薛云,趙戰(zhàn)勤,裴潔,王臣,丁軻,程相朝
1 河南科技大學動物科技學院,洛陽 471003
2 河南科技大學醫(yī)學技術(shù)與工程學院,洛陽 471003
3 湖北省動物疫病預防控制中心,武漢 430064
支 氣 管 敗 血 波 氏 桿 菌 (Bordetella bronchiseptica,Bb) 是一種革蘭氏陰性需氧小桿菌,可廣泛感染多種哺乳動物,表現(xiàn)為呼吸道的急慢性炎癥[1]。在豬群中,Bb可引起豬發(fā)生萎縮性鼻炎(Atrophic rhinitis,AR) 和支氣管肺炎,世界豬群有25%~50%受感染,已成為豬的重要傳染病之一[2]。2003~2008年,筆者從全國各地3 506份有呼吸道癥狀的豬肺臟病料中分離到 652株 Bb,分離率高達18.6%,各省份之間沒有明顯差異,表明Bb在我國豬場廣泛流行和致病[3]。近年來發(fā)現(xiàn),Bb可從家畜等動物傳染給人類,并在免疫功能缺陷或低下的人群 (如AIDS患者) 體內(nèi)形成嚴重感染,因此引起高度關(guān)注[4]。
目前,用于預防和控制該病的疫苗主要有滅活菌苗和類毒素苗,其中類毒素苗免疫效果優(yōu)于滅活菌苗,不同型菌株的類毒素具有交叉保護[4]。皮膚壞死毒素 (Dermonecrotic toxin,DNT) 是 Bb定居于宿主上呼吸道所必需的致病因子,缺失 dnt基因的 Bb突變株無法導致豬發(fā)生支氣管肺炎和鼻甲骨損傷[5]。此外,DNT還通過損壞呼吸道上皮細胞而間接地促進Bb的附著作用[5-6]。DNT存在于胞漿內(nèi),不耐熱,對福爾馬林敏感,滅活后仍具有抗原性,可刺激機體產(chǎn)生抗毒素中和抗體[7]。然而,天然DNT的分泌量非常有限,不到菌體蛋白的0.8%[8],且純化工藝復雜,因此通過提純天然DNT來制備類毒素苗成本太高,不適合規(guī)?;a(chǎn)。本研究旨在通過分子生物學方法對毒素基因進行克隆、表達和生物學活性研究,為DNT的分子致病機理和新型亞單位疫苗的研究奠定基礎(chǔ)。
豬源 Bb強毒菌株 HH0809 (FHA+,PRN+,DNT+)[9]、大腸桿菌 DH5α和 BL21、載體質(zhì)粒pET-28a、HH0809株豬陽性血清由河南科技大學動物病原微生物實驗室保存;LB培養(yǎng)基購自美國BD公司;LA Taq DNA聚合酶、T4 DNA連接酶、限制性內(nèi)切酶等購自大連 TaKaRa公司;基因組提取試劑盒和UNIT-10柱式DNA膠回收試劑盒購自上海Sangon公司;His-band purification kit購自德國Novagen公司。天然DNT抗血清、辣根過氧化物酶標記的羊抗豬 IgG 和弗氏佐劑購自美國Sigma-Aldrich公司;新西蘭大白兔、5~6日齡BALB/c乳鼠由河南科技大學實驗動物中心提供。
利 用 HMMTOP 軟 件[10](http://www.cn. expasy.org/tools/) 對 GenBank上公布的 dnt基因(Accesion No. U59687) 編碼的氨基酸序列進行跨膜性預測,為 dnt的引物設(shè)計和高效表達提供理論依據(jù)。設(shè)計3對引物 (由北京AuGCT公司合成),分別引入BamHⅠ和Hind Ⅲ酶切位點 (下劃線部分),并在P2和P4中引入終止密碼子 (表1)。3對引物分別擴增其N端 (dntN)、中間部分 (dntM) 和C端(dntC) 的編碼區(qū)域 (圖1)。按試劑盒說明書提取Bb HH0809株基因組為模板,使用引物P1/P2進行PCR,擴增dntN片段并回收產(chǎn)物。使用BamHⅠ與Hind Ⅲ分別對PCR產(chǎn)物和pET-28a載體質(zhì)粒進行酶切、回收、連接構(gòu)建重組質(zhì)粒,命名為pET-dntN。將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α,篩選陽性克隆,提取質(zhì)粒,進行酶切鑒定和序列測定 (由大連 TaKaRa公司完成)。按同樣的方法使用引物P3/P4和P5/P6進行PCR并構(gòu)建重組質(zhì)粒 pET-dntM和 pET-dntC。最后利用dnt基因含有的酶切位點SmaⅠ和ScaⅠ將dntM 和dntC片段克隆到pET-dntN上構(gòu)建含有dnt整個編碼區(qū)的重組質(zhì)粒pET-dnt (圖1)。
將重組質(zhì)粒pET-dnt轉(zhuǎn)化大腸桿菌BL21,挑取單菌落于含有卡那霉素 (終濃度為50 mg/L) 的LB培養(yǎng)基中,37 ℃、225 r/min搖床培養(yǎng)至對數(shù)生長期時 (OD600=0.6~1.0),加入0.8 mmol/L IPTG (Isopropyl-β-D-thiogalactopyranoside) 誘導表達4 h。通過 12% SDS-PAGE分析蛋白的表達特性。應用His-band purification kit試劑盒對表達產(chǎn)物 (命名為His6-PRN) 進行純化。蛋白濃度通過分光光度計進行測定,純度經(jīng)SDS-PAGE電泳和Bio-Rad Quantity One program (美國Bio-Rad公司) 進行分析。對純化的各表達產(chǎn)物進行Western blotting分析,一抗為天然DNT抗血清 (購自美國Sigma-Aldrich公司),二抗為辣根過氧化物酶標記的羊抗豬IgG。
按文獻[6]所述方法,將Bb菌株HH0809在含有15%脫纖綿羊血的鮑-姜氏平板上培養(yǎng),并對其培養(yǎng)物進行天然DNT的提取,并按1.3所述方法進行濃度和純度分析。將重組蛋白His6-DNT和天然DNT均調(diào)整至濃度為100 mg/L,通過頸部皮下途徑分別注射 5只乳鼠 (50 μL/只)。按相同的方法將兩者的滅活溶液 (經(jīng)56 ℃水浴30 min) 以及無菌 PBS各注射 5只乳鼠為對照 (表 2)。觀察乳鼠皮膚壞死情況至48 h。接種部位僅出現(xiàn)小紅點判為輕微病變,接種部位出現(xiàn)直徑大于或等于1 cm的壞死灶判為嚴重病變,介于兩者之間的判為中度病變。
表1 實驗中所用引物Table 1 PCR primers used in this study
圖1 dnt基因的結(jié)構(gòu)及其分段克隆Fig. 1 Structure of the constructed dnt segments.
表2 重組蛋白His6-DNT的乳鼠皮膚壞死試驗結(jié)果Table 2 Dermonecrotic effects of His6-DNT in the infant mouse assay
將表達產(chǎn)物His6-DNT的蛋白質(zhì)溶液加入0.4%甲醛溶液,滅活 48 h,取滅活后的 His6-DNT蛋白150 μg與等體積弗氏完全佐劑均勻混合,皮下注射新西蘭大白兔,分別在 3、5、7周后各加強免疫 1次 (使用弗氏不完全佐劑)。在最后一次免疫后10 d進行心臟采血,分離血清,0.22 μm濾膜過濾除菌,?20 ℃保存?zhèn)溆谩⑼每笻is6-DNT血清0.5 mL與1.4中提取的天然DNT蛋白50 μg均勻混合,37 ℃孵育30 min。然后,將孵育后的混合物按1.4所述方法分別接種5只乳鼠 (50 μL/只) 并進行觀察。同時,設(shè)His6-DNT兔抗血清、天然DNT蛋白以及無菌PBS組為對照。
GenBank上公布的 dnt基因 (Accession No. U59687) 編碼區(qū)全長為4 356 bp,編碼1 451個氨基酸,HMMTOP軟件的分析結(jié)果表明,DNT的氨基酸序列存在1個跨膜區(qū),位于約第99~118氨基酸之間,對應于 DNT信號肽序列位置[6]。ProtParam軟件的分析結(jié)果表明,DNT的分子結(jié)構(gòu)式為C7186H11258N2040O2092S31,理論 pI值為 6.20,脂肪系數(shù)為94.83,不穩(wěn)定系數(shù)為40.75,屬于不穩(wěn)定型蛋白質(zhì)。
本研究中,將PCR產(chǎn)物進行0.8%瓊脂糖凝膠電泳檢測,表明成功擴增了 dnt基因的 3個片段dntN、dntM和dntC,擴增的片段大小分別為876 bp、1 854 bp和1 832 bp (圖2A)。酶切鑒定結(jié)果表明,構(gòu)建的 3個重組質(zhì)粒 pET-dntN、pET-dntM 和pET-dntC均正確 (圖2B)。最后利用dnt基因含有的酶切位點SmaⅠ和ScaⅠ將dntM和dntC片段克隆到pET-dntN上構(gòu)建含有dnt整個編碼區(qū)4 356 bp的重組質(zhì)粒pET-dnt。將pET-dnt進行BamHⅠ和Hind Ⅲ雙酶切,得到大小為5 000 bp和4 356 bp左右的2條帶,與預期DNA片段相符 (圖2C)。測序結(jié)果進一步表明dnt基因片段在pET-28a表達載體中得到正確連接。本研究克隆的 dnt全基因序列與 GenBank公布的3個序列U59687、AB020025、E17214的核苷酸序列同源性均在99.6%以上;有6個核苷酸發(fā)生突變,最終導致4個氨基酸發(fā)生改變。
SDS-PAGE結(jié)果表明 (圖3),含pET-dnt重組質(zhì)粒的大腸桿菌BL21在約145 kDa處有明顯的表達帶,以包涵體形式存在,與以前報道的該蛋白的分子量大小相符合[6]。pET-28a空載體對照沒有對應的表達帶。經(jīng)Bio-Rad Quantity One program進行分析,重組蛋白 His6-DNT的表達量占菌體總蛋白的42.3%。提取的包涵體經(jīng)過復性,并使用組氨酸融合蛋白純化試劑盒 His-band purification kit進行純化后,得到濃度為302.1 μg/mL、純度為93.2%的融合蛋白His6-DNT (圖3)。Western blotting分析表明,重組DNT蛋白His6-DNT能夠與天然DNT的抗血清發(fā)生特異性的免疫反應,空載體對照誘導物則不能(圖3)。這證實克隆基因片段得到正確表達,并具有良好的反應原性。
圖2 dnt基因的分段擴增及其重組質(zhì)粒的酶切鑒定Fig. 2 The amplification of dnt gene fragements and identification of the recombinant plasmids by enzyme digestion. (A) M: marker DL 2 000; 1, 3 and 5: PCR products of dntN, dntM, and dntC fragements; 2, 4, 6: negative control. (B) M1 and M2: marker DL 15 000 and DL 2 000; 1?4: enzyme digestion analysis of pET-dntN, pET-dntM, pET-dntC and pET-28a by BamHⅠand Hind Ⅲ , respectively. (C) M: marker DL 15 000; 1: pET-dnt digested with both BamHⅠand Hind Ⅲ; 2: pET-dnt digested with BamHⅠ.
圖3 表達產(chǎn)物的SDS-PAGE和Western blotting結(jié)果Fig. 3 SDS-PAGE and Western blotting analysis of the recombinant His6-DNT proteins. M: protein marker; 1 and 2: cell pellets and supernatants of Escherichia coli BL21 harboring pET-DNT plasmid; 3 and 4: crude lysates of BL21 harboring pET-DNT or pET-28a plasmid; 5: purified His6-DNT; 6 and 7: Western blotting of the purified His6-DNT and the PBS control with anti-DNT. His6-DNT proteins are indicated by the arrow.
乳鼠皮膚壞死試驗結(jié)果表明 (表 2),表達蛋白His6-DNT在48 h內(nèi)可以使5~6日齡乳鼠發(fā)生中度的皮膚壞死病變,天然毒素DNT則可使乳鼠全部發(fā)生嚴重病變。天然DNT和表達蛋白His6-DNT經(jīng)56 ℃水浴30 min滅活后則完全喪失了使乳鼠皮膚發(fā)生壞死的能力 (圖4)。注射無菌PBS的1組乳鼠也未出現(xiàn)任何皮膚壞死病變。這些試驗結(jié)果表明,雖然重組蛋白His6-DNT低于天然DNT的毒素活性,但仍具有導致乳鼠皮膚壞死的生物學毒性作用。
結(jié)果表明,天然DNT能導致乳鼠發(fā)生嚴重的皮膚壞死病變 (圖 5B)。但是,天然 DNT蛋白與His6-DNT兔抗血清混合孵育后,完全喪失了導致乳鼠皮膚壞死的能力,注射的5只乳鼠均沒有出現(xiàn)明顯病變 (圖5A)。這表明天然DNT與His6-DNT的兔抗血清發(fā)生了中和反應從而喪失了導致乳鼠皮膚壞死的生物學毒性作用。這也進一步證明,重組蛋白不僅具有Western blotting試驗中所顯現(xiàn)的良好反應原性,也具有較強的免疫原性。
圖4 重組蛋白His6-DNT能導致乳鼠皮膚壞死Fig. 4 Dermonecrotic effect of His6-DNT in the infant mice. (A) Inactived His6-DNT could not cause lesions (arrow). (B) Natural DNT could cause severe lesions. (C and D) His6-DNT could cause lesions. Lesion was showed after being wetted with PBS.
圖5 DNT的乳鼠皮膚壞死阻斷試驗結(jié)果Fig. 5 Inhibition of dermonecrotic effect of DNT in the infant mouse assay. (A) Natural DNT neutralized with rabbit anti-His6-DNT could not cause dermonecrotic effect (arrow). (B) Natural DNT could cause severe dermonecrotic effect (arrow).
Bb的dnt基因全長4 356 bp,國外學者均使用酶切基因組后雜交的方法獲取 dnt基因,尚未使用PCR方法。考慮到本研究若選用普通的 DNA聚合酶進行擴增,很難保證片段的保真度,故改用LA Taq DNA聚合酶擴增長片段,但擴增比較困難。最后采用分段擴增的方法,分三段擴增 dnt基因,再利用序列中的2個酶切位點SmaⅠ和ScaⅠ與載體的多克隆位點進行拼接,最終獲得4 356 bp的dnt全基因片段。序列分析表明,該dnt基因與GenBank上所報道的 3個dnt基因序列具有高度的同源性,無插入和缺失突變。
本研究是國內(nèi)首次在大腸桿菌中成功地用原核表達系統(tǒng)融合表達了 Bb完整的 dnt基因。SDS-PAGE結(jié)果表明,重組質(zhì)粒pET-dnt在大腸桿菌 BL21中誘導表達的產(chǎn)物 His6-DNT約占整個蛋白的 42.3%,表達量大且易于純化。而天然 DNT毒素在 Bb的表達量僅占 0.8%,且難于純化[8]。Western blotting檢測結(jié)果顯示,該重組蛋白具有良好的免疫學活性,這為研制開發(fā)基因工程疫苗提供了可靠的試驗基礎(chǔ)。dnt基因的高效表達為進一步研究 DNT毒素蛋白的結(jié)構(gòu)特點、理化特性打下了基礎(chǔ),而且對于毒素作用機制以及致病機理的研究提供了試驗材料。
乳鼠皮膚壞死試驗結(jié)果顯示,雖然重組His6-DNT低于天然DNT毒素的生物學毒性,但仍然能夠?qū)е氯槭蟀l(fā)生中等程度的皮膚壞死。重組蛋白以包涵體形式存在是其活性降低的一個主要原因,即使經(jīng)過變性、復性處理,活性只能部分恢復。這些因素都會影響表達產(chǎn)物 His6-DNT的生物學活性。在乳鼠皮膚壞死阻斷試驗中,His6-DNT的兔抗血清能夠中和天然 DNT使其失去針對乳鼠的生物學毒性作用。這表明重組蛋白也具有良好的免疫原性。同時也預示著,重組 DNT抗原不僅可用于主動免疫預防,也可通過制備抗血清用于波氏菌病的治療。
REFERENCES
[1] United States Department of Agriculture. Part II: reference of swine health and health management in the United States. CO: National Animal Health Monitoring System, Fort Collins. 2000: 112?128.
[2] Straw BE, Zimmerman JJ, D’Allaire S, et al. Diseases of Swine. 9th ed. Ames, IA: Wiley-Blackwell, 2006.
[3] Zhao ZQ, Wang C, Xue Y, et al. The occurrence of Bordetella bronchiseptica in pigs with clinical respiratory disease. Vet J, 2011 188(3): 337?340.
[4] Mattoo S, Cherry JD. Molecular pathogenesis, epidemiology, and clinical manifestations of respiratory infections due to Bordetella pertussis and other Bordetella subspecies. Clin Microbiol Rev, 2005, 18(2): 326?382.
[5] Brockmeier SL, Register KB, Magyar T, et al. Role of the dermonecrotic toxin of Bordetella bronchiseptica in the pathogenesis of respiratory disease in swine. Infect Immun, 2002, 70(2): 481?490.
[6] Pullinger GD, Adams TE, Mullan PB, et al. Cloning, expression, and molecular characterization of the dermonecrotic toxin gene of Bordetella spp. Infect Immun, 1996, 64(10): 4163?4171.
[7] Chen PY. Diseases of Animals. 5th ed. Beijing: Chinese Agriculture Press, 2008: 209?269.陳溥言. 獸醫(yī)傳染病學. 5版. 北京: 中國農(nóng)業(yè)出版社, 2008: 209?269.
[8] Horiguchi Y, Nakai T, Kume K. Purification and characterization of Bordetella bronchiseptica dermonecrotic toxin. Microb Pathog, 1989, 6(5): 361?368
[9] Zhao ZQ, Pei J, Xue Y, et al. Isolation, identification and characterization for Bordetella bronchiseptica from diseased pigs. Sci Agri Sin, 2008, 41(12): 4209?4217.趙戰(zhàn)勤, 裴潔, 薛云, 等. 豬源支氣管敗血波氏桿菌的分離鑒定及生物學特性研究. 中國農(nóng)業(yè)科學, 2008, 41(12): 4209?4217.
[10] Tusnády GE, Simon I. The HMMTOP transmembrane topology prediction server. Bioinformatics, 2001, 17(9): 849?850.