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    mIκBα表達載體在大鼠肝星狀細胞中的穩(wěn)定表達

    2009-11-29 01:19:10楊友誼鄒偉敏
    長江大學學報(自科版) 2009年6期
    關(guān)鍵詞:星狀電泳緩沖液

    楊友誼 鄒偉敏

    (湖北中醫(yī)藥高等專科學校,湖北 荊州 434020) (荊州區(qū)東城社區(qū)衛(wèi)生服務中心,湖北 荊州 434020)

    mIκBα表達載體在大鼠肝星狀細胞中的穩(wěn)定表達

    楊友誼 鄒偉敏

    (湖北中醫(yī)藥高等專科學校,湖北 荊州 434020) (荊州區(qū)東城社區(qū)衛(wèi)生服務中心,湖北 荊州 434020)

    目的:探討將mIκBα基因成功轉(zhuǎn)染入大鼠肝星狀細胞,并在其中穩(wěn)定表達。方法:應用脂質(zhì)體介導的基因轉(zhuǎn)移技術(shù)將mIκBα基因真核表達載體pCMX-mIκBα導入大鼠肝星狀細胞中,采用G418篩選途徑得到穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的大鼠肝星狀細胞,再通過Western blot技術(shù)檢測轉(zhuǎn)染后大鼠肝形狀細胞中相應mIκBα蛋白表達水平。結(jié)果:穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的大鼠肝星狀細胞中證實有pCMX-mIκBα相應蛋白質(zhì)的表達。結(jié)論:mIκBα基因真核表達載體pCMX-mIκBα成功轉(zhuǎn)入大鼠肝星狀細胞,并在細胞中得到穩(wěn)定表達,為進一步研究NFκB和肝星狀細胞凋亡之間的關(guān)系,并為通過誘導肝星狀細胞凋亡治療肝纖維化尋找實驗及理論基礎。

    肝星狀細胞;核轉(zhuǎn)錄因子突變體;穩(wěn)定轉(zhuǎn)染

    核轉(zhuǎn)錄因子NF-κB/IκB系統(tǒng)因其在機體各生物過程的調(diào)控中所起的重要作用已越來越引起人們的廣泛重視。NF-κB能調(diào)控細胞在應急、感染、炎癥等情況下的基因表達。參與細胞增殖、凋亡及細胞免疫反應的調(diào)控。最引人注目的是,它在腫瘤細胞的抗凋亡機制中起著關(guān)鍵作用。IκBα是NF-κB最重要的調(diào)控因子。靜息狀態(tài)下,NF-κB與IκBα相結(jié)合而存在于細胞漿中,當受到外界因素刺激時,IκBα被磷酸化并迅速降解,使NF-κB釋放并活化而進入細胞核,從而調(diào)控一系列基因的表達。研究表明,第32和第36位絲氨酸在IκBα的降解中起著至關(guān)重要的作用,S32、S36發(fā)生突變的mIκBα不會被降解,與NF-κB發(fā)生不可逆結(jié)合而抑制其激活。這種現(xiàn)象的發(fā)現(xiàn)使人們可能找到了一條調(diào)控NF-κB活性進而調(diào)控一系列生物學過程的有效方法。本實驗旨在通過轉(zhuǎn)染技術(shù)把mIκBα導入大鼠肝星狀細胞中,并篩選獲得mIκBα穩(wěn)定表達株。

    1 材料與方法

    1.1材料

    1.1.1動物 SD大鼠由華中科技大學同濟醫(yī)學院實驗動物中心提供,體質(zhì)量200~350g。

    1.1.2試劑與儀器 DMEM培養(yǎng)基(Gibco-BRL公司產(chǎn)品)、G418(Gibco-BRL公司產(chǎn)品)、大量質(zhì)粒制備試劑盒(Wazard大量DNA純化系統(tǒng)為Promega公司產(chǎn)品)、脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑盒(Lipofectamine2000為Invitrogene公司產(chǎn)品)、LB培養(yǎng)基、限制性內(nèi)切酶BamH Ⅰ HindⅢ TaqDNA聚合酶 T4DNA連接酶(均為MBI公司產(chǎn)品)、markerⅣ(天根生化科技有限公司)、1mol/L CaCl2。E.coli(DH5)(寶生物工程大連有限公司)。mIκBα基因真核表達載體:pCMX-mIκBα(Santa Cruz公司)。

    二氧化碳培養(yǎng)箱(Forma Scientific 公司)、超凈工作臺(蘇州凈化設備公司)、臺式高速低溫離心機(GS-15R美國Beckman公司)、基因擴增儀(PE9600美國PE公司)、紫外可見分光光度計(DU650美國Beckman公司)。

    1.2方法

    1.2.1肝星狀細胞分離培養(yǎng) SD大鼠,采用肝離體膠原酶和鏈霉蛋白酶灌注消化,50g低速離心去除肝細胞,密度梯度分離HSC,采用臺盼藍染色排斥法鑒定細胞活率,Desimin加α-SMA免疫細胞化學染色法鑒定HSC純度。取上述方法獲得的大鼠HSC采用含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基在37℃、5%

    CO2環(huán)境中體外傳代培養(yǎng)。

    1.2.2質(zhì)粒的制備 感受態(tài)細胞的制備: 取-70℃存儲的大腸桿菌JM103菌種,用白金絲接種環(huán)直接蘸取菌液。在LB瓊脂平板(不含抗菌素)上劃線,37℃培養(yǎng)過夜;從平板上挑取一個單菌落,接入含2mlLB培養(yǎng)基的試管中,37℃振蕩培養(yǎng)過夜;取0.2ml上述菌液,轉(zhuǎn)入含30ml LB培養(yǎng)基的三角瓶中,37℃振蕩培養(yǎng)2.5h;將培養(yǎng)物轉(zhuǎn)入40ml的離心管中,置冰上10min,然后于2 500r/min、4℃離心10min;棄上清,將細菌重新懸浮于100mmol/L氯化鈣25ml中,冰浴20min后,2 500r/min、4℃離心10min;棄上清,將細菌重新懸浮于1ml 100mmol/L氯化鈣中過夜。

    轉(zhuǎn)化:取5μl連接產(chǎn)物加至100μl感受態(tài)細胞中,水浴30min,轉(zhuǎn)入42℃熱休克60~90s,立即置于冰上2min;加入800μl LB(Amp-)培養(yǎng)液,37℃ 2 000rpm振搖60min,去20μl菌液于事先制備好的Amp+ LB平板上,用無菌玻璃棒將溶液均勻涂布與整個平皿表面,置37℃溫育過夜。

    重組體的篩選和鑒定:挑取單菌落接種到3ml含氨芐青霉素(50μl/ml)的LB培養(yǎng)基中;37℃振搖過夜(12~16h),離心收集細菌;加入溶液Ⅰ100μl(50mmol/L葡萄糖、25mmol/L Tris-HCl pH8.0、10mmol/L EDTA pH8.0),混勻,室溫放置5min;加200μl新鮮配制的溶液Ⅱ(1%SDS,0.2mol/L NaOH),顛倒混勻,冰浴5min;加150μl的溶液Ⅲ(3mmol/L Kac,2mmol/L Hac,pH4.8),顛倒混勻,冰浴10min;15 000rpm離心5min;上清液用酚/氯仿和氯仿各抽提一次;取上層水相加入2倍體積的無水乙醇,5 000rpm離心15min;棄上清,沉淀于室溫干燥后,溶于20μl TE中,儲存于-20℃?zhèn)溆谩?/p>

    質(zhì)粒內(nèi)切酶分析鑒定:內(nèi)切酶分析參照說明書進行,依次在EP管中加入質(zhì)粒DNA、10×緩沖液、內(nèi)切酶BamHⅠ與BamHⅢ,用滅菌去離子水補至總體積20μl,37℃水浴2~3h,然后加樣于1%瓊脂凝膠進行電泳,紫外燈下觀察結(jié)果。

    1.2.3基因轉(zhuǎn)染 收獲處于對數(shù)生長期的大鼠肝星狀細胞,以5×104個細胞/孔轉(zhuǎn)種于12孔的培養(yǎng)基中,37℃、5%CO2環(huán)境中培養(yǎng)24h,細胞長至80%融合;棄去細胞培養(yǎng)基,并用無血清DMEM培養(yǎng)基洗滌細胞兩次備轉(zhuǎn)染用;每孔細胞加入200μl溶液Ⅲ,前后輕微搖晃培養(yǎng)板,并同時用Puc119空質(zhì)粒作陰性對照;37℃、5%CO2環(huán)境中培養(yǎng)6h后加入1 000μl含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基,不棄去轉(zhuǎn)染液。

    1.2.4G418篩選 轉(zhuǎn)染后經(jīng)24h,待細胞生長接近完全融合時以1:10密度傳代于含300μg/ml G418的篩選培養(yǎng)基中繼續(xù)培養(yǎng),同時用不加轉(zhuǎn)染液的細胞作為對照;當對照組細胞大部分死亡時,更換一次篩選培養(yǎng)基,G418濃度降低至150μg/ml以維持篩選用,繼續(xù)培養(yǎng);約3~4周后,可見抗性克隆形成,待其逐漸增大后,逐一轉(zhuǎn)入50ml培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)。

    1.2.5mIκBα蛋白的檢測(Western blot) 細胞蛋白質(zhì)提?。哼x用生長良好的細胞,用預冷至4℃的PBS緩沖液漂洗細胞2次,棄去洗液并吸取殘余的PBS液體,加入0.5ml裂解緩沖液置于冰上作用20min,用細胞刮棒將細胞集中于平皿的一側(cè),并用吸管把細胞碎片連同裂解緩沖液一起轉(zhuǎn)移至經(jīng)過冷卻的EP管內(nèi),于4℃以12 000g將裂解物離心2min,將上清液轉(zhuǎn)移至另一EP管內(nèi),并在-70℃中保存。

    PAGE電泳:配制1%的瓊脂糖凝膠;組裝灌膠模具及電泳槽,準備電泳裝置,并用瓊脂糖凝膠封邊;配制8%的分離用聚丙烯酰胺變性膠,在加入過硫酸胺和TEMED后,輕輕攪拌混勻,勿使凝膠聚合;小心用吸管將凝膠加入灌膠模具內(nèi),至距梳齒約0.5cm,并避免產(chǎn)生氣泡,然后在分離膠上面加入一層約5mm厚的水層以隔絕空氣的接觸,直立置于室溫下20~60min,直至凝膠聚合。在凝膠聚合后,會在分離膠和水層之間出現(xiàn)一個清晰的折光線;吸盡分離膠上的水,將梳子置于分離膠上,直至梳齒遠端距分離膠約0.5cm;配制積層膠溶液,同樣在加入過硫酸胺和TEMED后,輕輕攪拌混勻,勿使凝膠聚合;用注射器將積層膠緩慢加入分離膠表面,注意不能產(chǎn)生氣泡,時溫下靜置20~30min,直至凝膠聚合。小心拔除梳子,不要將加樣孔撕裂;反復用電泳液沖洗加樣孔數(shù)次。以去除殘留的未聚合的丙烯酰胺及其它污物,然后將電泳緩沖液加入電泳槽中,短板接正極;將蛋白質(zhì)樣品(0.1μg/10μl)與5×SDS凝膠上樣緩沖液(1∶5 v/v)充分在一個EP管中混勻后,置于沸水浴中變性10min,稍作離心;用微量注射器將樣品加入加樣孔中,注意不能帶入氣泡,并使樣品不溢出;接通電源,短板對正極,保持恒壓為200V(注意調(diào)整電流,開始為100mA,電泳快結(jié)束時為60mA),電泳持續(xù)約60min,且電泳在4℃下完成;通過肉眼觀察,當溴酚藍電泳至距離電泳槽底部約2~3cm時,關(guān)閉電源,停止電泳;從電泳槽中取出凝膠玻璃板,取出凝膠。

    轉(zhuǎn)膜:轉(zhuǎn)移緩沖液及雙蒸餾水等均置于4℃低溫預處理;將硝酸纖維素浸泡在轉(zhuǎn)移緩沖液中20min,勿用手指直接接觸硝酸纖維素膜,打開轉(zhuǎn)移盒,用轉(zhuǎn)移緩沖液將海綿墊及Whatman濾紙完全浸透,將濾紙剪成與待轉(zhuǎn)移的凝膠大小一致。勿用手指直接接觸濾紙;小心將凝膠置于三層Whatman濾紙上,避免產(chǎn)生氣泡,以轉(zhuǎn)移緩沖液濕潤膠面,小心從凝膠的一邊開始將硝酸纖維素膜放在膠面上,避免氣泡形成,并勿用手指直接接觸,然后在硝酸纖維素膜表面放三層Whatman濾紙,用干凈的小試管輕輕滾過濾紙-凝膠-硝酸纖維膜-濾紙“三明治”上,以消除可能存在的所有氣泡,然后將他們置于轉(zhuǎn)移盒中;將轉(zhuǎn)移盒置于電轉(zhuǎn)移裝置中,陽極對硝酸纖維膜一側(cè),連接好電極,使與SDS相結(jié)合而帶負電荷的蛋白質(zhì)向正極泳動,在恒溫狀態(tài)下以200mA轉(zhuǎn)移60~120min,整個轉(zhuǎn)移過程置于4℃低溫環(huán)境中進行。

    免疫顯色及結(jié)果分析: 終止電轉(zhuǎn)移,拆下轉(zhuǎn)移裝置,將濾紙揭下;將膜置于3%BSA/TBS溶液中,液面超過膜,在搖床上緩搖30~80min,保證充分封閉非特異性位點;棄去封閉液,用TBS洗膜三次;一抗反應:用0.5%BSA/TBS按1∶500稀釋一抗,將膜與一抗溶液置于封閉的塑料袋中在37℃下充分孵育,同時溫和搖動至少1h;洗膜:棄去一抗,用TBS洗膜三次,每次10min;二抗反應:棄去TBS,用0.5%BSA/TBS按1∶200稀釋二抗,將膜同上置于二抗溶液中,溫和搖動至少1h或過夜;洗膜:棄去二抗,用TBS洗膜三次,每次10min;顯色:配好NBT/BCIP顯色液后,在肉眼觀察下進行蘭色顯色反應,用雙蒸餾水終止顯色反應。

    2 結(jié) 果

    2.1質(zhì)粒的鑒定重組質(zhì)粒pCMX-mIκBα圖譜如圖1,質(zhì)粒DNA經(jīng)BamHⅠ與HindⅢ酶切后產(chǎn)物經(jīng)瓊脂凝膠電泳顯示2條帶:分別為4.5、0.94kb,大小符合預期,見圖2。

    2.2Westernblot分析mIκBα蛋白在大鼠HSC中的表達轉(zhuǎn)染pCMX-IκBαM的大鼠HSC內(nèi)IκBα基因表達高于未轉(zhuǎn)染組HSC,見圖3。

    3 討 論

    A為轉(zhuǎn)染組;B為大鼠肝細胞圖3 Western blot分析IκBαM蛋白在大鼠HSC中的表達

    細胞在靜息狀態(tài)下,NFκB以無活性的潛在狀態(tài)存在于細胞漿中,它與一種抑制因子結(jié)合組成為一異源多聚體P50-P60-IκBα或IκBβ。三聚體中IκB類抑制因子的存在可阻遏P50-P60復合物的二聚體化,因此喪失活性。當細胞受到腫瘤壞死因子(TNF)、蛋白酶C激活物PMA等NFκB激活劑刺激時,IκB即從三聚體中解離出來,暴露出P50亞基上的易位信號和P60亞基上DNA結(jié)合位點,從而使異二聚物表現(xiàn)出NFκB活性,并從細胞質(zhì)中易位到細胞核中,與IκB基因序列相結(jié)合,從而發(fā)揮轉(zhuǎn)錄調(diào)控作用[1,2]。全部IκB蛋白均含有一個與NFκB連接的中心區(qū),該區(qū)域由6個或更多的保守的錨蛋白重復構(gòu)成。另外IκB的C端區(qū)對其抑制活性至關(guān)重要的,而N端含有一個調(diào)控結(jié)構(gòu)域[3]。誘導型IκB降解依賴于刺激誘導的N端調(diào)控區(qū)2個保守的絲氨酸磷酸化,在IκBα對應的位點是S32和S36。IKK(IκB激酶)復合體經(jīng)由上游激活物與IKKγ(IκB激酶調(diào)控亞基)相互作用而活化,并導致結(jié)合NFκB的IκB磷酸化及降解,使IκBα迅速被26S蛋白酶體降解。Wang等[4]發(fā)現(xiàn)NFκB的抑制劑IκB的32位和36位蛋白殘基發(fā)生突變,即mIκBα,其失去磷酸化位點從而使IκB無法被降解而能夠持續(xù)地抑制NFκB活性。

    通過mIκBα基因的轉(zhuǎn)入來抑制NFκB的活性從而達到誘導細胞凋亡的目的,目前主要應用于腫瘤細胞的基因治療方面。Sumitomo等[5]構(gòu)建了IκBα基因N端截短突變的腺病毒重組體,并將它轉(zhuǎn)入一個分泌多種細胞因子的膀胱癌細胞系KU-19-19細胞中,發(fā)現(xiàn)這個腺病毒重組體能有效感染該細胞系并持續(xù)表達對NFκB的抑制作用,且不會被磷酸化及水解,并能抑制KU-19-19細胞的生長及其細胞因子的產(chǎn)生。最有意義的是,發(fā)現(xiàn)這個腺病毒重組體的感染可以直接導致腫瘤細胞的凋亡,而癌旁正常細胞則未見明顯損傷。另外,Chen等[6]構(gòu)建了一種叫Adv-SR-IκBα的NFκB超級抑制物,將這種抑制物感染口腔磷狀細胞癌細胞(SCC)并表達后發(fā)現(xiàn),該抑制物不但能抑制TNF-α誘導的NFκB激活,還能增強TNF-α誘導的Caspase-8和Caspase-3的激活。mIκBα經(jīng)腺病毒介導轉(zhuǎn)入耐受化療藥物的小鼠體內(nèi)腫瘤細胞中,能誘導腫瘤細胞對TNF-α或化療藥物致敏而發(fā)生凋亡,瘤體萎縮[7]。Duffey等[8]將mIκBα基因轉(zhuǎn)入表達前細胞因子IL-1、IL-6、IL-8和GM-CSF的頭頸部鱗狀上皮細胞癌細胞中,發(fā)現(xiàn)mIκBα能使該細胞大量凋亡。而且NFκB基本活性和TNF-α誘導后的激活活性均明顯被抑制,同時上述4種因子的產(chǎn)生亦受到抑制。隨后將此癌細胞接種到SCID小鼠體內(nèi)做類似研究也得到相似結(jié)果,由此表明,mIκBα基因的表達可以抑制腫瘤細胞在體內(nèi)的生長。

    本實驗主要研究mIκBα表達對大鼠肝星狀細胞凋亡的作用。首先,通過脂質(zhì)介導mIκBα基因進入大鼠肝星狀細胞中:mIκBα真核表達載體pCMXMIκBα是以pCMX質(zhì)粒為基本載體,在其中插入mIκBα基因完整編碼序列構(gòu)成的。轉(zhuǎn)染方法上,本實驗選用了脂質(zhì)介導的轉(zhuǎn)染方法,其有效率是先前磷酸鈣沉淀法的5~10倍,且使用方便,并采用了第三代脂質(zhì)體Lipofectiamine2000,它的轉(zhuǎn)染能力較第一代脂質(zhì)體增強了2~30倍,對真核細胞轉(zhuǎn)染效率尤其高。轉(zhuǎn)染后經(jīng)G418篩選穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的表達株,然后應用Western blot技術(shù)作mIκBα相應蛋白質(zhì)表達的檢測。

    本研究將mIκBα基因成功導入大鼠肝星狀細胞,并獲得了高效、穩(wěn)定表達mIκBα的大鼠肝星狀細胞,為進一步從體外、體內(nèi)兩個層面探討mIκBα對大鼠肝星狀細胞凋亡的作用打下良好的實驗基礎。

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    [編輯] 一 凡

    R34

    A

    1673-1409(2009)02-R009-04

    10.3969/j.issn.1673-1409(R).2009.02.003

    2009-01-08

    楊友誼(1964-),男,湖北仙桃人,副教授,碩士,從事生物化學和分子生物學教學與研究工作。

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