陳積賢,張 潔,任振華,薛迪新,吳偉力,張仁虎,余 銘,林道浙,林 肖,黃建武,梁美珍,賀先偉,徐 平
p27蛋白是Polyak等于1994年在轉化生長因子-β(TGF-β)處理的生長抑制細胞及接觸生長抑制的細胞株中發(fā)現(xiàn)的一種相對分子質量為27 kd的耐熱細胞周期抑制蛋白,是p27基因的產(chǎn)物,屬kip類,與p21、p57功能相似。新近發(fā)現(xiàn)它屬于細胞周期素 (cyclin)-周期素依賴性蛋白激酶 (CDK)抑制蛋白,能與cyclin-CDK復合物結合,控制細胞由G1期進入S期的“位點”,從而抑制細胞增殖[1]。國外學者認為p27基因在腫瘤的發(fā)生發(fā)展中扮演著重要的角色,認為其抑癌作用可能是其產(chǎn)物p27蛋白在轉錄后水平以化學劑量方式與cyclin-CDK復合物,尤其是cyclin-CDK2復合物結合,阻止細胞增殖通過限制點—— “位點”的最關鍵因素,從而使細胞周期停止在G1期。但是在研究中很少發(fā)現(xiàn)有p27基因的缺失及突變。如果p27蛋白水平低下或缺失,可以導致細胞過度增殖,引起腫瘤發(fā)生。而表觀遺傳修飾方式之一的甲基化事件與基因的表達有密切聯(lián)系。所以本實驗利用MSP甲基化檢測血液標本中p27的啟動子甲基化水平改變,并探討其與結直腸癌發(fā)生、發(fā)展、臨床分期、分化程度和淋巴結轉移臨床病理的關系。
1.1 一般資料 選擇我院腫瘤外科2007年2月—2009年12月手術治療的結直腸癌患者106例為研究對象。其中男63例,女43例;年齡<60歲48例,≥60歲58例;Dukes分期:A+B期55例,C+D期51例;腫瘤部位:右半結腸16例,左半結腸32例,直腸58例;腫瘤大小:<5 cm 67例,≥5 cm 39例;浸潤深度:未達漿膜層29例,達漿膜層77例;有淋巴結轉移41例,無淋巴結轉移65例;分化程度:低分化25例,高中分化81例。選取同期健康體檢的正常者29例為對照組。
1.2 實驗方法 基因甲基化狀態(tài)分析:采用德國QIAGEN公司生產(chǎn)的QIAamp Blood Mini KIT試劑盒提取血清。每份標本使用2.5 ml血清,按照說明書提取DNA并定量,按文獻方法略作修改進行DNA的亞硫酸氫鹽處理,針對修飾過的p27啟動子CpG島序列,分別設計甲基化、非甲基化特異引物擴增目的片段。引物序列為27M:5'-AAGA GGCGAGTTAGCGT-3;5'-AAAACGCCGCCGAACGA -3;27U:5'-ATGGAAGAGGTGAGTTAGT-3';5'-AAAACCCCAATTAAAAACA-3';反應條件:94℃,10 min預變性后接由95℃,45 s;66℃,45 s;72℃,45 s三步組成的35個循環(huán),最后72℃延伸10 min。PCR擴增產(chǎn)物長度p27M:195 bp(堿基對)、p27U:212 bp。甲基化特異性的PCR反應體系為25μl,包括2μl的修飾DNA,1×PCR bufferII(Perkin-Elmer),2 mmol/L MgCl2,0.25 mmol/L dNTP,上下游引物各1μmol/L,和1 U AmpliTaq Gold polymerase(Perkin-Elmer),反應條件:首先95℃變性10 min,然后95℃變性30 s,特定溫度退火45 s,延長72℃,45 s,共40個擴增循環(huán)。實驗設陽性對照 (試劑盒提供),不含DNA的蒸餾水作為陰性對照。10μl的PCR產(chǎn)物進行2%瓊脂糖凝膠電泳,EB染色,運用圖像采集與分析統(tǒng),記錄并分析電泳結果,所有試驗均重復三次。
1.3 統(tǒng)計學方法 數(shù)據(jù)均在SPSS 11.5軟件上處理,計數(shù)資料采用χ2檢驗,以p<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 p27基因甲基化狀態(tài) 以門靜脈血為實驗材料,檢測p27基因啟動子區(qū)域的甲基化情況。甲基化特異性引物擴增的條帶則標本計為甲基化 (M),未甲基化特異性引物擴增條帶則標本計為未甲基化 (U),電泳結果顯示在特異引物參與下PCR擴增后的特異性片段 (見圖1)。
2.2 p27基因甲基化與結直腸癌患者臨床病理特征的關系106例結直腸癌患者中,p27基因甲基化陽性率與患者的性別、年齡、腫瘤部位和腫瘤大小均無統(tǒng)計學意義 (P>0.05);而p27基因甲基化陽性率與結直腸癌的浸潤深度、分化程度、Dukes分期及有無淋巴結轉移均有統(tǒng)計學意義 (p<0.05,見表1)。
表1 結直腸癌患者門靜脈血p27基因甲基化與臨床病理的關系Table 1 Methylation level in p27 promoter and its relationship with clinical feature
2.3 兩組靜脈血中p27甲基化發(fā)生情況 外周靜脈血的p27基因甲基化檢測結果顯示:29例對照組的甲基化陽性率為3.4%(1/29),結直腸癌患者外周靜脈血p27基因甲基化陽性率為24.5%(26/106),兩組p27基因甲基化陽性率比較,差異有統(tǒng)計學意義 (χ2=6.324,p<0.01)。結直腸癌患者門靜脈血中p27基因甲基化陽性率為30.2%(32/106),與外周血p27基因甲基化陽性率比較,差異無統(tǒng)計學意義 (χ2=0.854,P>0.05)。
細胞周期調控因子是一組調節(jié)細胞增殖、分化的正負信號,它們之間的相互作用促進和抑制細胞周期的正常進程。目前越來越多的研究表明腫瘤的發(fā)生發(fā)展與腫瘤細胞周期的調控失常有關,而細胞周期調控因子的異常是重要原因。p27作為細胞周期的負調控因子,自發(fā)現(xiàn)以來一直被視為候選的抑癌基因[2-3]。p27基因是一種相對分子質量為27 kd的耐熱細胞周期抑制基因,屬kip類,與p21、p57功能相似。國外學者認為p27基因在腫瘤的發(fā)生發(fā)展中起著重要作用,但很少發(fā)現(xiàn)有p27基因的缺失及突變,認為其抑癌作用可能是其產(chǎn)物p27蛋白在轉錄后水平以化學劑量方式與cyclin-CDK復合物,尤其是cyclin-CDK2復合物結合,阻止細胞增殖通過限制點——位點的最關鍵因素,從而使細胞周期停止在G1期[4]。p27蛋白水平低下或缺失,可導致細胞過度增殖,引起腫瘤發(fā)生。
DNA甲基化參與真核生物基因表達調控,抑癌基因的高甲基化與其失活和異常表達有關,這可能是腫瘤發(fā)生、發(fā)展的一個重要因素[5-6]。近來,基因啟動子區(qū)CpG島的高甲基化引起基因失表達已成為腫瘤研究的熱點。在對多種腫瘤包括消化系腫瘤、肝癌、乳腺癌等的p27研究中,p27啟動子區(qū)域甲基化異常與腫瘤的惡性進展相關,提示p27低表達與結腸癌的進展及轉移密切相關,可作為結腸癌病理生物學行為的觀測指標。崔靜等[7]對于98例結直腸癌患者研究發(fā)現(xiàn)p27基因異常甲基化是p27失活的主要機制,與結直腸癌的發(fā)生、發(fā)展密切相關。另外,乳腺癌患者檢查發(fā)現(xiàn)其組織中p27的啟動子區(qū)域存在高甲基化狀態(tài),且有顯著性相關[8]。藥物學研究中,使用阻遏甲基化反應的藥物CdR對于胃癌細胞系增殖具有明顯的抑制作用,其可能的機制是p27基因的甲基化狀態(tài)得到了逆轉[9]。
在研究啟動子區(qū)域甲基化水平的方法中,DNA甲基化特異性PCR法具有簡便易行、靈敏度高等特點,可用于臨床少量標本的檢測,能為腫瘤的早期診斷、生物學行為及預后分析提供指導意義。
結直腸癌患者外周血p27基因甲基化水平上升,但是外周血離病灶較遠,可能存在陽性癌細胞被稀釋。為了更準確地反映p27基因甲基化與結直腸癌臨床病理特征的關系,本實驗采集了與病灶更接近的門靜脈血作為甲基化水平檢測標本。門靜脈血的甲基化陽性率與外周血無差異。本研究探討了p27基因甲基化與結腸癌生物學行為的關系,結果顯示p27基因甲基化程度與腫瘤浸潤的深度、臨床分期、惡性程度及有無淋巴結轉移有關。這些結果提示p27基因異常甲基化可能與結腸癌患者的臨床生物學行為有關,可作為判斷結直腸癌預后的參考指標。
1 Migita T,Oda Y,Naito S,et al.Low expression of p27(Kip1)is associated with tumor size and poor prognosis in patients with renal cell carcinoma[J].Cancer,2002,94(4):973-979.
2 Li M,Li JY,Zhao AL,et al.Survival stratification panel of colorectal carcinoma with combined expression of carcinoembryonic antigen,matrix metalloproteinases-2,and p27 kip1 [J].Dis Colon Rectum,2007,50(11):1887-1898.
3 李玉華,孫煒,孫炯.卵巢上皮癌組織中p27蛋白的表達及其臨床意義[J].中國全科醫(yī)學,2009,12(7):1211.
4 Mitti ML,Calfano D,Troncone G,et al.Complex regnlalion of the cyclin-dependent kinase inhibitor p27kipl in thyroid cancer cells by the PIJK/AKT pathway:regulatim of p27kipI expression and localization[J].Am J Pathol,2005,166:737 -749.
5 Lindberg D,Akerstrom G,Westin G.Evaluation of CDKN2C/p18,CDKN1B/p27 and CDKN2B/p15 mRNA expression,and CpG methylation status in sporadic and MEN1-associated pancreatic endocrine tumours[J].Clin Endocrinol(Oxf),2008,68(2):271-277.
6 Auerkari EI.Methylation of tumor suppressor genes p16(INK4a),p27(Kip1)and E - cadherin in carcinogenesis[J].Oral Oncol,2006,42(1):5-13.
7 崔靜,李庚,千新來.P27基因甲基化與結直腸癌發(fā)生發(fā)展及臨床生物學行為的關系[J].新醫(yī)學,2005,36(3):145-147.
8 蔡瑜嬌,楊樺,李鵬.p27基因啟動子甲基化在乳腺癌中的研究[J].重慶醫(yī)學,2009,38(2):136-138.
9 王賀玲,張健,孫軍.5-Aza-CdR對胃癌細胞系BGC823生長及p27kipl基因異常甲基化的影響 [J].山東醫(yī)藥,2008,48(1):120-121.