張郁林,黃燁,周波,楊衛(wèi)東,聶軍,李奎,萬(wàn)沛
(宜昌市第一人民醫(yī)院心胸外科,湖北宜昌 443002)
缺血預(yù)處理(ischemia preconditioning,IPC)是機(jī)體一種內(nèi)源性保護(hù)機(jī)制,已在動(dòng)物和臨床病人[1]中得到證實(shí),但相關(guān)機(jī)制卻不明。大量研究證實(shí),蛋白激酶C(PKC)參與心肌等[2]多種器官的IPC保護(hù)效應(yīng),PKC是否參與肺IPC保護(hù)效應(yīng)目前還不能定論。本實(shí)驗(yàn)通過(guò)建立在體單側(cè)肺原位缺血/再灌注(I/R)模型[3],探討PKC在肺IPC保護(hù)中的作用,并探討IPC的可能保護(hù)機(jī)制。
大鼠以1%戊巴比妥鈉50 mg·kg-1腹腔麻醉,肌肉注射硫酸阿托品針劑0.2 ml,氣管插管后接小動(dòng)物呼吸機(jī),通氣壓力為 10 cmH2O(1 cmH2O=0.098 kPa),吸呼比為1∶2,頻率 70 次·min-1,潮氣量 10 ml,氧濃度100%。取右側(cè)臥位,經(jīng)左前側(cè)第5肋間開(kāi)胸,解剖出左肺門(mén)并留置阻斷帶。按 Sekido方法[4]復(fù)制在體大鼠肺I/R模型,即用結(jié)扎法完全阻斷左肺門(mén)一段時(shí)間后,恢復(fù)其血供和通氣,其間保持左肺濕潤(rùn),肝素100 U經(jīng)陰莖背靜脈注射,予生理鹽水皮下注射0.5 ml·h-1。取左全肺組織分別送檢。
雄性SD大鼠50只,體重200~400 g,由華中科技大學(xué)同濟(jì)醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供,隨機(jī)分5組。假手術(shù)(Sham)組(S組,n=10):左肺門(mén)游離后,不阻斷左肺門(mén),觀(guān)察165 min后取左全肺;I/R組(n=10):左肺門(mén)游離后,觀(guān)察45 min,再阻斷左肺門(mén)60 min,后開(kāi)放再灌注60 min,再取左全肺;IPC組(n=10):左肺門(mén)游離后,阻斷左肺門(mén)5 min,松開(kāi)10 min,重復(fù)3次(即IPC 45 min),以后同 I/R組;多黏菌素 B(polymyxin B,PMB)組(n=10):左肺門(mén)游離后觀(guān)察45 min,并在此時(shí)間內(nèi)經(jīng)尾靜脈注射PMB生理鹽水1 ml(PMB購(gòu)自古泰生物公司,批號(hào)0319,劑量為 2 mg·kg-1),以后同I/R組;IPC+PMB組(n=10):左肺門(mén)游離后,在45 min的IPC過(guò)程中靜脈注射PMB生理鹽水液1 ml(PMB同上),以后同I/R組。
超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)活力測(cè)定采用黃嘌呤氧化酶法:取肺組織勻漿液0.1 ml,加入反應(yīng)液后測(cè)定其在550 nm處的吸光度值,考馬斯亮藍(lán)蛋白測(cè)定法檢測(cè)肺組織勻漿液中蛋白濃度。丙二醛(malondialdehyde,MDA)含量測(cè)定采用巴比妥酸法:取肺組織勻漿液0.1 ml,加入反應(yīng)液后測(cè)定其在532 nm處的吸光度值,考馬斯亮藍(lán)蛋白測(cè)定法檢測(cè)肺組織勻漿液中蛋白濃度。
1.4.1 肺濕干重比(W/D)測(cè)定 實(shí)驗(yàn)?zāi)┤∷蜋z后剩余肺組織稱(chēng)重為肺濕重,于70℃烘箱烤24 h后稱(chēng)重為肺干重,計(jì)算出W/D。
1.4.2 肺泡損傷數(shù)比值測(cè)定 肺組織多聚甲醛固定,常規(guī)石蠟包埋切片,HE染色,每個(gè)標(biāo)本5張切片,任取1張,光鏡下觀(guān)察10~15個(gè)視野(200倍)的肺泡總數(shù),根據(jù)Murata方法[5]計(jì)算肺泡損傷數(shù),即每個(gè)肺泡中細(xì)胞總數(shù)(白細(xì)胞或紅細(xì)胞)超過(guò)2個(gè)以上視為肺損傷,損傷的肺泡數(shù)與總的肺泡計(jì)數(shù)的比值為肺泡損傷數(shù)比值(injured alveoli rate)。
實(shí)驗(yàn)?zāi)?,每組取4例,在肺門(mén)橫切面取1 mm×1 mm×1 mm大小肺組織2~3塊,用2.5%戊二醛預(yù)固定,1%鋨酸后固定,常規(guī)脫水、包埋、超薄切片,常規(guī)染色,透射電鏡(荷蘭FEI Tecnai G212型)觀(guān)察。
與S組相比,I/R組SOD活力下降、MDA含量升高、W/D升高、肺泡損傷數(shù)比值升高(均P<0.01);與I/R組比較,IPC組SOD活力升高、MDA含量降低、W/D降低、肺泡損傷數(shù)比值降低(均P<0.01);與I/R組比較,PMB組和IPC+PMB組各項(xiàng)指標(biāo)差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P>0.05)。見(jiàn)表1。
I/R組、PMB組和IPC+PMB組肺組織損傷明顯,光鏡下見(jiàn)肺泡間隔增寬明顯,肺泡間隔的毛細(xì)血管以及肺間質(zhì)內(nèi)的小靜脈擴(kuò)張、充血。肺間質(zhì)和肺泡腔有較多炎癥細(xì)胞滲出。肺泡腔內(nèi)充滿(mǎn)均勻紅染的水腫液,并可見(jiàn)多數(shù)“心衰竭細(xì)胞”,其胞質(zhì)內(nèi)含粗大的黃褐色的含鐵血黃素顆粒。電鏡下可見(jiàn)肺泡腔內(nèi)有密集絮狀物滲出和大量血細(xì)胞,毛細(xì)血管及肺內(nèi)小血管內(nèi)血細(xì)胞密集、擠壓。血管內(nèi)皮細(xì)胞、肺泡Ⅰ型上皮細(xì)胞以及氣-血屏障結(jié)構(gòu)大致正常,肺泡Ⅱ型上皮細(xì)胞數(shù)量減少,板層小體數(shù)量減少,多數(shù)空泡化,線(xiàn)粒體腫脹,部分微絨毛脫落。IPC組肺組織損傷較I/R組明顯減輕,S組肺組織結(jié)構(gòu)基本正常。見(jiàn)圖1~3。
表1 各組SOD活力、MDA含量、W/D和肺泡損傷數(shù)比值之間的比較(±s,n=10)
表1 各組SOD活力、MDA含量、W/D和肺泡損傷數(shù)比值之間的比較(±s,n=10)
a與S組比,P<0.01;b與I/R組比,P<0.01;c與IPC組比,P<0.01
組 別 SOD/U·mg-1·pro-1 MDA/nmol·mg-1·pro-1 W/D 肺泡損傷數(shù)比值26.644 4 ±6.216 2 I/R 組 1.710 6 ±0.100 5a 2.687 6 ±0.161 0a 6.147 8 ±0.119 1a 52.512 8 ±6.914 9a IPC 組 1.907 1 ±0.079 4b 2.154 8 ±0.058 9b 5.204 4 ±0.057 3b 27.151 7 ±4.812 6b PMB 組 1.670 2 ±0.104 6c 2.718 7 ±0.122 3c 6.064 9 ±0.127 1c 53.100 0 ±1.565 0c IPC+PMB 組 1.670 0 ±0.085 3c 2.653 1 ±0.149 1c 6.046 6 ±0.133 2c 53.483 1 ±2.200 4/%S 組 1.878 3 ±0.078 2 2.113 1 ±0.100 2 5.289 0 ±0.153 8 c
圖1 各組肺組織顯微鏡照片F(xiàn)ig 1 The microscope photographs of five groups,lung tissue
圖2 IPC對(duì)肺I/R的作用 ×5 000Fig 2 The effect of IPC on I/R injury of lung(×5 000)
IPC對(duì)組織器官I(mǎi)/R損傷有明顯的防治作用,IPC能夠啟動(dòng)機(jī)體的內(nèi)源性保護(hù)機(jī)制。然而,迄今為止對(duì)IPC如何啟動(dòng)組織器官的內(nèi)源性保護(hù)機(jī)制知之甚少,對(duì)肺的IPC研究起步較晚。既往有“腺苷學(xué)說(shuō)”、“熱休克蛋白學(xué)說(shuō)”、“α1受體學(xué)說(shuō)”、“氧自由基學(xué)說(shuō)”等從不同方面描述IPC的可能機(jī)制。本實(shí)驗(yàn)研究發(fā)現(xiàn),IPC能明顯減輕肺I/R時(shí)的氧化損傷,表現(xiàn)為肺組織SOD活力升高、MDA含量降低、肺濕干重比下降、肺泡損傷數(shù)比值下降以及病理形態(tài)學(xué)上的改善,這些結(jié)果與相關(guān)文獻(xiàn)報(bào)道[6-7]類(lèi)似。
已有的研究表明,IPC發(fā)揮作用首先引起一些活性物質(zhì)的釋放,如腺苷、緩激肽、兒茶酚胺、血管緊張素Ⅱ等,這些物質(zhì)能夠與其相應(yīng)受體結(jié)合,經(jīng)G蛋白耦聯(lián)激活細(xì)胞膜磷脂酶。活化的磷脂酶水解膜磷脂產(chǎn)生二酰甘油,與Ca2+協(xié)同作用使細(xì)胞內(nèi)的PKC移到細(xì)胞膜而被激活?;罨腜KC使相應(yīng)底物蛋白磷酸化而發(fā)揮作用。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,IPC使PKC活化后,可降低氧自由基水平,減輕脂質(zhì)過(guò)氧化反應(yīng);應(yīng)用PKC抑制劑PMB后,IPC保護(hù)作用消失,IPC+PMB組各檢測(cè)指標(biāo)和病理學(xué)改變與I/R組無(wú)明顯差異;而單獨(dú)使用PMB時(shí),PMB組各檢測(cè)指標(biāo)和病理學(xué)改變與I/R組也無(wú)明顯差異。這說(shuō)明PKC參與了肺IPC的保護(hù)作用。
PKC是一組廣泛分布的、具有單一肽鏈結(jié)構(gòu)的絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶,在細(xì)胞肌醇磷脂信號(hào)通路上起關(guān)鍵作用,在細(xì)胞生長(zhǎng)功能上也發(fā)揮重要作用。它們參與激素釋放、DNA及蛋白質(zhì)合成、細(xì)胞分泌、細(xì)胞增殖分化、肌肉收縮等生理過(guò)程。PKC可以促進(jìn)蛋白磷酸化是其介導(dǎo)IPC保護(hù)作用的基礎(chǔ)。許多內(nèi)源性物質(zhì),如腺苷、緩激肽、兒茶酚胺、血管緊張素Ⅱ、氧自由基等具有與PKC偶聯(lián)的特點(diǎn),可經(jīng)不同途徑激活PKC,活化的PKC作用于終末效應(yīng)子,如內(nèi)源性抗氧化酶、誘導(dǎo)型一氧化氮合酶、ATP敏感性鉀離子通道、熱休克蛋白等發(fā)揮保護(hù)作用。研究發(fā)現(xiàn),PKC可以促進(jìn)腺苷的合成[8],后者具有廣泛的生物學(xué)活性,可通過(guò)延緩能量消耗、減少中性粒細(xì)胞激活、減少超氧陰離子產(chǎn)生、抑制血小板聚集、刺激糖酵解等起到內(nèi)源性保護(hù)作用。PKC還可以激活線(xiàn)粒體ATP敏感性鉀通道[9],降低細(xì)胞內(nèi)鈣超載程度,維持鈣穩(wěn)態(tài),減少ATP的消耗,參與抗氧化反應(yīng)。PKC還能激活絲裂原活化蛋白酶家族[10],進(jìn)一步激活核轉(zhuǎn)錄因子,啟動(dòng)基因轉(zhuǎn)錄與蛋白合成,發(fā)揮保護(hù)作用,其可能機(jī)制為凋亡作用[11-12]、抗氧化、蛋白修復(fù)[13]、抑制白細(xì)胞黏附激活、擴(kuò)血管作用等。
目前發(fā)現(xiàn)PKC至少有12種同工酶亞型,分布在機(jī)體各組織細(xì)胞內(nèi),而且各種亞型在不同組織中的分布是不同的。已證實(shí)并非所有的 PKC亞型都參與了心肌IPC的保護(hù)作用,可能只是某些亞型發(fā)生了轉(zhuǎn)位、激活。Armstrong等[14]使用選擇性δ、ε亞型PKC激動(dòng)劑ingenol預(yù)處理,可產(chǎn)生心肌保護(hù)作用,而選擇性α亞型PKC激動(dòng)劑thymeleatoxin預(yù)處理,沒(méi)有產(chǎn)生有效的心肌保護(hù)作用。PKC是否參與肺IPC保護(hù)效應(yīng)目前還無(wú)定論。對(duì)肺IPC保護(hù)效應(yīng)的研究,王萬(wàn)鐵等[15-16]發(fā)現(xiàn),異丙酚、左旋精氨酸等通過(guò)上調(diào)肺組織PKC-α、δ、θ mRNA的表達(dá),對(duì)肺I/R損傷產(chǎn)生保護(hù)作用。另外,有報(bào)道[17-18]稱(chēng),PKC-α 介導(dǎo)急性肺損傷,應(yīng)用PKC-α抑制劑對(duì)再灌注后肺組織具有一定的保護(hù)作用。因此,PKC在肺IPC保護(hù)中的作用機(jī)制還值得進(jìn)一步研究。
[1]FEATHERSTONE R L,CHAMBERS D J,KELLY F J.Ischemic preconditioning enhances recovery of isolated rat lungs after hypothermic preservation[J].Ann Thorac Surg,2000,69(1):237-242.
[2]何斌,王志農(nóng),王軍,等.蛋白激酶C在心肌缺血預(yù)處理中的作用機(jī)制研究[J].中國(guó)體外循環(huán)雜志,2006,4(2):107-110.
[3]涂軍偉,徐正,王萬(wàn)鐵,等.蛋白激酶C在兔肺缺血預(yù)處理保護(hù)中的作用[J].溫州醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào),2003,33(2):89-91.
[4]SEKIDO N,MUKAIDA N,HARADA A,et al.Prevention of lung reperfusion injury in rabbits by a monoclonal antibody against interleukin-8[J].Nature,1993,365(6447):654-657.
[5]MURATA T,NAKAZAWA H,MORI I,et al.Reperfusion after a two hour period of pulmonary artery occlusion cause pulmo-nary necrosis[J].Am Rev Respir Dis,1992,146(4):1048-1053.
[6]羅萬(wàn)俊,陳勝喜,胡佳心,等.缺血預(yù)處理對(duì)肺再灌注損傷脂質(zhì)過(guò)氧化的影響[J].中國(guó)病理生理雜志,1999,15(9):841-843.
[7]陳志新,曾因明,方志源.缺血預(yù)處理對(duì)離體大鼠缺血再灌注氧化損傷的影響[J].江蘇臨床醫(yī)學(xué)雜志,2002,6(5):392-394.
[8]要瑞莉,李宏杰.蛋白激酶C在缺血預(yù)適應(yīng)中的作用[J].中國(guó)城鄉(xiāng)企業(yè)衛(wèi)生,2006,4:39-42.
[9]COSTA A D,GARLID K D,WEST I C,et al.Protein kinase G transmits the cardioprotective signal from cytosol to mitochondria[J].Cric Res,2005,97(97):329-336.
[10]何曉琴,吳黎明.蛋白激酶C及亞型與心肌缺血預(yù)處理及后處理[J].中國(guó)分子心臟病學(xué)雜志,2007,7(6):369-373.
[11]ZHANG X,BEDARD E L,POTTER R,et al.Mitogen-activated protein kinases regulate HO-1 gene transcription after ischemia-reperfusion lung injury[J].Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol,2002,283(4):815-829.
[12]SAKIYAMA S,DEPERROT M,HAN B,et al.Ischemia-reperfusion decreases protein phosphorylation and p38 mitogen-activated protein kinase phosphorylation in rat lung transplants[J].J Heart Lung Transplant,2003,22(3):338-346.
[13]盧彥珍,王庸晉,王曉麗,等.蛋白激酶C對(duì)缺血預(yù)處理家兔心肌熱休克蛋白70mRNA的影響[J].中國(guó)病理生理雜志,2002,18(4):406-409.
[14]ARMSTRONG S C,GANOTE C E.Preconditioning of isolated rabbit cardiomyocytes:effects of glycolytic blockade,phorbol esters,and ischaemia[J].Cardiovasc Res,1994,28:1700-1706.
[15]王萬(wàn)鐵,林麗娜,涂軍偉,等.異丙酚對(duì)兔肺缺血-再灌注損傷時(shí)蛋白激酶C基因表達(dá)的影響[J].中國(guó)病理生理雜志,2005,21(3):545-548.
[16]王萬(wàn)鐵,王方巖,陳壽權(quán),等.左旋精氨酸對(duì)兔肺缺血-再灌注損傷時(shí)蛋白激酶C基因表達(dá)的影響[J].中華急診醫(yī)學(xué)雜志,2006,15(12):1097-1101.
[17]柴軍,沈潔,吳秀英.七氟烷對(duì)缺血再灌注后大鼠肺組織PKC-α 表達(dá)的影響[J].中國(guó)醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2009,38(5):357-359.
[18]王方巖,張曉隆,徐正祄,等.虎杖苷抗肺缺血再灌注損傷作用及對(duì)磷酸化蛋白激酶C-α調(diào)節(jié)的實(shí)驗(yàn)研究[J].中國(guó)病理生理雜志,2008,24(2):384-387.