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    外源添加苯甲酸對(duì)紫蘇種子發(fā)芽和幼苗生長(zhǎng)的影響

    2024-04-23 04:58:36薛彤彤謝萌蒙孫輝李沖偉
    關(guān)鍵詞:生長(zhǎng)

    薛彤彤,謝萌蒙,孫輝,李沖偉,

    (1黑龍江大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院/農(nóng)業(yè)微生物技術(shù)教育部工程研究中心/黑龍江省寒地生態(tài)修復(fù)與資源利用重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室/黑龍江省普通高校微生物重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,哈爾濱 150080;2樺南農(nóng)盛園食品有限公司,黑龍江樺南 154400)

    0 引言

    紫蘇(Perillafrutescens)又名荏、赤蘇等,是唇形科紫蘇屬且生長(zhǎng)周期較短的一年生草本植物,是中國(guó)衛(wèi)生部頒發(fā)的第一批藥用和食用同源的植物[1]。紫蘇籽和葉均可直接食用,根莖可入中藥[2],紫蘇籽富含α-亞麻酸、油酸、維生素B1和其他不飽和脂肪酸,具有血脂調(diào)節(jié)功能、增強(qiáng)記憶力、止咳平喘、解熱消炎、抗衰、抗過敏和抗腫瘤等功能[3],在營(yíng)養(yǎng)學(xué)領(lǐng)域堪稱“植物腦黃金”[4],具有極高的開發(fā)價(jià)值。紫蘇原產(chǎn)于東亞地區(qū),因經(jīng)濟(jì)效益顯著,現(xiàn)美國(guó)、加拿大、俄羅斯也有大面積商業(yè)種植[5]。紫蘇在中國(guó)華北、西北、華南、西南、華中及臺(tái)灣均有分布和栽培,其栽培史距今已超過2000年。中國(guó)是紫蘇出口量最大的國(guó)家,常年出口日本、韓國(guó)等地[6]。近年來,隨著紫蘇種植面積的不斷增加,紫蘇種植過程中的連作障礙現(xiàn)象越來越嚴(yán)重,這給紫蘇籽的品質(zhì)和產(chǎn)量帶來了嚴(yán)重的影響[7]。

    已有研究證實(shí),引起作物連作障礙的原因,除了土壤理化性質(zhì)劣變、微生物群落結(jié)構(gòu)改變和病原微生物豐度增加外,自毒作用也是導(dǎo)致作物連作障礙的一個(gè)主要因素[8]。作物在生長(zhǎng)過程中不斷向環(huán)境釋放次生代謝物作為信號(hào)因子,包括有機(jī)酸、酚類、醌類、香豆素、黃酮類和甾族化合物等物質(zhì),其中以酚酸類物質(zhì)較多。隨著作物種植年限的增長(zhǎng),在土壤中這些信號(hào)分子積累到一定濃度反過來會(huì)對(duì)植物生長(zhǎng)產(chǎn)生影響,往往表現(xiàn)為對(duì)植物的毒害作用[9]。近年來,酚酸作為一類主要的植物化感物質(zhì)被學(xué)者廣泛關(guān)注[10]。

    酚酸類化感物質(zhì)主要包括苯甲酸、對(duì)羥基苯甲酸、肉桂酸和迷迭香酸等[11]。蔡淼[12]研究表明,苯甲酸是穿心蓮連作障礙的化感物質(zhì),它們通過破壞穿心蓮抗氧化酶代謝合成過程,對(duì)穿心蓮的生長(zhǎng)造成不利影響。李培棟等[13]研究發(fā)現(xiàn),酚酸物質(zhì)可以降低黃瓜幼苗根系活力,增加花生植株的發(fā)病率抑制幼苗的生長(zhǎng)。焦煥然等[14]研究發(fā)現(xiàn),酚酸類化感物質(zhì)導(dǎo)致植物根際土壤病原真菌豐度增加,對(duì)植物根系造成損害,引起中藥材產(chǎn)量、品質(zhì)下降。Zhou 等[15]研究表明,阿魏酸(肉桂酸衍生物)能夠通過改變土壤微生物群落結(jié)構(gòu)抑制黃瓜幼苗的生長(zhǎng)。Cui 等[16]以蘭州百合為研究對(duì)象,配制不同濃度的根際分泌物2,4-DTBP,探究其對(duì)根際土壤微生物群落結(jié)構(gòu)的影響,結(jié)果表明微生物群落結(jié)構(gòu)組成發(fā)生變化,土壤真菌病原微生物增加,有益微生物豐度降低。近年來,對(duì)化感作用的研究主要集中在化感物質(zhì)的來源方面(植物根系分泌物、秸稈分解和根際土壤提取液),單一化感物質(zhì)對(duì)植物自毒作用的研究相對(duì)較少[17]。課題組前期利用高效液相色譜檢測(cè)到連作2年和連作3年紫蘇根際土壤中存在著一定濃度的苯甲酸(2.08 mmol/L),因此,筆者以紫蘇種子為研究對(duì)象,在催芽過程中添加不同濃度的苯甲酸,探討苯甲酸作為化感物質(zhì)對(duì)紫蘇種子萌發(fā)、幼苗生長(zhǎng)及葉片抗氧化酶活性的影響,旨在為探究紫蘇連作障礙機(jī)理提供理論基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)時(shí)間、地點(diǎn)

    實(shí)驗(yàn)于2021年9—12月在黑龍江大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院生態(tài)學(xué)專業(yè)實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行。

    1.2 實(shí)驗(yàn)材料

    供試紫蘇種子為‘龍紫蘇1 號(hào)’,由黑龍江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院大慶分院魏國(guó)江提供。

    將0.1221 g 苯甲酸溶解于100 mL 蒸餾水得到10 mmol/L 苯甲酸母液,將母液稀釋,蒸餾水作為對(duì)照,配制0、1、1.5、2、2.5、3 mmol/L苯甲酸溶液。

    1.3 實(shí)驗(yàn)方法

    1.3.1 種子萌發(fā)實(shí)驗(yàn)選擇大而飽滿的紫蘇種子,浸種30 min后取出洗凈,實(shí)驗(yàn)采用培養(yǎng)皿培養(yǎng)法,在每個(gè)培養(yǎng)皿中鋪設(shè)2 層濾紙,分別添加5 mL 各濃度處理液,每個(gè)培養(yǎng)皿擺放30粒種子,每組做3次重復(fù)。將它們隨機(jī)放置在25℃的培養(yǎng)箱中進(jìn)行培養(yǎng)。每天輪換添加等量的蒸餾水和苯甲酸溶液,在每個(gè)培養(yǎng)皿中保持相同的溶液濃度,定期記錄每個(gè)培養(yǎng)皿內(nèi)發(fā)芽的種子數(shù)量。發(fā)芽判別參考GB/T 3543.4—1995,當(dāng)紫蘇種子胚根與種子的長(zhǎng)度相同,胚芽長(zhǎng)為種子長(zhǎng)度的一半時(shí),判定為種子發(fā)芽。測(cè)量紫蘇種子胚根、胚軸、株鮮重和連續(xù)7 d種子發(fā)芽情況,計(jì)算發(fā)芽率(Gp)、發(fā)芽勢(shì)(GE)、發(fā)芽指數(shù)(GI)、活力指數(shù)。

    活力指數(shù)=種苗生長(zhǎng)量×GI…………………… (4)

    式中,M1為發(fā)芽勢(shì)天數(shù)內(nèi)的正常發(fā)芽粒數(shù),M為實(shí)驗(yàn)種子數(shù),Gt為發(fā)芽實(shí)驗(yàn)周期內(nèi)每日發(fā)芽數(shù),Dt為發(fā)芽日數(shù)。1.3.2 幼苗生長(zhǎng)實(shí)驗(yàn)幼苗生長(zhǎng)實(shí)驗(yàn)采用于育苗盒育苗法,每個(gè)濃度培養(yǎng)4株紫蘇幼苗。育苗15 d后,選取長(zhǎng)勢(shì)良好的幼苗移栽至花盆中,實(shí)驗(yàn)期間花盆擺放位置隨機(jī)。每個(gè)花盆繼續(xù)加入對(duì)應(yīng)濃度的苯甲酸5 mL,對(duì)照組加入等量蒸餾水。實(shí)驗(yàn)期間保持土壤濕潤(rùn),連續(xù)觀察幼苗生長(zhǎng)情況。45 d后測(cè)量幼苗根重及葉片抗氧化酶活性,包括超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化物酶(POD)、過氧化氫酶(CAT)。葉片酶活性采用張治安等[18]的方法測(cè)定。

    1.4 數(shù)據(jù)處理

    使用SPSS 22.0 版(SPSS Inc.,Armonk,NY,USA)選用單因素方差分析(ANOVA)和顯著差異(LSD)檢驗(yàn)對(duì)所有參數(shù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,P<0.05 作為顯著性水平,應(yīng)用Excel軟件繪圖。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 苯甲酸對(duì)紫蘇種子萌發(fā)的影響

    由表1 可以看出,不同處理紫蘇種子的發(fā)芽率和發(fā)芽勢(shì)變化不顯著,發(fā)芽指數(shù)和活力指數(shù)有顯著變化,總體表現(xiàn)為低濃度促進(jìn)高濃度抑制。發(fā)芽率在低濃度條件下上升,1.5 mmol/L 苯甲酸處理達(dá)到最大,2.5 mmol/L 時(shí)抑制率達(dá)到50%。發(fā)芽勢(shì)在苯甲酸0~2.5 mmol/L 濃度范圍內(nèi)增加,1.5 mmol/L 時(shí)發(fā)芽勢(shì)達(dá)到最高(P<0.05)。當(dāng)苯甲酸濃度為1.5 mmol/L 時(shí),紫蘇種子發(fā)芽指數(shù)和活力指數(shù)表現(xiàn)一致均達(dá)到最高,即紫蘇種子萌發(fā)效果最好。結(jié)果表明,紫蘇種子在低濃度的苯甲酸條件下更易萌發(fā),隨著苯甲酸濃度的增加發(fā)霉和死亡的種子數(shù)目逐漸增多,說明高濃度的苯甲酸嚴(yán)重?fù)p害了紫蘇種子的活性導(dǎo)致種子霉變甚至死亡,抑制種子萌發(fā)。

    表1 苯甲酸濃度對(duì)紫蘇種子萌發(fā)的影響

    2.2 苯甲酸對(duì)紫蘇幼苗生長(zhǎng)的影響

    由表2 可以看出,紫蘇幼苗的胚根長(zhǎng)、胚軸長(zhǎng)和鮮重受到苯甲酸的抑制,隨著苯甲酸濃度的增加逐漸降低,與對(duì)照組具有顯著差異(P<0.05),說明苯甲酸能夠抑制紫蘇幼苗的生長(zhǎng),且濃度越高抑制效果越嚴(yán)重。

    表2 苯甲酸濃度對(duì)紫蘇幼苗生長(zhǎng)的影響

    由圖1可知,隨著苯甲酸濃度的升高,紫蘇幼苗根重明顯下降,且與對(duì)照組相比具有顯著差異(P<0.05),根重較對(duì)照組分別降低了15.79%、23.68%、28.95%、33.79%和46.84%。結(jié)果表明,不同濃度苯甲酸對(duì)紫蘇根的生長(zhǎng)起到顯著的抑制作用。

    圖1 不同濃度苯甲酸對(duì)紫蘇幼苗根重的影響

    2.3 苯甲酸對(duì)紫蘇葉片抗氧化酶活性的影響

    2.3.1 紫蘇葉片SOD 活性SOD 酶在細(xì)胞中起著清除超氧陰離子自由基的作用,廣泛存在于動(dòng)植物和微生物細(xì)胞中。如圖2所示,隨著外源苯甲酸濃度的增加,紫蘇葉片SOD酶活性呈先上升后下降的趨勢(shì),苯甲酸濃度1.5 mmol/L時(shí)紫蘇葉片SOD活性最高,比對(duì)照組增加20.26%(P<0.05)。苯甲酸濃度超過2.5 mmol/L,SOD活性比對(duì)照組顯著降低,表明紫蘇葉片SOD活性受到顯著抑制。

    圖2 不同濃度苯甲酸對(duì)紫蘇葉片SOD酶的影響

    2.3.2 紫蘇葉片POD活性POD 是以電子受體催化氧化底物的一種氧化還原酶,能將自由基轉(zhuǎn)變?yōu)榱u基自由基或氧負(fù)離子而清除,從而保持細(xì)胞內(nèi)環(huán)境穩(wěn)定,維持正常生命活動(dòng)。同時(shí),還具有抗氧化作用,對(duì)生物體的許多生理生化過程有著重要影響[19]。如圖3所示,隨著外源苯甲酸濃度的升高,紫蘇葉片POD 活性呈下降趨勢(shì),較對(duì)照組分別降低了13.93%、18.22%、19.29%、22.14%和30.36%,與對(duì)照組存在顯著差異(P<0.05)。

    圖3 不同濃度苯甲酸對(duì)紫蘇葉片POD酶的影響

    2.3.3 紫蘇葉片CAT 活性CAT 酶普遍存在于植物組織中,是重要的酶促防御系統(tǒng)之一,能夠清除代謝中產(chǎn)生的H2O2,避免過氧化氫積累對(duì)細(xì)胞造成損傷,其是與植物抗逆性相關(guān)的酶。如圖4 所示,隨著外源苯甲酸濃度的增加,紫蘇葉片CAT 活性呈下降趨勢(shì),較對(duì)照組分別降低了4.22%、8.41%、19.55%、31.31%和54.13%,與對(duì)照組差異顯著(P<0.05)。

    圖4 不同濃度苯甲酸對(duì)紫蘇葉片CAT酶的影響

    3 討論

    連作障礙是影響農(nóng)作物產(chǎn)量和質(zhì)量的重要原因之一,其中,以酚酸類物質(zhì)的影響最大,已成為研究連作障礙問題的典型代表物質(zhì)[19-20]。紫蘇種子粒徑小、種皮較薄,易受化感物質(zhì)作用,故本實(shí)驗(yàn)探討外源添加不同濃度苯甲酸對(duì)紫蘇種子萌發(fā)和幼苗生長(zhǎng)的影響。本研究結(jié)果表明,隨著苯甲酸濃度的增加,紫蘇種子的萌發(fā)呈現(xiàn)低濃度促進(jìn)和高濃度抑制的現(xiàn)象,這一結(jié)果與韓春梅[21]的研究結(jié)果一致,具體表現(xiàn)為1.5 mmol/L 達(dá)到最大促進(jìn)濃度,2.5 mmol/L達(dá)到半數(shù)抑制濃度,隨著苯甲酸濃度的繼續(xù)增加,發(fā)霉和死亡的種子數(shù)目逐漸增多,說明高濃度苯甲酸對(duì)紫蘇種子萌發(fā)有抑制作用。

    根際是植物進(jìn)行營(yíng)養(yǎng)攝取最主要的器官[22],根部重量在一定程度上能夠反映植物的生長(zhǎng)速度[23]。本研究結(jié)果表明,隨著苯甲酸濃度的升高,與對(duì)照組相比,紫蘇幼苗根重有明顯下降的趨勢(shì)(P<0.05),對(duì)紫蘇幼苗的胚根長(zhǎng)、胚軸長(zhǎng)和植株鮮重均表現(xiàn)出明顯的抑制作用,整體呈現(xiàn)顯著下降的趨勢(shì)(P<0.05),說明苯甲酸抑制紫蘇幼苗的生長(zhǎng),且濃度越高抑制作用越明顯。

    H2O2、O2-、-OH等是植物生長(zhǎng)代謝過程中產(chǎn)生的活性氧,植物通過自身的活性氧產(chǎn)生與消耗體系,使活性氧保持動(dòng)態(tài)平衡[24]。有研究表明,環(huán)境脅迫條件下活性氧平衡失調(diào),誘導(dǎo)生物膜過氧化,最終導(dǎo)致細(xì)胞膜的損傷乃至植株死亡[25]。酶促防御體系是膜保護(hù)系統(tǒng)較為重要的環(huán)節(jié),SOD 酶在平衡體系中起到基礎(chǔ)的作用,將毒性較強(qiáng)的超氧物陰離子轉(zhuǎn)化成為次級(jí)毒性的過氧化氫[26],在POD、CAT酶的配合下將過氧化氫催化分解,避免過氧化氫與超氧物陰離子相互作用形成更多的氧自由基,導(dǎo)致毒害植物本身[27]。當(dāng)植物處于輕度脅迫下,植物細(xì)胞通過自身酶的調(diào)節(jié)和釋放,避免嚴(yán)重的氧化損傷[28]。因此,SOD、POD、CAT 等酶活性可以客觀反映植株受損傷的程度。

    許多研究表明,酚酸類化感物質(zhì)的積累會(huì)誘發(fā)活性氧平衡失調(diào)[29-31],如低濃度苯甲酸處理的西瓜幼苗,根際POD 活性顯著升高,高濃度下則促進(jìn)作用消失,表現(xiàn)為抑制作用[32]。本研究發(fā)現(xiàn),隨著苯甲酸濃度的增加,SOD、POD和CAT活性均發(fā)生了變化,SOD活性先升高后降低,POD 和CAT 活性呈直線下降趨勢(shì),說明低濃度苯甲酸激發(fā)了植物酶促防御系統(tǒng),提高了SOD 活性,在苯甲酸濃度達(dá)到2.5 mmol/L 時(shí),脅迫作用增強(qiáng),SOD活性顯著降低,可能是由于POD、CAT等酶活性持續(xù)降低,無法清除SOD活性升高帶來的更多的過氧化氫,導(dǎo)致無法阻止過氧化氫與O2-相互作用形成的大量氧自由基,導(dǎo)致膜過氧化,破壞了細(xì)胞膜脂結(jié)構(gòu),從而抑制了幼苗的生長(zhǎng)。

    在自然條件下,化感物質(zhì)在土壤中能夠發(fā)生轉(zhuǎn)移、轉(zhuǎn)化和微生物降解,會(huì)改變其作用強(qiáng)度。由于本實(shí)驗(yàn)在室內(nèi)進(jìn)行,與田間情況存在一定的差異,因此,設(shè)計(jì)田間試驗(yàn)進(jìn)一步驗(yàn)證苯甲酸作為化感物質(zhì)的實(shí)際臨界濃度具有更重要的實(shí)踐意義。

    4 結(jié)論

    本研究證明,外源添加苯甲酸對(duì)紫蘇種子發(fā)芽表現(xiàn)為低濃度促進(jìn)高濃度抑制,對(duì)紫蘇幼苗的胚根長(zhǎng)、胚軸長(zhǎng)和植株鮮重均表現(xiàn)出明顯的抑制作用。苯甲酸作為一種信號(hào)因子,在一定閾值內(nèi)能夠啟動(dòng)植株的酶促保護(hù)系統(tǒng),使植株做出適應(yīng)性調(diào)整,當(dāng)濃度超過防御系統(tǒng)保護(hù)閾值,活性氧平衡嚴(yán)重失調(diào),最終導(dǎo)致紫蘇幼苗生長(zhǎng)受到抑制。因此,筆者推測(cè)苯甲酸是紫蘇連作障礙的化感物質(zhì)之一,它破壞植物酶促防御系統(tǒng),抑制紫蘇種子萌發(fā)和幼苗生長(zhǎng),在多年連作土壤中積累造成作物產(chǎn)量和質(zhì)量的下降,這為采取有效措施緩解紫蘇連作障礙提供了理論依據(jù)。

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