexpression of SOX4 oncogene in endometrial cancer[J].Cancer Res,2009,69(23):9038-9046.
[14]Vrba L,Jensen TJ,Garbe JC,et al.Role for DNA methylation in the regulation of miR-200c and miR-141 expression in normal and cancer cells[J].PLoS One,2010,5(1):e8697.
[15]Das S,Foley N,Bryan K,et al.MicroRNA mediates DNA demethylation events triggered by retinoic acid during neuroblastoma cell differentiation[J].Cancer Res,2010,70(20):7874-7881.
[16]Braconi C,Huang N,Patel T.MicroRNA-dependent regulation of DNA methyltransferase-1 and tumor suppressor gene expression by interleukin-6 in human malignant cholangiocytes[J].Hepatology,2010,51(3):881-890.
[17]Garzon R,Liu S,Fabbri M,et al.MicroRNA-29b induces global DNA hypomethylation and tumor suppressor gene reexpression in acute myeloid leukemia by targeting directly DNMT3A and 3B and indirectly DNMT1[J].Blood,2009,113(25):6411-6418.
[18]Wada R,Akiyama Y,Hashimoto Y,et al.miR-212 is downregulated and suppresses methyl-CpG-binding protein MeCP2 in human gastric cancer[J].Int J Cancer,2010,127(5):1106-1114.
[19]Deng T,Kuang Y,Wang L,et al.An essential role for DNA methyltransferase 3a in melanoma tumorigenesis[J].Biochem Biophys Res Commun,2009,387(3):611-616.
[20]Lopez-Serra L,Ballestar E,Ropero S,et al.Unmasking of epigenetically silenced candidate tumor suppressor genes by removal of methyl-CpG-binding domain proteins[J].Oncogene,2008,27(25):3556-3566.
[21]Kim H,Park J,Jung Y,et al.DNA methyltransferase 3-like affects promoter methylation of thymine DNA glycosylase independently of DNMT1 and DNMT3B in cancer cells[J].Int J Oncol,2010,36(6):1563-1572.
[22]Kurita S,Higuchi H,Saito Y,et al.DNMT1 and DNMT3b silencing sensitizes human hepatoma cells to TRAIL-mediated apoptosis via up-regulation of TRAIL-R2/DR5 and caspase-8[J].Cancer Sci,2010,101(6):1431-1439.
[23]Kawasaki H,Taira K.Induction of DNA methylation and gene silencing by short interfering RNAs in human cells[J].Nature,2004,431(7005):211-217.
[24]Tan Y,Zhang B,Wu T,et al.Transcriptional inhibiton ofhoxd4expression by miRNA-10a in human breast cancer cells[J].BMC Mol Biol,2009(10):12.
[25]Schmitz KM,Mayer C,Postepska A,et al.Interaction of noncoding RNA with the rDNA promoter mediates recruitment of DNMT3b and silencing of rRNA genes[J].Genes Dev,2010,24(20):2264-2269.
[26]Chellappan P,Xia J,Zhou X,et al.siRNAs from miRNA sites mediate DNA methylation of target genes[J].Nucleic Acids Res,2010,38(20):6883-6894.