李盈蕾, 陳建華, 宋曉凱, 孫吉佑, 詹永成, 吳同巖
(1.淮海工學(xué)院化學(xué)工程學(xué)院,江蘇 連云港222005;2.江蘇省海洋生物技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇 連云港222005)
大米草(Spartina anglica)是美國(guó)互花米草與歐洲米草的雜交種,我國(guó)于1963年成功引進(jìn),具有耐鹽堿、耐淹、根系發(fā)達(dá)等特點(diǎn),它可以起到保灘護(hù)岸、促淤造陸的重要作用,曾被稱(chēng)為“先鋒植物”。不過(guò),大米草的迅速蔓延,造成了生態(tài)失衡、航道阻塞,讓人類(lèi)無(wú)法控制,它所引發(fā)的生態(tài)危害已經(jīng)成了一個(gè)世界性的難題[1-2]。利用大米草的豐富資源,變害為寶,是對(duì)其生態(tài)防控的有效辦法。已有文獻(xiàn)報(bào)道,其同屬植物互花米草總黃酮類(lèi)化合物具有降血脂等心血管方面的作用[3],黃酮類(lèi)化合物同樣是大米草的活性成分之一[4],本實(shí)驗(yàn)主要研究大米草總黃酮的提取工藝條件及其體外抗氧化活性。
XH-100B 電腦微波催化合成∕萃取儀(北京祥鵠科技發(fā)展有限公司);UV-160A紫外-可見(jiàn)分光光度儀(日本島津);SHZ-D(Ⅲ)循環(huán)水真空泵(鞏義市予華儀器有限責(zé)任公司);HWSY電熱恒溫水浴鍋(浙江舟山市定海區(qū)還遠(yuǎn)儀器廠);JB/T 5374-1991電子天平(梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司)。RE52CS旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(上海亞榮生化儀器廠);真空冷凍干燥機(jī)Genesis 2000 QS(美國(guó)VIRTIS)。
大米草(2008年5月采于連云港燕尾鎮(zhèn)沿海灘涂);蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品(批號(hào):10080-200306,中國(guó)藥品生物研究所);DPPH(批號(hào):20090112,美國(guó)SIGMA公司);其它試劑均為分析純。
2.1 大米草總黃酮的測(cè)定[5]
2.1.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線的測(cè)定 精密稱(chēng)取干燥至恒重的蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品10 mg,用無(wú)水乙醇溶解并定容于50 mL量瓶中,得0.2 mg/mL 蘆丁標(biāo)準(zhǔn)液。分別精密吸取 0.0、0.4、0.8、1.2、1.6、2.0 mL蘆丁標(biāo)準(zhǔn)液于10 mL比色管中,加無(wú)水乙醇至5 mL,加入 5%NaNO20.3 mL,搖勻放置 6 min,再加入 10%Al(NO3)3溶液 0.3 mL,搖勻放置 6 min,最后加 1 mol/L NaOH 4 mL,用無(wú)水乙醇溶液補(bǔ)至刻度,搖勻放置10 min后,以無(wú)水乙醇為空白對(duì)比,在510 nm處測(cè)定其吸光值,吸光值(A)與為溶液濃度(C)進(jìn)行線性回歸,得回歸方程為A=10.993C+0.001 1,R=0.999 3。結(jié)果表明,蘆丁在8~40 μg/mL與吸光度線性關(guān)系良好。
2.1.2 大米草總黃酮的提取工藝流程 稱(chēng)取大米草干品5 g→粉碎→過(guò)20目篩→乙醇溶液浸泡8 h→微波萃取→抽濾→真空濃縮→乙醇定容于100 mL量瓶→大米草提取液待測(cè)液。
2.1.3 樣品總黃酮含量及提取率的測(cè)定 精密吸取大米草待測(cè)液1 mL,按照2.1.1項(xiàng)下方法操作,測(cè)定吸光度,按照回歸方程計(jì)算提取液中的總黃酮含量。按提取率=藥材中總黃酮質(zhì)量/藥材質(zhì)量×100%,計(jì)算總黃酮提取率。
2.2 微波提取條件的優(yōu)化
微波法萃取植物總黃酮影響因素主要為:微波輻射量、所用的溶劑以及溶劑分?jǐn)?shù)、用量、浸泡時(shí)間,萃取溫度及萃取時(shí)間等[6]。本研究中固定浸泡時(shí)間為8 h,因此主要討論微波輻射量、乙醇的體積分?jǐn)?shù)、萃取時(shí)間和溶劑用量對(duì)提取率的影響。
2.2.1 乙醇體積分?jǐn)?shù)的單因素考察 精密稱(chēng)取4份5 g大米草樣品,分別加入體積分?jǐn)?shù)為30%、50%、70%、90%的乙醇溶液,固定其它因素,按2.1.2項(xiàng)下操作,結(jié)果見(jiàn)圖1。可見(jiàn),提取率隨著乙醇體積分?jǐn)?shù)的增大而增高,50% ~70%之間提取率升高幅度較大,故可在此區(qū)間考查乙醇體積分?jǐn)?shù)的影響。
圖1 乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)提取率的影響
2.2.2 微波萃取時(shí)間的單因素考察 精密稱(chēng)取5份5 g大米草樣品,微波萃取,時(shí)間分別為 1、3、6、10、15 min,固定其它因素,按2.1.2項(xiàng)下操作,結(jié)果見(jiàn)圖2??梢?jiàn),微波萃取時(shí)間在6~10 min之間提取率變化較大,在10 min達(dá)到最大值,然后提取率再次下降,可能是因?yàn)闀r(shí)間過(guò)長(zhǎng),黃酮易于分解,且時(shí)間過(guò)長(zhǎng),溫度過(guò)高,使細(xì)胞內(nèi)蛋白凝固,黃酮不易溶出[7]。因此本試驗(yàn)對(duì)于提取時(shí)間主要考察3~10 min內(nèi)的影響。
圖2 萃取時(shí)間對(duì)提取率的影響
2.2.3 固液比的單因素考察 精密稱(chēng)取4份5 g大米草樣品,分別按固液比1∶20、1∶30、1∶40、1∶50 加入提取溶劑,浸泡8 h,固定其它因素,微波萃取,按2.1.2項(xiàng)操作,結(jié)果見(jiàn)圖3??梢?jiàn),固液比在1∶40后變化不大,考慮到提取效果和減少溶劑用量等方面,將固液比定在1∶20~1∶40之間較合適。
圖3 物料比對(duì)提取率的影響
2.2.4 萃取溫度的單因素考察 鑒于2.2.2項(xiàng)下試驗(yàn)結(jié)果,本試驗(yàn)的萃取時(shí)間選在10 min內(nèi),此時(shí)間內(nèi)微波萃取儀達(dá)不到要考察的溫度。故萃取溫度不作為考察因素。
2.3 微波提取工藝的優(yōu)化-正交試驗(yàn)
在微波提取的單因素試驗(yàn)基礎(chǔ)上,選擇影響大米草總黃酮提取的主要因素提取時(shí)間(A)、微波功率(B)、溶劑濃度(C)、固液比(D),每個(gè)因素取3個(gè)水平,見(jiàn)表1,以提取率作為評(píng)價(jià)指標(biāo)對(duì)微波提取工藝進(jìn)行優(yōu)化,結(jié)果見(jiàn)表2。對(duì)結(jié)果進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)處理,方差分析結(jié)果見(jiàn)表3。
表1 因素水平
表2 L9(34)正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)
表3 方差分析
由表2及表3可知,影響大米草中總黃酮提取因素的主次順序?yàn)?D>B>C>A;即固液比>反應(yīng)功率>溶劑濃度>反應(yīng)時(shí)間。通過(guò)結(jié)果分析,正交實(shí)驗(yàn)的最佳工藝為A2B1C3D3。即使用濃度為70%的乙醇,固液比為1∶40,在功率為400 W的條件下提取6 min效果最佳。
2.4 最佳提取工藝的驗(yàn)證
取3份5 g大米草研碎,加入200 mL體積分?jǐn)?shù)為70%乙醇溶液,浸泡8 h后,微波萃取功率為400 W,萃取6 min。結(jié)果見(jiàn)表4。最佳提取工藝的平均提取率為0.462%。比各組試驗(yàn)提取率均高。
表4 最佳工藝重復(fù)實(shí)驗(yàn)
2.5 大米草總黃酮的純化
取大米草總黃酮提取液,利用AB-8大孔樹(shù)脂純化,大孔樹(shù)脂的預(yù)處理及洗脫條件按文獻(xiàn)[8]操作,采用乙醇梯度洗脫,將20% ~40%乙醇洗脫液610 mL合并,濃縮、于培養(yǎng)皿中在低溫冰箱中冷凍,凝固后于真空冷凍干燥機(jī)中干燥,以用于進(jìn)一步定性檢測(cè)及活性測(cè)定。冷凍干燥后得粉末狀粗大米草總黃酮。
3.1 大米草粗總黃酮定性驗(yàn)證
取大米草粗總黃酮粉末0.5 g,蒸餾水定容于25 mL量瓶中,吸取2 mL,分別滴加Al(NO3)3溶液和鎂粉與濃鹽酸數(shù)滴,結(jié)果見(jiàn)表5。
表5 大米草總黃酮定性反應(yīng)
從表5的結(jié)論可以看出,該反應(yīng)屬于黃酮類(lèi)化合物的特征顏色反應(yīng),說(shuō)明此溶液中主要成分為黃酮類(lèi)化合物。
3.2 體外抗氧化活性研究
3.2.1 大米草粗總黃酮對(duì)DPPH·自由基的清除作用 采用郭雪峰[9]的方法測(cè)定,取各濃度的大米草粗總黃酮溶液1 mL與257.7 mg/L DPPH 95%乙醇溶液(樣品對(duì)照為大米草粗總黃酮溶液1 mL與95%乙醇,DPPH對(duì)照為4 mL DPPH溶液與1 mL 95%乙醇溶液)于10 mL比色管中,振蕩,混勻,反應(yīng)40 min后,用95%乙醇作參比對(duì)照,利用紫外分光光度計(jì)在518.4 nm處測(cè)定吸光度,測(cè)定結(jié)果分別記為As、Ar、Ao。陽(yáng)性對(duì)照藥Vc同法操作。結(jié)果見(jiàn)表6。清除率Y%=[1-(As-Ar)/Ao]×100%。
表6 清除DPPH·
取大米草粗總黃酮溶液濃度與抑制率Y做線性回歸,得Y=852.65X+4.6096,r=0.9847。根據(jù)線性方程得出大米草粗總黃酮清除DPPH·自由基的IC50為0.053 2 mg/mL。大米草粗總黃酮與陽(yáng)性藥Vc的抑制率相同時(shí),根據(jù)回歸方程計(jì)算大米草粗總黃酮當(dāng)量濃度為0.051 7 mg/mL,同等清除能力所需用量約為陽(yáng)性藥Vc的5.17倍。
3.2.2 大米草粗總黃酮對(duì)羥自由基的清除能力 利用Fenton體系產(chǎn)生·OH[10],向 Fenton 試劑中加入 Tris-HCl緩沖溶液、鄰二氮菲試劑、不同濃度的大米草粗總黃酮溶液(空白只加Tris-HCl緩沖溶液,樣品對(duì)照加Tris-HCl緩沖溶液和不同濃度的大米草粗總黃酮溶液,反應(yīng)對(duì)照不加大米草粗總黃酮溶液,以及不加入H2O2不形成Fenton體系的陰性反應(yīng)對(duì)照)于10 mL比色管中,振蕩,混勻。置入恒溫水浴鍋中,37℃下水浴1 h。利用空白對(duì)照,紫外分光光度計(jì)在510 nm處測(cè)定吸光度,分別記為 A樣、A提、A損、A未損。陽(yáng)性對(duì)照藥 Vc同法操作,結(jié)果見(jiàn)表7。清除率Y%=[(A樣-A提)-A損/A未損-A損]×100%。
表7 清除·OH
取大米草粗總黃酮溶液濃度對(duì)抑制率Y做線性回歸,得Y=209.56X-48.71,r=0.986 8。根據(jù)線性方程,得出大米草粗總黃酮清除·OH的IC50為0.471 0 mg/mL。大米草粗總黃酮與陽(yáng)性藥Vc的抑制率相同時(shí),根據(jù)回歸方程計(jì)算大米草粗總黃酮當(dāng)量濃度為0.352 5 mg/mL,同等清除能力用量約為陽(yáng)性藥Vc的3.5倍。
4.1 試驗(yàn)結(jié)果表明,微波法提取大米草總黃酮最佳工藝為:70%的乙醇,固液比為1∶40,在功率為400 W的條件下提取6 min。方法簡(jiǎn)便,快捷,節(jié)能。可做進(jìn)一步中試試驗(yàn)及擴(kuò)大化操作。
4.2 ·OH是機(jī)體內(nèi)氧化性最強(qiáng)的自由基,可促使機(jī)體肝、腦、腎組織以及腦線粒體脂質(zhì)發(fā)生過(guò)氧化反應(yīng),進(jìn)而引起細(xì)胞損傷[11]。大米草粗總黃酮清除·OH的能力較清除DPPH·的能力更強(qiáng)??勺鳛樘烊豢寡趸瘎┳鲞M(jìn)一步研究。
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