趙昌會(huì) ,孫 佳 ,黃翔玲
(1.湖南科技學(xué)院,湖南 永州 425100;2.國(guó)家海洋局第三海洋研究所,福建 廈門(mén) 361005;3.國(guó)家海洋局海洋生物遺傳資源重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,福建 廈門(mén) 361005)
海洋中酵母菌的含量比較低,一般情況下,遠(yuǎn)海的水體中酵母菌的濃度低于10 cells/dm3,而污染的沉積物中為100 cells/g以上,底質(zhì)中酵母菌的含量受沉積物類型的影響比較大[1]。可通過(guò)濃縮水樣或加富培養(yǎng)來(lái)分離酵母菌,但對(duì)于含量較少、生長(zhǎng)較慢的酵母菌株,則需要運(yùn)用特殊的富集法分離[2]。實(shí)驗(yàn)室環(huán)境與自然環(huán)境的差異,加上采樣的困難,限制了人們對(duì)深海酵母菌的研究。Nagahama等[3-6]從1 000~11 000 m的深海樣品中分離到多種酵母菌,其中一些菌株與已知菌株同源性差異較大,具有研發(fā)的新潛力。本文對(duì)分離自印度洋中脊底質(zhì)的深海酵母IR08進(jìn)行了研究。
1.1.1 供試菌株 菌株IR08由黃翔玲同志采用PDA培養(yǎng)基從印度洋 IR-T3C1站(31.0877°S、59.1124°E)水深4 051 m 的洋底0~3 cm層底質(zhì)樣品中分離獲得。
1.1.2 培養(yǎng)基 PDA培養(yǎng)基:馬鈴薯20%、葡萄糖2%、瓊脂1.5%、pH 7.0(深海海水配制);同化碳源基礎(chǔ)培養(yǎng)基:MgSO4·7H2O 0.05%、酵母膏 0.02%、(NH4)2SO40.5%、KH2PO40.1%(3.4%(W/V)NaCl溶液配制)。
1.2.1 深海酵母的顯微鏡觀察 挑取少量的新鮮酵母菌混勻于載玻片的無(wú)菌水中,蓋上蓋玻片,油鏡下觀察。
1.2.2 深海酵母菌的溫度和鹽度試驗(yàn) 用接種環(huán)挑取少量的酵母接于鹽度分別為0、24、34、100的液體培養(yǎng)基中,分別在 4、10、25、35℃下培養(yǎng)(以不加菌液為對(duì)照),每隔24 h觀察培養(yǎng)液混濁度的變化。
1.2.3 深海酵母菌的碳代謝試驗(yàn) 用接種環(huán)挑取少量酵母菌稀釋于碳源利用鑒定液體基礎(chǔ)培養(yǎng)基中,混勻,取0.4 cm3加到TH04酵母樣真菌鑒定板上(杭州微生物試劑有限公司),35℃搖床培養(yǎng)5 d(100 r/min)。
1.2.4 深海酵母菌DNA的提取與擴(kuò)增 以酵母染色體DNA的提取為參考[7]。
1.2.5 深海酵母菌IR8的鑒定 菌株的染色體DNA 采用特異引物[8]ITS5:5′-GGAAGTAAAAGTCG TAACAAGG-3′和 LR6:5′-CGCCAGTTCTGCTTA-3′,擴(kuò)增26S rDNA的D1/D2區(qū)及ITS區(qū)在內(nèi)的一段核糖體DNA。其PCR擴(kuò)增反應(yīng)系統(tǒng)中包括:DNA模板 50 ng、正向及反向引物(各 10-5mol)、Taq DNA聚合酶(4 U)、2.5 mmol/μdm3的 dNTP 5 μL、5 μL 的10×PCR 緩沖液、DDW 補(bǔ)至 50 μL,26S rRNA 基因擴(kuò)增程序:95℃預(yù)熱 4 min,94℃變性 1 min、52℃退火1 min、72℃延伸2 min,36個(gè)循環(huán),最后 72℃ 10 min。對(duì)擴(kuò)增的26S rDNA片段直接測(cè)序,測(cè)序引物選用F63、LR3;返回結(jié)果通過(guò)DNAMAN軟件處理,以此為對(duì)比目標(biāo),通過(guò)FASTA網(wǎng)上分析搜索EMBL數(shù)據(jù)庫(kù),尋找同源性最高菌株,采用鄰接法[7]構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)。
IR08菌落淡紅色,圓形突起,較濕潤(rùn),直徑1~2 mm,易挑取。細(xì)胞卵圓形,單端芽殖(如圖1)。
圖1 IR08的細(xì)胞形態(tài)(100×)
IR08菌株受鹽度的影響較小,在25~35℃生長(zhǎng)良好,10℃以下生長(zhǎng)緩慢(如表1)。
表1 酵母IR08在不同時(shí)間、鹽度和溫度下的生長(zhǎng)狀況
IR08除了能利用葡萄糖、蔗糖、麥芽糖及半乳糖外,還能利用尿素、纖維二糖、阿拉伯糖、棉子糖、肌醇和、松二糖、山梨醇等,但不能利用木醇、海藻糖、肌醇、木糖。
將26S rDNA的D1/D2區(qū)的序列測(cè)序,輸入到EMBL數(shù)據(jù)庫(kù)對(duì)比,得到rDNA分子同源性相似度最高為 Pichia guilliermondii-AY188372(98.8%),構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)如圖2。
圖2 IR08的系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)
酵母的鑒定主要借助于生理學(xué)特征,但其碳和氮的同化實(shí)驗(yàn)常表現(xiàn)易變或區(qū)別不明顯,如紅酵母屬、擲孢酵母屬、木森頓酵母屬、鎖擲孢酵母屬等,需用ITS和5.8S DNA基因序列測(cè)定、18S rDNA及26S rDNA的轉(zhuǎn)錄間隔區(qū)的基因序列[1],這為發(fā)現(xiàn)新種提供了良好的途徑。如Nagahama在深海底質(zhì)中發(fā)現(xiàn)新種[6]。
季也蒙畢赤酵母能在含鉻量較高的條件下生長(zhǎng),并將其吸收[9]、也可富集重金屬銅[10]及防治果實(shí)產(chǎn)后的腐爛[11];分離自海洋的季也蒙畢赤酵母具有高產(chǎn)菊粉酶[12]等活性,深海分離的酵母菌IR08在環(huán)境修復(fù)及果實(shí)防腐等方面的價(jià)值有待于研究開(kāi)發(fā)。致謝:
本研究在國(guó)家海洋局第三海洋研究所葉德贊研究員的實(shí)驗(yàn)室完成,對(duì)他在本研究中的指導(dǎo)和支持,謹(jǐn)致謝忱!
[1] Nagahama T.Yeast biodiversity in freshwater,marine and deepsea environments(Biodiversity and Ecophysiology of Yeasts)[J].Springer,2006,(3):242-262.
[2] Yanagida F,Kodama K,Shinohara T.Selection of marine yeast stock for making white wine[J].J Brew Soc Jpn,2002,97:150-161.
[3] Nagahama T,Hamamoto M,Nakase T,et al.Kluyveromyces nonfermentans sp.nov.,a new yeast species isolated from the deep sea[J].Int J Syst Bacteriol,1999,49:1899-1905.
[4] Nagahama T,Hamamoto M,Nakase T,et al.Distribution and identification of red yeasts in deep-sea environments around the northwest Pacific Ocean[J].Antonie Van Leeuwenhoek,2001,80:101-110.
[5] Nagahama T,Hamamoto M,Nakase T,et al.Cryptococcus surugaensis sp.nov.,a novel yeast species from sediment collected on the deep-sea floor of Suruga Bay [J].Int J Syst Evol Microbiol,2003,53:2095-2098.
[6] Nagahama T,Hamamoto M,Horikoshi K.Rhodotorula pacifica sp.nov.,a novel yeast species from sediment collected on the deepsea floor of the north-west Pacific Ocean[J].Int J Syst Evol Microbiol,2006,56:295-299.
[7] 駱祝華,王祥敏,黃翔玲,等.熱帶太平洋深海酵母菌的多樣性與碳代謝特征研究.第三屆海洋生物高技術(shù)論壇 [C].2005:417-423.
[8] Fell J W,Boekhout T,F(xiàn)onseca A,et al.Biodiversity and systematics of basidiomycetous yeasts as determined by large-subunit rDNA D1/D2 domain sequence analysis[J].Int J Syst Evol Microbiol,2001,50:1351-1371.
[9] Ksheminska H,Jaglarz A,F(xiàn)edorovych,et al.Bioremediation of chromium by the yeast Pichia guilliermondii:toxicity and accumulation of Cr(III)and Cr(VI)and the influence of riboflavin on Cr tolerance[J].Microbiological Research,2003,158(1):59-67.
[10] María-Isabel S,Luz B,Cristina A,et al.Feasibility of copper uptake by the yeast Pichia guilliermondii isolated from sewage sludge[J].Research in Microbiology,2002,153:173-180.
[11] Yan Z,Kang T,Sicong T,et al.A combination of heat treatment and Pichia guilliermondii prevents cherry tomato spoilage by fungi[J].International Journal of Food Microbiology,2010,137:106-100.
[12] Xinjun Y,Ning G,Zhenming C,et al.Inulinase overproduction by a mutant of the marine yeast Pichia guilliermondii using surface response methodology and inulin hydrolysis[J].Biochemical Engineering Journal,2009,43(3):266-271.