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    巴豆發(fā)酵品與生巴豆、巴豆霜中毒性成分的含量比較Δ

    2011-01-09 05:32:22劉春美吳曉峰蔣亞平南京中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院南京市210029
    中國(guó)藥房 2011年43期
    關(guān)鍵詞:巴豆甲酯脂肪

    劉春美,吳曉峰,潘 揚(yáng),蔣亞平,張 弦(南京中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院,南京市 210029)

    巴豆(Crotonis Fructus)為大戟科植物巴豆Croton tiglium L.的成熟果實(shí),載于現(xiàn)行《中國(guó)藥典》中[1]。巴豆大毒,其毒性主要為兩類成分,一類是脂肪油(巴豆油),含量達(dá)60%,既是毒性成分又是有效成分,口服后在腸內(nèi)析出游離巴豆酸,使腸道分泌和蠕動(dòng)增強(qiáng),產(chǎn)生峻瀉;另一類是蛋白質(zhì)(巴豆毒素),能溶解紅血球,使局部細(xì)胞壞死[2,3]。由于遇熱可使這兩類毒性成分含量降低或變性失活,因此目前通常采用取仁通過蒸、煮制熟后去油制霜(巴豆霜)的炮制方法,對(duì)緩和巴豆的毒性有積極意義[4,5]。但傳統(tǒng)炮制法操作較煩瑣,霜內(nèi)含油量多少均憑經(jīng)驗(yàn)觀察,各地結(jié)果不一,差距很大,無(wú)法保證用藥安全[6]。在應(yīng)用巴豆制品治病的過程中,由于其有效劑量與中毒劑量比較接近,安全系數(shù)低,在無(wú)血藥濃度監(jiān)測(cè)的情況下,如用之不當(dāng)或服用過量,不但起不到藥物應(yīng)發(fā)揮的作用,有時(shí)反而還可能引起中毒甚至有生命危險(xiǎn)[7,8]。鑒于炮制對(duì)巴豆減毒存在的缺陷,有必要尋找新的解決這類問題的好途徑。

    “雙向發(fā)酵”是南京中醫(yī)藥大學(xué)藥用菌與中藥生物技術(shù)研究所創(chuàng)立的一種使藥用真菌與藥材間組合進(jìn)行固體發(fā)酵的方法[9],它為毒性中藥減毒開辟了一條新途徑[10,11]。本試驗(yàn)對(duì)靈芝菌與白僵菌2種巴豆發(fā)酵品與生巴豆及傳統(tǒng)炮制品(巴豆霜)中毒性成分總蛋白和脂肪油含量及主要成分的含量進(jìn)行比較,結(jié)果表明,巴豆經(jīng)靈芝菌和白僵菌發(fā)酵后,其毒性成分脂肪油和總蛋白的含量明顯降低,且均低于巴豆霜;經(jīng)氣相色譜-質(zhì)譜(GC-MS)分析,巴豆發(fā)酵品、生巴豆和巴豆霜的脂肪油中共鑒定出48種成分。與生巴豆相比,2種發(fā)酵品脂肪油成分的組成和相對(duì)含量產(chǎn)生了明顯變化;且出現(xiàn)了新成分,其中靈巴菌質(zhì)和白巴菌質(zhì)中各有5種。以上結(jié)果可為發(fā)酵對(duì)巴豆的“去毒存效”奠定物質(zhì)基礎(chǔ)。

    1 儀器與材料

    1.1 儀器

    Agilent 6890N型GC儀、5973N型MS檢測(cè)器、7683 serise自動(dòng)進(jìn)樣器、Agilent色譜工作站配NIST05標(biāo)準(zhǔn)MS檢索庫(kù)(PaloAlto,CA,USA);UV-2401紫外分光光度計(jì)(日本島津公司);AE 240電子天平(瑞士Mettler Toledo公司);HH-4數(shù)顯恒溫水浴鍋(常州國(guó)華電器有限公司);202型臺(tái)式恒溫干燥箱(上海索譜儀器有限公司);THZ-D臺(tái)式恒溫振蕩器(太倉(cāng)市實(shí)驗(yàn)設(shè)備廠)。

    1.2 試藥

    生巴豆產(chǎn)自云南,經(jīng)南京中醫(yī)藥大學(xué)陳建偉教授鑒定為大戟科植物C.tiglium L.的果實(shí),標(biāo)本保存于南京中醫(yī)藥大學(xué)藥用菌與中藥生物技術(shù)研究所(批號(hào):20081145);牛血清白蛋白(BSA,美國(guó)Sigma公司進(jìn)口分裝,批號(hào):A8010);考馬斯亮藍(lán)G-250(美國(guó)Amresco公司進(jìn)口分裝,批號(hào):0615);95%乙醇、磷酸均為分析純。

    1.3 菌種

    靈芝菌[Ganoderma lucidum(Curtis:Fr.)P.Karst.]和白僵菌[Beauveria bassiana(Bals.)Vuill]均由南京中醫(yī)藥大學(xué)藥用菌與中藥生物技術(shù)研究所分離、貯藏和復(fù)壯。

    2 方法

    2.1 試液的配制

    2.1.1 考馬斯亮藍(lán)G-250溶液的制備[12]精密稱取考馬斯亮藍(lán)G-250 100 mg,加入95%乙醇50 mL,再加入85%(W/V)磷酸100 mL,用蒸餾水定容至1 000 mL,即得。2.1.2 牛血清白蛋白標(biāo)準(zhǔn)貯備液的制備 精密稱取牛血清白蛋白100 mg,用少量蒸餾水溶解并定容至1 000 mL,即得濃度為0.1 mg·mL-1的牛血清白蛋白標(biāo)準(zhǔn)貯備液。

    2.2 靈巴菌質(zhì)和白巴菌質(zhì)的制備

    按固體發(fā)酵的生產(chǎn)工藝進(jìn)行操作[13]。將生巴豆(果實(shí))粉碎成粗粒(過10目篩),加適量水濕潤(rùn),填裝試管,混合均勻,扎口,121℃高壓滅菌50 min,冷卻;從菌種斜面上分別切取綠豆粒大小的靈芝菌和白僵菌菌絲體(帶培養(yǎng)基)各1塊,移入待發(fā)酵生巴豆的表面(使二者有接觸),扎口,置培養(yǎng)箱中,于(27±2)℃下恒溫培養(yǎng),發(fā)酵30 d后分別掏取試管中的發(fā)酵物,60℃下干燥4~6 h,即分別得靈巴菌質(zhì)和白巴菌質(zhì)。

    2.3 脂肪油含量測(cè)定

    取上述各巴豆樣品粗粒2 g,粉碎成粗粉(過20目篩),分別精密稱定,置索氏提取器中,加乙醚100 mL,水浴回流提取至脂肪油提盡(約8 h),收集提取液,置已干燥至恒重的蒸發(fā)皿中,于水浴上低溫?fù)]去溶劑,100℃干燥1 h,移至干燥器中冷卻30 min,精密稱定,計(jì)算樣品中脂肪油含量[1]。

    2.4 總蛋白含量測(cè)定[12]

    2.4.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備 精密吸取牛血清白蛋白標(biāo)準(zhǔn)貯備液0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mL,分別置10 mL刻度試管中,先用蒸餾水補(bǔ)足體積至1 mL,搖勻,加入考馬斯亮藍(lán)G-250顯色劑5 mL,混勻,放置5 min。然后以第一份為空白對(duì)照,于593 nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度。以濃度(c,mg·mL-1)為橫坐標(biāo),吸光度(A)為縱坐標(biāo),制備標(biāo)準(zhǔn)曲線,計(jì)算得回歸方程為A=6.990 89c-0.000 91(r=0.999 6)。結(jié)果表明,總蛋白濃度在0.02~0.10 mg·mL-1范圍內(nèi)與吸光度呈良好的線性關(guān)系。

    2.4.2 樣品含量測(cè)定 精密稱取各樣品0.5 g,置50 mL容量瓶中,加20 mL蒸餾水,置震蕩器中震蕩提取2 h(150 r·min-1),3 600 r·min-1離心10 min,濾過,濾渣再加20 mL蒸餾水,置震蕩器中震蕩提取1 h(150 r·min-1),3 600 r·min-1離心10 min,合并濾液,定容至50 mL容量瓶中,即得樣品溶液。精密吸取各樣品溶液1.0 mL,按“2.4.1”項(xiàng)下方法操作,于593 nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度,代入標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算出樣品中總蛋白含量(%)。

    2.5 脂肪油的GC-MS測(cè)定

    2.5.1 儀器工作條件 色譜柱:HP-5MS(30 m×0.25 mm×0.25 μm);進(jìn)樣口溫度:250℃;載氣:氦氣(純度99.99%),流速:1.0 mL·min-1;分流模式進(jìn)樣,分流比為20∶1;程序升溫:初始溫度設(shè)定為50℃,以5℃·min-1升至210℃,維持3 min,再以5℃·min-1升溫至250℃,維持5 min。質(zhì)譜電離方式:EI源;離子源溫度:230℃;四級(jí)桿溫度:150℃;接口溫度:280℃;溶劑延遲時(shí)間:2.5 min;電子倍增器電壓:1 623 V;質(zhì)量掃描范圍:m/z 40~500。

    2.5.2 樣品的GC-MS分析 精密稱取巴豆油70 mg,加6 mL硫酸-甲醇(1∶10)混合溶液,于60℃水浴回流4 h(甲酯化),加10 mL水使樣品液冷卻,再加6 mL正己烷振蕩萃取,分離上清液,過濾,無(wú)水硫酸鈉干燥,低溫濃縮至干。殘?jiān)颖谷芙獠⒍ㄈ葜?0 mL,有機(jī)相針式濾器(13 mm×0.45 μm)過濾,低溫密閉保存。取樣品溶液1 μL,按儀器工作條件注入色譜儀進(jìn)行測(cè)定;對(duì)各樣品總離子流圖中化學(xué)色譜峰通過GC-MS分析工作站NIST標(biāo)準(zhǔn)圖庫(kù)進(jìn)行檢索并參照有關(guān)文獻(xiàn)[14,15]進(jìn)行初步鑒定,按峰面積歸一化法計(jì)算各組分相對(duì)百分含量。

    3 結(jié)果

    3.1 脂肪油和總蛋白的含量測(cè)定

    各樣品中脂肪油測(cè)定結(jié)果表明:生巴豆>巴豆霜>靈巴菌質(zhì)>白巴菌質(zhì);總蛋白測(cè)定結(jié)果表明:生巴豆>巴豆霜>白巴菌質(zhì)>靈巴菌質(zhì)。提示巴豆經(jīng)靈芝菌和白僵菌發(fā)酵后,其毒性物質(zhì)脂肪油和蛋白質(zhì)的含量明顯降低,且均低于巴豆霜,詳見表1。

    表1 生巴豆、巴豆霜、靈巴菌質(zhì)和白巴菌質(zhì)中脂肪油與總蛋白含量測(cè)定結(jié)果Tab 1 Fatty oil and total protein contents in crude C.tiglium,defatted C.tiglium seed powders,LBJZ and BBJZ

    3.2 脂肪油成分的GC-MS分析

    GC-MS分析結(jié)果顯示,從生巴豆、巴豆霜、靈巴菌質(zhì)、白巴菌質(zhì)中分別鑒定出39、24、36、42種成分,其中歸一化相對(duì)含量>1%的共有16種化合物:生巴豆占11種,巴豆霜有12種,靈巴菌質(zhì)占8種,白巴菌質(zhì)占13種。在2種發(fā)酵品中還發(fā)現(xiàn)有新出現(xiàn)的成分,其中靈巴菌質(zhì)有5種,分別為4-癸烯酸甲酯、十五酸甲酯、7,10-十六碳二烯酸甲酯、7-十六碳烯酸甲酯、(Z)-9-十六碳烯酸甲酯;白巴菌質(zhì)也有5種,分別為壬醛、4-癸烯酸甲酯、十四烷酸、十五酸甲酯、7-十六碳烯酸甲酯。而生巴豆中的十九(烷)酸甲酯則未在發(fā)酵品中發(fā)現(xiàn)。各樣品脂肪油GC總離子流圖見圖1;各成分定性定量分析結(jié)果見表2。

    圖1 各樣品脂肪油GC的總離子流圖(峰號(hào)參照表2)A.巴豆;B.巴豆霜;C.靈巴菌質(zhì);D.白巴菌質(zhì)Fig 1 TIC of GC chromatograms of Fatty oil of samples(peak number referring to table 2)A.crude C.tiglium;B.defatted C.tiglium seed powders;C.LBJZ;D.BBJZ

    表2 生巴豆、巴豆霜、靈巴菌質(zhì)和白巴菌質(zhì)脂肪油成分的定性定量分析結(jié)果Tab 2 Qualitative and quantitative analysis of the fatty oils in crude C.tiglium,defatted C.tiglium seed powders,LBJZ and BBJZ

    續(xù)表2Continued tab 2

    4 討論

    巴豆經(jīng)靈芝菌、白僵菌雙向固體發(fā)酵后,其毒性成分脂肪油與總蛋白含量均有所下降,且低于巴豆傳統(tǒng)炮制品巴豆霜。所得脂肪油甲酯化后經(jīng)GC-MS法分析結(jié)果表明,靈巴菌質(zhì)和白巴菌質(zhì)與生巴豆及其炮制品相比,無(wú)論在脂肪油成分種類還是相對(duì)含量上均存在一定差異。這為進(jìn)一步探討巴豆發(fā)酵品“去毒存效”的物質(zhì)基礎(chǔ)提供了科學(xué)依據(jù)。至于巴豆中脂肪油與蛋白質(zhì)組成成分變化同其藥效之間的相關(guān)性及其生物轉(zhuǎn)化的機(jī)制有待于進(jìn)一步研究。

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