聶青和 程勇前 黃曉峰 張亞飛 羅新棟 楊家驥 楊艷紅
自1989年丙型肝炎病毒(HCV)基因組克隆成功后,人們對(duì)其基礎(chǔ)、流行病學(xué)、臨床診斷和治療的研究已十分深入[1]。HCV感染在全世界估計(jì)約1.7億人[2],HCV在我國一般人群中的感染率約為3.2%。中國約有3700萬~4000萬感染者。丙型肝炎常進(jìn)展為肝硬化和肝細(xì)胞癌。HCV的經(jīng)典傳播途徑為經(jīng)血液或血液制品傳播,但1991年后獻(xiàn)血員HCV的篩檢已使輸血后丙型肝炎大為減少[3]?,F(xiàn)研究認(rèn)為HCV存在母嬰傳播[4,5],在HCV感染的母親中,HCV母嬰傳播發(fā)生率大約為5%左右[6,7],但目前尚無有效的方法阻斷這種傳播。因此,HCV的母嬰傳播將可能成為未來HCV感染的重要途徑[8,9]。丙型肝炎疫苗尚難以用于人體預(yù)防HCV感染[10],因此阻斷HCV母嬰傳播的研究工作顯得十分重要。目前,有關(guān)HCV母嬰傳播的研究多數(shù)為流行病學(xué)調(diào)查[11],關(guān)于HCV如何在母嬰間進(jìn)行傳播的具體機(jī)制尚不清楚,可能為宮內(nèi)傳播、出生時(shí)傳播和出生后通過母乳、唾液傳播等,而宮內(nèi)感染可能是主要機(jī)制之一[12,13]。本研究用HCV RNA陽性血清感染體外培養(yǎng)的人胎盤滋養(yǎng)層細(xì)胞,并運(yùn)用激光共聚焦技術(shù)觀察人滋養(yǎng)層細(xì)胞感染HCV后的特性,探討HCV NS5在滋養(yǎng)層細(xì)胞中的定位表達(dá),為進(jìn)一步深入研究HCV的母嬰傳播分子機(jī)制奠定實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。
一、單細(xì)胞懸液的制備 取剖腹產(chǎn)術(shù)后的無菌胎盤組織,將絨毛組織剪碎至1~3mm3,以0.25%胰蛋白酶液及 20u/ml DNaseⅠ于 37℃恒溫?fù)u床內(nèi)消化30min,消化產(chǎn)物經(jīng)100目不銹鋼篩網(wǎng)過濾后,濾液加入預(yù)先加有5ml小牛血清的50ml離心管內(nèi),1000rpm離心10min,棄上清,DMEM培養(yǎng)液重懸沉淀。
二、Percoll密度梯度制備 用9.0%NaCl與Percoll以1:9混合,以達(dá)到生理性滲透壓,再以0.9%NaCl稀釋為45%和35%兩個(gè)濃度,按濃度從大到小將兩個(gè)不同密度的Percoll溶液逐層緩慢加入10ml離心管內(nèi),每個(gè)濃度3ml。Percoll細(xì)胞分離液為美國Pharmacia公司產(chǎn)品(No:05-59-16-001A)。
三、細(xì)胞的純化與培養(yǎng) 將收集的細(xì)胞懸液2ml緩慢加于Percoll分離液上層,以2500rpm離心20min,用吸管小心吸取云霧狀的中層,置于50ml離心管內(nèi),DMEM稀釋4倍,1000rpm離心10min,棄上清,以含20%胎牛血清DMEM培養(yǎng)液重懸沉淀,將細(xì)胞懸液濃度調(diào)整至5~6×109/L,置于培養(yǎng)瓶或預(yù)先置有蓋破片的六孔培養(yǎng)板內(nèi)37℃,5%CO2孵箱內(nèi)培養(yǎng)。
四、免疫細(xì)胞化學(xué)染色 將細(xì)胞爬片固定后,用ABC法進(jìn)行細(xì)胞角蛋白、波形蛋白染色。胎盤組織切片脫蠟至水后用ABC法進(jìn)行細(xì)胞角蛋白、波形蛋白染色。免疫組織化學(xué)染色用ABC試劑盒購自華美生物工程公司,所用抗細(xì)胞角蛋白(No:C8541)及波形蛋白抗體(No:MU074-UC)購自寶泰克生物工程公司??笻CV NS5單克隆抗體購自寶泰克生物工程公司。
五、HCV體外感染試驗(yàn) 選擇抗HCV陽性血清,HCV RNA 為6.1×107copies/ml,經(jīng)血清學(xué)檢測(cè)甲、乙、丁、戊型肝炎病毒標(biāo)志物均為陰性,另選正常人血清作為陰性對(duì)照。以含20%丙型肝炎患者血清的DMEM培養(yǎng)液感染體外培養(yǎng)24h后的滋養(yǎng)層細(xì)胞,同時(shí)以含20%正常人血清的DMEM培養(yǎng)液作為陰性對(duì)照,37℃,5%CO2孵箱內(nèi)培養(yǎng)24h,倒置顯微鏡下觀察,棄去感染血清,PBS充分洗滌5次后加入新鮮培養(yǎng)液,留取最后一次洗液待檢,以后每2天換液一次,留取培養(yǎng)上清待檢。
六、培養(yǎng)上清HCV RNA定性及定量檢測(cè) 為保證試驗(yàn)的可靠性,分別采用RT-PCR及擴(kuò)增敏感試驗(yàn)(Amplisensor assay)對(duì)培養(yǎng)上清HCV RNA進(jìn)行定性及定量檢測(cè),簡(jiǎn)言之,定性檢測(cè):提取HCV RNA,加入逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)體系,37℃,30min:預(yù)變性 94℃,300sec,第一次 PCR 循環(huán),94℃ 45sec,50℃ 45sec,72℃ 45sec循環(huán) 35次,終延伸 72℃,300sec;取 2μl第一次循環(huán)后的產(chǎn)物加入第二次PCR反應(yīng)緩沖液23μl;預(yù)變性94℃ ,300sec, 第 二 次 PCR 循 環(huán) ,94℃ 45sec,55℃45sec,72℃ 45sec循環(huán) 35 次,終延伸 72℃,300sec;取擴(kuò)增產(chǎn)物15μl加樣于含溴化乙錠的2%瓊脂糖凝膠,于1×TAE緩沖液中在60v電壓下電泳15~20min。根據(jù)試劑盒說明,紫外燈下觀察225bp處有熒光者為陽性;定量檢測(cè):提取HCV RNA,加入逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)體系,37℃ ,45min: 預(yù) 變 性 90℃ ,2min,PCR 循 環(huán) ,95℃25sec,60℃ 35sec,72℃ 45sec 循環(huán) 20 次,終延伸72℃,30sec,10℃保溫 1h;計(jì)算機(jī)讀取數(shù)值,>102者為陽性。HCV RNA熒光定量檢測(cè)試劑盒購自美國Acegene公司。
七、電鏡標(biāo)本制作及激光共聚焦顯微鏡檢查 細(xì)胞培養(yǎng)40d后以0.25%胰蛋白酶分別消化感染組及對(duì)照組貼壁生長的細(xì)胞,PBS洗滌一次,2000rpm離心20min,4%戊二醛固定過夜,送本校電鏡室。所用激光共聚焦顯微鏡型號(hào)為 MRC-1024(BioRad,Watford,UK),固定在含Plan-Ne-ofluar 40x油浸鏡(數(shù)值孔徑為 3.53)的顯微鏡(Zeiss,Gena,Germany)上,用多線氬離子激光束(25mW)在488nm激發(fā)熒光素(FITC)。這些措施使得在高放大倍數(shù)下對(duì)微弱的標(biāo)記物能產(chǎn)生敏銳的熒光信號(hào)。共聚焦系統(tǒng)由Bio-Rad公司提供的軟件控制,在IBM計(jì)算機(jī)上運(yùn)行。
一、滋養(yǎng)層細(xì)胞體外生長特性觀察 在倒置顯微鏡下觀察,中層細(xì)胞以單個(gè)核細(xì)胞為主,培養(yǎng)3h后開始貼壁,18h后基本全部貼壁,貼壁細(xì)胞多呈上皮細(xì)胞樣生長,形態(tài)多樣,個(gè)別細(xì)胞呈纖維細(xì)胞樣。24h后開始出現(xiàn)多個(gè)核細(xì)胞,并隨時(shí)間推移逐漸增大,成片生長。HCV感染后,感染組及對(duì)照組細(xì)胞光鏡下觀察未見明顯不同。
二、免疫細(xì)胞化學(xué)染色結(jié)果 細(xì)胞爬片染色陽性信號(hào)為棕黃色顆粒,結(jié)果顯示,90%以上細(xì)胞的細(xì)胞角蛋白染色陽性,陽性信號(hào)定位于細(xì)胞漿,而波形蛋白染色僅個(gè)別細(xì)胞可見陽性信號(hào)(圖1,2)。
圖1 滋養(yǎng)層細(xì)胞角蛋白表達(dá)(免疫熒光染色,×100)
圖2 滋養(yǎng)層細(xì)胞波形蛋白表達(dá)(免疫熒光染色,×100)
三、免疫熒光染色結(jié)果 HCV感染后的滋養(yǎng)層細(xì)胞,經(jīng)抗-HCV NS5染色陽性,陽性信號(hào)為黃綠色或黃色熒光,主要定位于細(xì)胞核周。正常對(duì)照標(biāo)本的滋養(yǎng)層細(xì)胞抗-HCV NS5染色未見黃綠色或黃色熒光,因伊文藍(lán)襯染而呈現(xiàn)紅色。
四、激光共聚焦觀察 HCV感染后的滋養(yǎng)層細(xì)胞抗HCV NS5染色陽性信號(hào)為黃綠色或黃色熒光,主要定位于細(xì)胞核周(圖3)。
圖3 HCV感染的滋養(yǎng)層細(xì)胞抗HCV NS5陽性(激光共聚焦,×1059)
五、培養(yǎng)上清HCV RNA表達(dá) 見圖4和表1。
圖4 培養(yǎng)上清HCV RNA定性檢測(cè)結(jié)果
表1 培養(yǎng)上清HCV RNA定量和定性檢測(cè)結(jié)果
胎盤是胎兒與母體之間進(jìn)行物質(zhì)交換的重要器官,由滋養(yǎng)層細(xì)胞、毛細(xì)血管內(nèi)皮細(xì)胞以及二者之間基膜所構(gòu)成的胎盤屏障組成,是營養(yǎng)物質(zhì)以及某些藥物、病毒、激素等從母體進(jìn)入胎兒的必經(jīng)之路,而滋養(yǎng)層細(xì)胞是胎盤屏障的第一道防線。合體滋養(yǎng)層細(xì)胞還具有重要的內(nèi)分泌功能,體外分離培養(yǎng)滋養(yǎng)層細(xì)胞是研究其功能及母體與胎兒之間物質(zhì)交換的具體分子機(jī)制的細(xì)胞學(xué)基礎(chǔ)[14]。本研究在Kliman等[15]建立的Percoll不連續(xù)密度梯度分離純化方法的基礎(chǔ)上作如下改進(jìn):將分離細(xì)胞的密度梯度簡(jiǎn)化為兩層。Kliman等用14個(gè)不連續(xù)Percoll分離密度梯度進(jìn)行分離,并確定滋養(yǎng)層細(xì)胞在Percoll中所處的密度值為1048~1062g/L,而Cordon等[16]用連續(xù)密度梯度觀察其密度值為 1053~1060g/L,以此為依據(jù)并根據(jù)美國Pharmacia公司提供的Percoll使用說明書中不同稀釋度的Percoll在0.15M(0.9%)鹽溶液中相應(yīng)的密度值曲線,將分離梯度簡(jiǎn)化為兩層,即35%(密度值為1043g/L)與45%(密度值為1062g/L),以使所要分離的滋養(yǎng)層細(xì)胞處于兩層之間,這樣既節(jié)約了實(shí)驗(yàn)試劑,又簡(jiǎn)化了操作步驟。
許多學(xué)者研究證實(shí),在胎盤絨毛組織中細(xì)胞角蛋白染色陽性的僅為細(xì)胞滋養(yǎng)層細(xì)胞及合體滋養(yǎng)層細(xì)胞[17,18]。本研究培養(yǎng)細(xì)胞爬片經(jīng)免疫組化染色結(jié)果顯示,細(xì)胞角蛋白染色陽性者占90%以上,證明改進(jìn)后的分離方法同樣可以得到滿意的分離效果。
目前,HCV感染靶細(xì)胞的方式主要有血清直接感染法、脂質(zhì)體介導(dǎo)法、電穿孔法及真核細(xì)胞表達(dá)載體攜帶法等[19,20]。直接感染法是HCV感染細(xì)胞的主要方法,即把丙型肝炎患者血清直接加到培養(yǎng)細(xì)胞中進(jìn)行感染,37℃溫育不同時(shí)間后,更換新鮮培養(yǎng)液,在不同時(shí)相檢測(cè)細(xì)胞及其培養(yǎng)上清HCV RNA。RT-PCR用于直接檢測(cè)培養(yǎng)上清及細(xì)胞中HCV正鏈及負(fù)鏈RNA,可直觀反映HCV在感染細(xì)胞中的復(fù)制情況。該方法簡(jiǎn)便,特異性好,但培養(yǎng)液中殘留的HCV感染物可能會(huì)出現(xiàn)假陽性結(jié)果。
本研究參照國外學(xué)者[21,24]用HCV感染體外培養(yǎng)細(xì)胞的方法,對(duì)滋養(yǎng)層細(xì)胞進(jìn)行感染試驗(yàn)。經(jīng)定性及定量RT-PCR雙重檢測(cè),證明了實(shí)驗(yàn)的可靠性。結(jié)果表明,感染前及感染后洗液及對(duì)照組中HCV RNA檢測(cè)均為陰性,排除了標(biāo)本來源及HCV感染試驗(yàn)時(shí)培養(yǎng)液中殘留的HCV感染物污染的可能[25,26]。在感染后16天的培養(yǎng)上清中間斷檢測(cè)到了HCV RNA。HCV RNA定性檢測(cè)結(jié)果為陽性的標(biāo)本HCV RNA定量檢測(cè)大于105copies/ml,證實(shí)HCV可以感染胎盤滋養(yǎng)層細(xì)胞,HCV能否在滋養(yǎng)層細(xì)胞中復(fù)制尚有待進(jìn)一步研究。HCV NS5為HCV非結(jié)構(gòu)蛋白之一,目前對(duì)其功能研究的較為明確,HCV NS5主要表達(dá)RDRP,參與HCV的復(fù)制,并具有外周核定位功能,提示HCV的復(fù)制位于核周圍的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)膜上。用抗-HCV特異性McAb NS5,采用間接免疫熒光法直接檢測(cè)感染細(xì)胞內(nèi)特異性抗原的表達(dá)情況,并用激光共聚焦方法觀察發(fā)現(xiàn),HCV NS5主要在核周表達(dá)。感染HCV的人滋養(yǎng)層細(xì)胞中存在HCV NS5表達(dá)。這些改變?yōu)镠CV感染滋養(yǎng)層細(xì)胞提供了形態(tài)學(xué)依據(jù)[27],也為進(jìn)一步深入研究HCV的母嬰傳播分子機(jī)制奠定了實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。
[1]聶青和.加強(qiáng)病毒性肝炎的基礎(chǔ)與臨床研究[J].胃腸病學(xué)和肝病學(xué)雜志,2007,16:95-99.
[2]COOKE GS,MAIN J.Improving the treatment of hepatitis C infection in the UK[J].Expert Opin Pharmacother,2007,8:183-191.
[3]羅新棟,聶青和,何云,等.檢測(cè)抗-HCV IgG κ/λ輕鏈比值及其臨床意義[J].中國醫(yī)師雜志,2004,6:32-36.
[4]EUROPEAN PAEDIATRIC HEPATITIS C Virus Network.A significant sex-but not elective cesarean section-effect on mother-to-child transmission of hepatitis C virus infection[J].J Infect Dis,2005,192:1872-1879.
[5]張亞飛,聶青和.HCV垂直傳播的危險(xiǎn)因素分析[J].肝臟,2006,11:146-148.
[6]聶青和,周永興,王平忠.丙型肝炎病毒感染孕婦羊水中HCV RNA檢測(cè)的臨床意義 [J].中華婦產(chǎn)科雜志,2002,37:19-21.
[7]程勇前,聶青和,周永興.丙型肝炎病毒母嬰傳播機(jī)制研究[J]. 世界華人消化雜志,2002,10:445-447.
[8]聶青和,程勇前.妊娠合并乙型肝炎、丙型肝炎的母嬰傳播機(jī)制及預(yù)防進(jìn)展(專題筆談)[J].中國實(shí)用婦科與產(chǎn)科雜志,2004,20:72-75.
[9]MARTINETTI M,PACATI I,CUCCIA M,et al.Hierarchy of baby-linked immunogenetic risk factors in the vertical transmission of hepatitis C virus[J].Int J Immunopathol Pharmacol,2006,19:369-378.
[10]聶青和,羅新棟.丙型肝炎疫苗研究及面臨的挑戰(zhàn)[J].世界華人消化雜志,2004,12:2405-2409.
[11]SHEBL FM,EL-KAMARY SS,SALEH DA,et al.Prospective cohort study of mother-to-infant infection and clearance of hepatitis C in rural Egyptian villages[J].J Med Virol,2009,81:1024-1031.
[12]張亞飛,聶青和,邵彬,等.丙型肝炎病毒持續(xù)感染對(duì)體外培養(yǎng)人胎盤合體滋養(yǎng)層細(xì)胞生物學(xué)性狀的影響[J].醫(yī)學(xué)研究生學(xué)報(bào),2006,19:114-116.
[13]張亞飛,聶青和,邵彬,等.丙型肝炎病毒持續(xù)感染對(duì)體外培養(yǎng)人胎盤合體滋養(yǎng)層細(xì)胞MMP-2和MMP-9合成分泌的影響 [J].第四軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報(bào),2006,27:1949-1952.
[14]成令忠.組織學(xué)與胚胎學(xué)[M].北京:人民衛(wèi)生出版社,1989:255-259.
[15]KLIMAN HJ,NESTLER JE,SERMASI E,et al.Purification,characterization,and in vitro differentiation of cytotrophoblasts from human term placentae [J].Endocrinology,1986,118:1567-1582.
[16]GORDON CD,BARRY FK.Isolation of pure villous cytotrophoblast from term human placenta using immunomagnetic microspheres[J].J Immun Med,1989,119:259-268.
[17]CLARKLARK RK,DAMJANOV I.Intermediate fila -ments of human trophoblast and choriocarcinoma cell lines[J].Virchows Arch A Pathol Anat Histopathol,1985,407:203-208.
[18]VETTENRANTA K,VON KOSKULL H,HEIKINHEIMO M,et al.Cytoskeletal markers and specific protein production in cells cultured from human first and third trimester placentae[J].In Vitro Cell Dev Biol,1986,22:100-106.
[19]聶青和.丙型肝炎病毒母嬰感染研究及其預(yù)防現(xiàn)狀(述評(píng))[J].世界華人消化雜志,2005,13:1257-1262.
[20]程勇前,聶青和,周永興,等.體外感染丙型肝炎病毒的滋養(yǎng)層細(xì)胞超微結(jié)構(gòu)變化 [J].中華婦產(chǎn)科雜志,2003,38:28-29.
[21]IACOVACCI S,MANZIN A,BARCA S,et al.Molecular characterization and dynamics of hepatitis C virus replication in human fetal hepatocytes infected in vitro[J].Hepatology,1997,26:1328-1337.
[22]KAITO M,WATANABE S,TSUKIYAMA-KOHARA K,et al.Hepatitis C virus particle detected by immunoelectron microscopic study[J].J Gen Virol,1994,75:1755-1760.
[23]CHOO SH,SO HS,CHO JM,et al.Association of hepatitis C virus particles with immunoglobulin:a mechanism for persistent infection[J].J Gen Virol,1995,76:2337-2341.
[24]WATSON JP,BEVITT DJ,SPICKETT GP,et al.Hepatitis C virus density heterogeneity and viral titre in acute and chronic infection:a comparison of immunodeficient and immunocompetent patients[J].J Hepatol,1996,25:599-607.
[25]程勇前,聶青和,周永興,等.人胎盤滋養(yǎng)層細(xì)胞的分離培養(yǎng)及IgGFcγRⅢ在人胎盤組織中的表達(dá) [J].醫(yī)學(xué)研究生學(xué)報(bào),2002,15:105-107.
[26]程勇前,聶青和,周永興,等.人滋養(yǎng)層細(xì)胞分離培養(yǎng)及HCV體外感染試驗(yàn) [J].第四軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報(bào),2002,23:1544-1547.
[27]程勇前,聶青和,周永興.丙型肝炎病毒超微結(jié)構(gòu)研究進(jìn)展[J]. 世界華人消化雜志,2003,11:233-237.