基質(zhì)輔助激光解吸電離質(zhì)譜和電噴霧電離質(zhì)譜在辣根過(guò)氧化物酶糖肽結(jié)構(gòu)分析中的應(yīng)用

陳瑤函, 晏國(guó)全, 周新文, 楊芃原＊

(1.復(fù)旦大學(xué)化學(xué)系,上海200032;2.復(fù)旦大學(xué)生物醫(yī)學(xué)研究院,上海200032)

基質(zhì)輔助激光解吸電離質(zhì)譜和電噴霧電離質(zhì)譜在辣根過(guò)氧化物酶糖肽結(jié)構(gòu)分析中的應(yīng)用

陳瑤函1,2, 晏國(guó)全1, 周新文2, 楊芃原1,2＊

(1.復(fù)旦大學(xué)化學(xué)系,上海200032;2.復(fù)旦大學(xué)生物醫(yī)學(xué)研究院,上海200032)

糖鏈結(jié)構(gòu)的質(zhì)譜解析是今后糖蛋白分析中的重要研究?jī)?nèi)容,其中完整糖肽的分析,由于可以同時(shí)獲得糖基化位點(diǎn)和對(duì)應(yīng)糖鏈的結(jié)構(gòu)信息,更具有重要意義和研究前景。本工作對(duì)質(zhì)譜軟電離技術(shù)在完整糖肽分析中的應(yīng)用進(jìn)行了研究,其中包括了基質(zhì)輔助激光解吸電離(matrix-assisted laser desorption ionization,MALD I)和電噴霧電離(electrosp ray ionization,ESI)技術(shù)。通過(guò)平行使用兩種串聯(lián)質(zhì)譜(tandem mass spectrometry,MS/MS)分析策略:MALD I-MS/MS和ESI-MS/MS對(duì)目標(biāo)糖蛋白——辣根過(guò)氧化物酶進(jìn)行分析,并討論了其互補(bǔ)性。結(jié)果表明,MALD I和ESI技術(shù)各有優(yōu)劣,結(jié)合串聯(lián)質(zhì)譜分析,可獲得糖肽的糖鏈結(jié)構(gòu)信息;兩條路線互補(bǔ)使用,在揭示蛋白質(zhì)糖基化修飾(位點(diǎn)和結(jié)構(gòu))的研究中十分必要。

基質(zhì)輔助激光解吸電離質(zhì)譜;電噴霧電離質(zhì)譜;串聯(lián)質(zhì)譜;液相色譜;辣根過(guò)氧化物酶;糖肽

Abstract:The mass spectrometric analysis of glycan composition and structure is a difficult but essential part in future study following the present glycoprotein identification.Intactgly copeptides analysis is an attracting field,in considering its capability to provide glycosite and corresponding glycan structure information at the same time.mass spectrometry has been proven to be an important and a key tool for glycan analysis over the past few years.Making use of two soft ionization techniques—matrix-assisted laser desorp tion ionization(MALD I)and electrospray ionization(ESI),through tandem mass spectrometry(MS/MS)analysis,the information for glycans of the glycopep tides can be obtained in the investigation.Meanwhile,by comparing the MALD I-MS/MS and ESI-MS/MS app roaches using model glycoprotein(horseradish peroxidase,HRP),the complementary results have been verified experimentally.We believe that the combination of the two techniques is necessary and will provide useful information for the understanding of protein glycosylation.

Key words:matrix-assistedlaser desorp tionionization(MALD I);electrosp rayionization(ESI);tandem mass spectrometry(MS/MS);liquid Chromatography(LC);horseradish peroxidase;glycopep tide

蛋白質(zhì)的糖基化是生物體中最普遍和最重要的蛋白質(zhì)翻譯后修飾之一,人體中大約有50%的蛋白質(zhì)發(fā)生糖基化[1]。糖基化與蛋白質(zhì)的物理化學(xué)性質(zhì)、生物功能密切相關(guān),涉及蛋白質(zhì)折疊、定位、信號(hào)傳導(dǎo)、細(xì)胞黏附等等生物過(guò)程的眾多方面。一些疾病也和蛋白質(zhì)的糖基化水平、糖鏈結(jié)構(gòu)的變化相關(guān)[2,3]。糖蛋白的研究正得到越來(lái)越多的關(guān)注。

目前研究較多的糖基化蛋白質(zhì)主要是N-鏈接糖蛋白和O-鏈接糖蛋白。前者的糖基化發(fā)生在氨基酸序列Asn-Xxx-Ser/Thr(Xxx≠Pro)的Asn殘基上,糖鏈具有由2個(gè)乙酰葡糖胺(N-acetylglucosam ine,G lcNAc)和3個(gè)甘露糖(m annose,M an)組成的五糖核心結(jié)構(gòu);后者發(fā)生在Ser或Thr殘基上,沒(méi)有明顯的氨基酸序列特征,且糖鏈核心結(jié)構(gòu)不單一。蛋白質(zhì)的糖基化具有宏觀和微觀的不均一性,即糖基化位點(diǎn)的多樣性以及同一位點(diǎn)糖鏈結(jié)構(gòu)的多樣性,這都增加了糖蛋白研究的難度。

糖鏈結(jié)構(gòu)的質(zhì)譜分析方式主要有兩種:一種是將已從蛋白質(zhì)或肽段上切除的糖鏈進(jìn)行衍生化,通過(guò)凝集素、色譜、質(zhì)譜等手段進(jìn)行分析,即糖組學(xué)(glycomics)分析;另一種方式不將糖鏈與蛋白質(zhì)或肽段分離,直接進(jìn)行完整的糖肽的串聯(lián)質(zhì)譜分析(tandem mass spectrometry,MS/MS),獲得肽段序列和糖鏈結(jié)構(gòu)信息。前者可以針對(duì)性地對(duì)某類糖型(pattern)進(jìn)行研究,或者對(duì)整個(gè)體系中某些糖型的變化趨勢(shì)進(jìn)行反映,現(xiàn)已形成大量的研究成果[9-11];后者可以將位點(diǎn)和糖鏈結(jié)構(gòu)對(duì)應(yīng)起來(lái)[12,13],提供了解糖鏈與蛋白質(zhì)功能關(guān)系的重要信息,但是由于受到分離方式、富集特異性以及糖肽在質(zhì)譜中響應(yīng)等的限制,目前該領(lǐng)域還處在不斷的發(fā)展之中,實(shí)現(xiàn)高通量的分析仍有距離[14]。

鑒于從完整糖肽獲得糖基化位點(diǎn)和結(jié)構(gòu)信息的重要性,我們對(duì)最常用的兩種軟電離離子化方式在完整糖肽分析中的應(yīng)用進(jìn)行了比較。采用MALD IMS/MS和LC/ESI-MS/MS兩條路線,用一個(gè)具有多個(gè)糖基化位點(diǎn)的糖蛋白——辣根過(guò)氧化物酶(horseradish peroxidase,HRP)作為測(cè)試對(duì)象,目標(biāo)是準(zhǔn)確、詳盡地獲得酶解產(chǎn)物中的糖基化信息,以對(duì)實(shí)際樣品中目標(biāo)糖蛋白的研究進(jìn)行指導(dǎo)。結(jié)果表明,MALD I和ESI兩種模式均有其優(yōu)點(diǎn),但要全面獲得糖肽信息,兩種方法的結(jié)合使用是十分必要的。

1 實(shí)驗(yàn)部分

1.1 試劑與儀器

標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)辣根過(guò)氧化物酶、酶解用碳酸氫銨(NH4HCO3)、2,5-二羥基苯甲酸(2,5-dihydroxybenzoic acid,DHB)均購(gòu)自Sigm a-A ldrich公司。測(cè)序級(jí)胰蛋白酶(sequencing grade modified trypsin)購(gòu)自Prom ega公司。甲酸、三氟乙酸購(gòu)自Fluka公司。乙腈購(gòu)自Fisher Scientific公司。實(shí)驗(yàn)用水為M illi-Q Filtration System(M illipore公司)二次純化水。其他試劑若無(wú)特別說(shuō)明均為國(guó)產(chǎn)分析純。

AX IMA-Q ITTMMALD I TO F MS購(gòu)自Shimadzu Biotech公司(Kyoto,Japan)。LTQ-O rbitrap XL System購(gòu)自Therm o Electron公司(B rem en,Germ any)。

1.2 樣品前處理

標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)HRP溶解于25mmol/L NH4HCO3中,使蛋白質(zhì)的終質(zhì)量濃度為50～100ng/μL,熱變性[15]。溶液冷卻后,加入胰蛋白酶(按照胰蛋白酶與標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)質(zhì)量比為1∶50的比例加入),于37℃下酶解過(guò)夜。將酶解溶液真空離心干燥,以備后續(xù)實(shí)驗(yàn)使用。

1.3 色譜和質(zhì)譜條件

MALD I質(zhì)譜分析在AX IMA-Q ITTMMALD I TO F MS上進(jìn)行。DHB溶解于含0.1%(體積分?jǐn)?shù),下同)三氟乙酸的30%乙腈水溶液中,終質(zhì)量濃度為12.5m g/mL,作為基質(zhì)。點(diǎn)樣方式選擇“基質(zhì)-樣品-基質(zhì)”式[15]。另外,為了提高每次實(shí)驗(yàn)樣品點(diǎn)之間的重復(fù)性,在最后一層基質(zhì)結(jié)晶以后,用小于基質(zhì)體積的乙醇對(duì)樣品點(diǎn)進(jìn)行重結(jié)晶,以提高結(jié)晶的均一性[16]。MALD I質(zhì)量掃描范圍分為m/z750+,m/z2 000+,m/z3 000+幾個(gè)區(qū)域,依據(jù)母離子和碎片離子的質(zhì)量選擇最佳的質(zhì)量掃描范圍。

ESI質(zhì)譜分析在LTQ-O rbitrap XL System s上進(jìn)行。真空離心干燥的蛋白酶解肽段溶于0.1%甲酸水溶液后上樣,通過(guò)Waters公司的nanoACQUITY U PLC BEH C18柱(200mm×75μm,1.7 μm)分離后,進(jìn)行在線電噴霧串聯(lián)質(zhì)譜分析。流動(dòng)相A為含0.1%甲酸的水,流動(dòng)相B為含0.1%甲酸的乙腈,梯度洗脫程序?yàn)?0m in內(nèi)流動(dòng)相B的體積分?jǐn)?shù)由初始的5%上升至最終的50%,流速為300 nL/m in。肽段串級(jí)分析為data-dependent模式(data-dependentMS/MS acquisition),選擇信號(hào)強(qiáng)度在前6位的母離子,動(dòng)態(tài)排除0.5m in。

2 結(jié)果與討論

由于研究目標(biāo)是準(zhǔn)確、詳盡地獲得目標(biāo)蛋白的糖基化信息以對(duì)實(shí)際樣品的研究進(jìn)行指導(dǎo),因此在對(duì)HRP進(jìn)行分析時(shí),將其看作一個(gè)經(jīng)過(guò)分離得到的、確定發(fā)生N-糖基化的目標(biāo)蛋白質(zhì),且蛋白質(zhì)的序列已知(質(zhì)譜鑒定,此處略),后續(xù)的糖肽結(jié)構(gòu)分析在此基礎(chǔ)上進(jìn)行。

2.1 MALD I-M S/M S糖肽分析

對(duì)于已知蛋白質(zhì)的糖肽,MALD I-MS/MS分析中未進(jìn)行糖肽水平上的富集,關(guān)鍵是在肽質(zhì)譜指紋(pep tide mass fingerp rint,PM F)圖譜中尋找糖肽并手動(dòng)進(jìn)行串聯(lián)質(zhì)譜分析。研究從已知的蛋白質(zhì)序列入手,找出包含潛在糖基化位點(diǎn)的理論酶解肽段,在大于這些理論肽段相對(duì)分子質(zhì)量(Mr)的范圍內(nèi)進(jìn)行PM F的篩選。對(duì)于N-糖基化,糖鏈的存在一般會(huì)造成至少892(五糖核心Mr)的Mr增量。基于這種思路,我們對(duì)大量的在一級(jí)譜圖中有足夠信號(hào)強(qiáng)度的質(zhì)譜峰進(jìn)行了串聯(lián)質(zhì)譜分析。結(jié)果表明,具有特征糖鏈碎裂的MS/MS譜圖基本來(lái)自m/z2 000+范圍。值得說(shuō)明的是,HRP無(wú)法用常見(jiàn)的糖苷酶PNGase F切除糖鏈的N-糖蛋白,因此尋找它的糖肽比較繁瑣(或需選用其他的糖苷水解酶)。對(duì)于其他PNGase F酶可以發(fā)揮作用的糖蛋白,對(duì)比其切除糖鏈前后的PM F譜圖,可以較快捷地尋找其糖肽。

在CID(collision induced dissociation)模式下,糖苷鍵比肽鍵更易碎裂。糖肽的最終確定是根據(jù)MALD I-MS/MS分析中糖鏈的碎裂特征實(shí)現(xiàn)的[17-19]。圖1列舉了兩張?zhí)请拇?lián)質(zhì)譜圖,它們反映了將MALD I-MS/MS用于糖肽分析時(shí)產(chǎn)生的普遍特征。組成糖鏈的單糖具有特定的Mr,產(chǎn)生了特征質(zhì)譜峰間距(N-乙酰葡萄糖胺(GlcNAc,203),甘露糖(m annose,162),海藻糖(fucose,146),木糖(xylose,132)等),如圖1中兩譜圖峰間水平箭頭上方數(shù)值標(biāo)示。與糖基化位點(diǎn)Asn直接連接的GlcNAc(inner-most GlcNAc),在串聯(lián)質(zhì)譜分析時(shí)發(fā)生跨環(huán)斷裂(cross-ring cleavage)會(huì)形成具有特定的質(zhì)量差(83和120)的3個(gè)連續(xù)峰,如圖1中兩譜圖中標(biāo)注為P,P＊,P-GlcNAc的質(zhì)譜峰,分別代表了上述3個(gè)特征連續(xù)峰。Mr最小者(P)即可指示該糖肽肽段部分的Mr,若與預(yù)測(cè)的潛在糖基化位點(diǎn)所在肽段吻合,則初步獲得了糖基化位點(diǎn)的信息(一般適于只含有一個(gè)潛在位點(diǎn)的肽段)。另外,在低Mr段也能發(fā)現(xiàn)少量對(duì)應(yīng)于該肽段的部分酰胺鍵碎裂產(chǎn)生的離子(b和y離子),可進(jìn)一步地證實(shí)糖基化位點(diǎn)。

圖1 糖肽((a)m/z2591.3和(b)m/z3671.1)的MALD I-M S/M S譜圖Fig.1 Tandem mass spectra of two glycopeptides of(a)m/z2591.3and(b)m/z3671.1by MALD I analysis

2.2 HPLC/ES I-M S/M S糖肽分析

LC連接ESI質(zhì)譜在線分析,理論上來(lái)說(shuō),只要樣品量足夠多和液相色譜的分離效果足夠好,自動(dòng)獲取的串聯(lián)質(zhì)譜圖中即包含了糖肽的信息。與MALD I-MS/MS類似,C ID模式下ESI-MS/MS分析中的糖肽譜圖也具有一定的特征,除了同樣具有反映組成糖鏈的單糖的Mr的特征質(zhì)譜峰間距之外,在譜圖的低分子質(zhì)量端,還具有特征地從糖肽主體碎落的寡糖碎片離子(glycan fragment ions,如[G lcNAc+H]+(204),[G lcNAcM an+H]+(366),[G lcNAcManM an+H]+(528)等)。通過(guò)提取離子色譜圖(extracted ion Chromatogram,XIC),可以初步確定糖肽的色譜保留時(shí)間,對(duì)產(chǎn)生這些特征寡糖碎片離子的串聯(lián)質(zhì)譜圖進(jìn)行篩選,可進(jìn)一步縮小尋找范圍。

圖2列舉了兩張?zhí)请腅SI-MS/MS串聯(lián)質(zhì)譜圖。帶多電荷的母離子在碎裂過(guò)程中大致產(chǎn)生了兩類容易識(shí)別的子離子,即寡糖碎片離子和糖肽相關(guān)離子(包括丟失部分寡糖的糖肽)。前者(圖2中實(shí)線方框標(biāo)識(shí)部分)即用作XIC篩選,后者在譜圖中表現(xiàn)為具有單糖特征的質(zhì)量差值的一組質(zhì)譜峰(圖2中虛線方框標(biāo)識(shí)部分)。另外,僅帶最內(nèi)側(cè)乙酰葡糖胺的糖肽峰(圖2中橢圓框標(biāo)識(shí)部分)在實(shí)驗(yàn)中往往呈現(xiàn)出較高的峰強(qiáng),該離子常被挑選作為第三級(jí)質(zhì)譜分析對(duì)象,以進(jìn)一步確定糖基化位點(diǎn)。

圖2 糖肽((a)m/z1225.2,正三價(jià)離子(3+)和(b)m/z 1678.2,正二價(jià)離子(2+))的ES I-M S/M S譜圖Fig.2 Tandem mass spectra of two glycopeptides of(a)m/z1225.2,chargestate3+and(b)m/z 1678.2,chargestate2+by ES Iana lysis The symbols are the same as in Fig.1.

2.3 MALD I和ES I-M S/M S解析糖肽的比較

我們對(duì)兩種方式產(chǎn)生的串聯(lián)質(zhì)譜圖進(jìn)行了詳盡的篩選和確認(rèn),以盡可能獲得全面的目標(biāo)蛋白質(zhì)的糖基化信息,結(jié)果如表1所示,得到確認(rèn)的位點(diǎn)(包括其糖鏈結(jié)構(gòu))為7個(gè)。根據(jù)N etNG lyc(蛋白質(zhì)的N-型糖基化位點(diǎn)預(yù)測(cè)軟件(http://www.cbs.dtu.dk/services/N etNG lyc/)的預(yù)測(cè),HRP氨基酸序列中的9個(gè)NXS/T結(jié)構(gòu)發(fā)生糖基化的可能性(表1中的potential)各有不同,例如,N287在進(jìn)行蛋白質(zhì)鑒定時(shí)即已被覆蓋,說(shuō)明其未發(fā)生糖基化(或僅部分發(fā)生糖基化),這與預(yù)測(cè)結(jié)果相符(“-”),表現(xiàn)合理。另外,位點(diǎn)N187(“++”)所在糖肽實(shí)際上也被檢測(cè)到,但是由于該糖肽包含兩個(gè)發(fā)生糖基化的位點(diǎn)(另一個(gè)為N199),我們未能通過(guò)手工分析從其譜圖中獲取足夠的信息說(shuō)明該位點(diǎn)的糖鏈結(jié)構(gòu)。

表1 HRP糖基化位點(diǎn)和相應(yīng)的糖鏈結(jié)構(gòu)及N e tNG lyc預(yù)測(cè)結(jié)果＊Table1 Glycosites and corresponding glycanstructures and prediction results by NetNGlyc＊

MALD I和ESI質(zhì)譜在CID模式下產(chǎn)生的糖肽串聯(lián)質(zhì)譜圖均主要表現(xiàn)為糖鏈的碎裂,而肽段部分碎裂處于次要。在涉及具體的結(jié)構(gòu)解析和位點(diǎn)確定時(shí),兩種方式各有優(yōu)劣。首先,對(duì)于未在肽段水平上進(jìn)行富集的樣品,在定位糖肽方面,LC-ESI方式較MALD I更客觀、方便:ESI-MS/MS低分子質(zhì)量端呈現(xiàn)的寡糖碎片是對(duì)糖肽進(jìn)行定位和確認(rèn)的重要依據(jù)之一,XIC方式可便捷地提供這樣的信息,這較于MALD I方式(受到基質(zhì)峰和掃描范圍限制)只能在PM F中手工尋找更為方便。其次,對(duì)于糖鏈結(jié)構(gòu)的解析,ESI方式提供的糖鏈組成信息更完全:糖肽相關(guān)峰特別是糖鏈最內(nèi)側(cè)G lcNAc后端糖鏈丟失后的相關(guān)的質(zhì)譜峰(如圖3中虛線框內(nèi)部分),在ESIMS/MS中表現(xiàn)為有特征質(zhì)量差值的峰連續(xù)出現(xiàn)(如圖2虛線框標(biāo)識(shí));而MALD I-MS/MS中呈現(xiàn)出一個(gè)斷層(如圖1中659的質(zhì)量差),雖然單糖有特征質(zhì)量,可以從質(zhì)量差上面推導(dǎo)出其組成,但若遭遇結(jié)構(gòu)比較復(fù)雜的糖肽其可靠性則有待考察。再次,對(duì)于糖基化位點(diǎn)的確定,MALD I方式能較為準(zhǔn)確地指示肽段的Mr:MALD I-MS/MS引起最內(nèi)側(cè)G lc-NAc跨環(huán)斷裂,產(chǎn)生具有特征質(zhì)量差值的3個(gè)連續(xù)峰(P,P＊,P-G lcNAc)是N-糖基化肽碎裂的普遍特征,而ESI方式在肽段部分雖然也有一定的規(guī)律(如圖2),在實(shí)驗(yàn)中P-G lcNAc均表現(xiàn)為強(qiáng)度最強(qiáng)的峰,但僅憑強(qiáng)度來(lái)判斷比較牽強(qiáng),易受干擾,一般需要三級(jí)質(zhì)譜確定(三級(jí)譜圖中會(huì)出現(xiàn)類似MALD I二級(jí)譜圖的3個(gè)特征連續(xù)峰,圖略)。

圖3 HRP糖鏈結(jié)構(gòu)示意圖Fig.3 G lycan structu re of HRP

另外,兩者同樣都遇到譜圖解析的問(wèn)題:首先,此處HRP糖鏈較短,結(jié)構(gòu)容易根據(jù)生物學(xué)合成方式推斷,對(duì)于其他帶較長(zhǎng)糖鏈的肽段,連接方式的各種可能性大量增加,僅靠串聯(lián)質(zhì)譜圖中的單糖特征質(zhì)量差來(lái)判斷,信息量顯然不足,這需要軟件的協(xié)助以及結(jié)合其他分析手段(如氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用等);其次,譜圖中存在的可以進(jìn)一步證明肽段來(lái)源和糖基化位點(diǎn)的b和y離子(包括帶糖鏈或不完整糖鏈的b和y離子),在人工分析不完善的情況下,若有軟件協(xié)助挖掘,則可充分利用串聯(lián)質(zhì)譜圖獲得更可靠的糖基化信息。

3 結(jié)論

完整糖肽結(jié)構(gòu)的分析因其重要性備受科研工作者的關(guān)注。由于目前沒(méi)有一種方法能全面地獲得糖肽結(jié)構(gòu)的所有信息,所以各種手段的聯(lián)合使用顯得尤為重要。除了互補(bǔ)地使用MALD I和ESI兩種軟電離技術(shù)之外,負(fù)離子檢測(cè)模式[20]以及C ID和ETD(electron transfer dissociation)兩種離子化方式的聯(lián)合[21],雖還未形成通量化的成果,但也正在越來(lái)越多地應(yīng)用到這個(gè)領(lǐng)域。另外,糖肽解析軟件也亟待開發(fā)完善,以便快速、客觀、全面地獲得糖肽結(jié)構(gòu)信息。

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Combination of matrix-assisted laser desorption ionization and electrospray ionization mass spectrometry for the analysis
of in tactgly copeptides from horse radish peroxidase

CHEN Yaohan1,2,YAN Guoquan1,ZHOU Xinwen2,YANG Pengyuan1,2＊
(1.Department of Chemistry,Fudan University,Shanghai 200032,China;2.Institutes of Biomedica l Sciences,Fudan University,Shanghai 200032,China)

O658

A

1000-8713(2010)02-0135-05

＊通訊聯(lián)系人:楊芃原,教授,博士生導(dǎo)師.Tel:(021)54237416,E-m ail:pyyang@fudan.edu.cn.

國(guó)家自然科學(xué)基金課題(Nos.20735005,20975024)、國(guó)家“863”課題(No.2006AA02A308)和上海市科委課題(No.07JC140030).

2009-10-17

DO I:10.3724/SP.J.1123.2010.00135