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    豬腹膜間皮細(xì)胞的分離培養(yǎng)及初步應(yīng)用

    2024-04-02 07:20:06黃媛媛陳嘉瑜馮志新邵國青王先煒熊祺琰
    畜牧獸醫(yī)學(xué)報(bào) 2024年3期

    黃媛媛,王 佳,陳嘉瑜,甘 源,袁 廳,馮志新,3,邵國青,3,王先煒,熊祺琰,3*

    (1.南京農(nóng)業(yè)大學(xué)動物醫(yī)學(xué)院,南京 210095;2.江蘇省農(nóng)業(yè)科學(xué)院獸醫(yī)研究所/農(nóng)業(yè)部獸用生物制品工程技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,南京 210014;3.獸用生物制品(泰州)國泰技術(shù)創(chuàng)新中心,泰州 225300)

    間皮是分布于腹膜、胸膜、心包膜和大多數(shù)內(nèi)臟器官表面的單層扁平上皮,其基本功能是作為一種保護(hù)性的濕潤光滑表面減少臟器之間的摩擦,也是抵抗微生物和腫瘤細(xì)胞入侵的重要防線[1]。間皮主要由間皮細(xì)胞構(gòu)成,其源自于中胚層,但具有與上皮細(xì)胞相似的特征,如細(xì)胞極性、基底膜黏附、胞間緊密連接、表面微絨毛等[2-3]。間皮細(xì)胞可分泌黏多糖和表面活性物質(zhì)為臟器提供潤滑和保護(hù),同時(shí)間皮細(xì)胞還具有其他多種生理功能,如參與物質(zhì)轉(zhuǎn)運(yùn)、參與炎癥反應(yīng)、調(diào)節(jié)凝血與纖溶、抑制腫瘤細(xì)胞擴(kuò)散、參與間皮損傷修復(fù)等,同時(shí)也與多種病理過程有關(guān),如漿膜炎(胸膜炎、腹膜炎、心包炎)、粘連、腫瘤的發(fā)生發(fā)展等[4-6]。

    漿膜炎是動物傳染病的一類常見臨床表現(xiàn),包括胸膜炎、腹膜炎、心包炎,引起動物漿膜炎常見的病原包括副豬革拉瑟菌(Glaesserellaparasuis,GPS)[7]、豬鼻支原體(Mycoplasmahyorhinis,Mhr)[8-9]、鴨疫里氏桿菌(Riemerellaanatipestifer)[10]等,給我國養(yǎng)殖業(yè)造成嚴(yán)重經(jīng)濟(jì)損失。其中Mhr在世界范圍內(nèi)廣泛感染,可引起多發(fā)性漿膜炎、關(guān)節(jié)炎,給養(yǎng)豬業(yè)帶來重大經(jīng)濟(jì)損失[11-12]。細(xì)胞模型是病原學(xué)研究的重要基礎(chǔ),本研究以豬腹膜間皮細(xì)胞(peritoneal mesothelial cell,PMC)為對象,建立豬原代間皮細(xì)胞分離培養(yǎng)方法,并以Mhr作為引起漿膜炎病原的代表將PMC細(xì)胞初步用于體外感染試驗(yàn),以期為引起豬漿膜炎相關(guān)病原的感染致病機(jī)制研究提供細(xì)胞模型。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 試驗(yàn)動物 1~3月齡健康二元雜交豬(長白-大白)。

    1.1.2 豬鼻支原體 Mhr 495c強(qiáng)毒株由江蘇省農(nóng)業(yè)科學(xué)院獸醫(yī)研究所分離并保存。

    1.1.3 主要試劑 DMEM/F12培養(yǎng)基、0.25%EDTA-胰酶、特級胎牛血清、鼠單抗白細(xì)胞 CD45單克隆抗體、兔抗第Ⅷ因子單克隆抗體購自賽默飛科技有限公司。青霉素、鏈霉素、DAPI、LDH試劑盒購自上海碧云天生物技術(shù)有限公司。紅細(xì)胞裂解液和膠原酶購自北京索萊寶科技有限公司。鼠抗波形蛋白單克隆抗體、兔抗角蛋白18多克隆抗體、FITC-羊抗兔IgG二抗、Cy3-羊抗鼠IgG二抗購自武漢博士德生物工程有限公司。明膠、DMSO購自西格瑪奧德里奇(上海)貿(mào)易有限公司。KM2培養(yǎng)基由江蘇省農(nóng)業(yè)科學(xué)院獸醫(yī)研究所自制。

    1.2 方法

    1.2.1 豬原代腹膜間皮細(xì)胞的分離與培養(yǎng) 無菌采集豬腹腔大網(wǎng)膜組織,放入裝有含雙抗(青霉素100 U·mL-1、鏈霉素100 μg·mL-1)的無菌D-Hanks溶液的離心管中,低溫條件下運(yùn)送至實(shí)驗(yàn)室。將大網(wǎng)膜組織置于培養(yǎng)皿內(nèi),用預(yù)冷的D-Hanks溶液洗滌6~8遍。盡量剔除血管和脂肪,將剩余大網(wǎng)膜組織剪成1 cm2大小,加入預(yù)熱的0.1% Ⅰ型膠原酶消化液,混勻后置于37 ℃搖床180 r·min-1消化約8 min,期間手動劇烈震蕩一次,而后加入3倍~4倍體積的D-Hanks溶液終止消化。用力震蕩,使細(xì)胞從消化的組織中充分釋放出來,棄去消化后的組織,過150目篩網(wǎng),收集液體于50 mL尖底離心管,300g離心10 min,棄上清。如紅細(xì)胞較多,加入紅細(xì)胞裂解液室溫處理5 min裂解紅細(xì)胞,再用D-Hanks洗滌細(xì)胞2次,最終用含15%胎牛血清(fetal bovine serum,FBS)和雙抗的DMEM/F12培養(yǎng)基重懸。將細(xì)胞按1×106~2×106·mL-1濃度鋪入25 cm2細(xì)胞培養(yǎng)瓶內(nèi),置于含5% CO2培養(yǎng)箱37 ℃培養(yǎng),差速貼壁2次,即貼壁1 h后換新的細(xì)胞瓶,再次貼壁1 h,收集上清于15 mL尖底離心管,離心收集細(xì)胞,用完全培養(yǎng)基重懸,按3 × 105·mL-1濃度鋪入0.1%明膠包被的25 cm2細(xì)胞培養(yǎng)瓶,置于含5% CO2培養(yǎng)箱37 ℃培養(yǎng)。

    1.2.2 明膠包被方法 使用無菌PBS配制1%明膠溶液,試驗(yàn)前用PBS稀釋至0.1%后過 0.22 μm濾器除菌,取3 mL加入25 cm2細(xì)胞培養(yǎng)瓶中完全覆蓋瓶底或取500 μL明膠加入24孔板中使其完全覆蓋孔底,4 ℃過夜,次日倒去多余液體并晾干1~2 h即可使用。

    1.2.3 細(xì)胞傳代培養(yǎng) 當(dāng)原代細(xì)胞的融合度達(dá)85%~90%時(shí),需對PMC細(xì)胞進(jìn)行傳代處理。使用無菌PBS潤洗細(xì)胞后,向瓶內(nèi)加入適量0.25%胰酶-EDTA消化液,使其完全覆蓋瓶底,置于37 ℃培養(yǎng)箱內(nèi)消化2~4 min,消化過程中注意觀察細(xì)胞形態(tài)變化,當(dāng)細(xì)胞變圓并與瓶底脫離后,加入與胰酶等量的完全培養(yǎng)基終止消化過程。收集瓶內(nèi)液體于尖底離心管,300g離心10 min,用完全培養(yǎng)基重懸細(xì)胞沉淀,按1 × 105·mL-1濃度轉(zhuǎn)移至2~3個細(xì)胞瓶內(nèi)培養(yǎng)。

    1.2.4 腹膜間皮細(xì)胞的鑒定

    1.2.4.1 光學(xué)顯微鏡鑒定:取原代培養(yǎng)的PMC細(xì)胞置于光鏡下觀察細(xì)胞形態(tài)。

    1.2.4.2 掃描電鏡鑒定:玻片經(jīng)滅菌處理后用明膠包被,將細(xì)胞按1 × 105·mL-1濃度接種于放置有玻片的6孔板中,待細(xì)胞生長至90%融合時(shí),用PBS洗滌細(xì)胞3遍,加入2.5%戊二醛電鏡固定液4 ℃過夜固定細(xì)胞,PBS洗滌后,用1%鋨酸溶液固定,乙醇梯度脫水,臨界點(diǎn)干燥法干燥,離子濺射,真空噴鍍金后進(jìn)行掃描電鏡(EVO-LS10)觀察。

    1.2.4.3 間接免疫熒光鑒定:將細(xì)胞按1×105·mL-1濃度接種于明膠包被的24孔板中,待細(xì)胞生長至90%融合時(shí),用PBS洗滌細(xì)胞3遍,加入1.25%戊二醛室溫固定10 min,洗滌后用0.2% Triton X-100透化處理5 min,洗滌后加入5%牛血清白蛋白于37 ℃封閉1 h,再加入一抗溶液(波形蛋白、角蛋白18、第VIII因子、CD45抗體),4 ℃孵育過夜,次日洗滌后加入相應(yīng)的FITC-羊抗兔IgG二抗和Cy3-羊抗鼠IgG二抗,于37 ℃室溫孵育1 h,洗滌后加入DAPI室溫染色10 min,洗滌后于熒光顯微鏡下觀察。

    1.2.5 細(xì)胞凍存與復(fù)蘇 提前配制細(xì)胞凍存液,按50% DMEM/F12基礎(chǔ)培養(yǎng)基、40% FBS、10% DMSO比例配制并混勻。棄去細(xì)胞瓶內(nèi)原培養(yǎng)基,使用無菌PBS潤洗兩遍后,加入適量0.25%胰酶-EDTA消化液置于37 ℃消化,顯微鏡下觀察待消化完全后,加入等量完全培養(yǎng)基終止消化,收集細(xì)胞懸液于尖底離心管,300g離心10 min,棄上清。使用已配制好的凍存液重懸細(xì)胞沉淀并轉(zhuǎn)移至凍存管,將凍存管置于凍存盒中,-80 ℃放置過夜,次日轉(zhuǎn)移至液氮中保存。

    細(xì)胞復(fù)蘇時(shí),取出液氮中的細(xì)胞凍存管,迅速置于37 ℃水浴搖晃直至液體融化,將細(xì)胞懸液轉(zhuǎn)移至15 mL離心管中,補(bǔ)加5 mL常溫完全培養(yǎng)基,混勻后,300g離心10 min,棄上清,用完全培養(yǎng)基重懸至5 mL,轉(zhuǎn)移至25 cm2細(xì)胞瓶內(nèi),置于含5% CO2培養(yǎng)箱37 ℃培養(yǎng)。

    1.2.6 Mhr的培養(yǎng) 取Mhr菌種按1∶9的比例接種于KM2液體培養(yǎng)基中,置于37 ℃細(xì)菌培養(yǎng)箱培養(yǎng),待菌液由紅色變?yōu)辄S色時(shí),收集菌液或繼續(xù)按1∶9比例擴(kuò)大培養(yǎng),最終收獲的Mhr菌液分裝凍存于-80 ℃,測定滴度,用顏色變化單位(color change unit,CCU)表示,分裝保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.2.7 Mhr感染細(xì)胞 將細(xì)胞按1×105·mL-1濃度接種于96孔板中,培養(yǎng)至85%~90%融合后進(jìn)行感染,設(shè)置未感染孔為對照組。取凍存的Mhr菌液,12 000g離心20 min,棄去上清,用含1% FBS的DMEM/F12培養(yǎng)基重懸菌體,調(diào)整濃度至108CCU·mL-1,按100 μL·孔-1接種于感染組細(xì)胞孔中。感染24 h后取出細(xì)胞培養(yǎng)板觀察或進(jìn)行下一步試驗(yàn)。感染及對照組均設(shè)置3個重復(fù)孔。

    1.2.8 Mhr感染后細(xì)胞活力檢測 Mhr感染24 h后,取出96孔板,吸取細(xì)胞上清后分裝至離心管,并做好標(biāo)記,400g離心5 min。分別取各孔的上清液70 μL,加入到新的96孔板相應(yīng)孔中。將乳酸溶液、10 × INT 溶液、INT稀釋液、酶溶液恢復(fù)至室溫。按說明書避光配制LDH檢測工作液,各孔分別加入35 μL的檢測工作液并混勻,室溫避光孵育30 min,然后于490 nm處測定吸光度。

    2 結(jié) 果

    2.1 細(xì)胞分離培養(yǎng)及形態(tài)學(xué)觀察

    取健康豬大網(wǎng)膜組織,采用0.1% Ⅰ型膠原酶消化分離豬原代PMC細(xì)胞。消化分離的原代細(xì)胞貼壁72 h后,使用倒置相差顯微鏡觀察細(xì)胞形態(tài),早期細(xì)胞密度低,細(xì)胞多伸展,呈拉網(wǎng)狀生長(圖1A);培養(yǎng)4~8 d后,細(xì)胞逐漸融合,融合后細(xì)胞呈多邊形,大小較為一致,邊緣不齊,似鋪路石狀(圖 1B)。

    A. 培養(yǎng)早期的豬腹膜間皮細(xì)胞;B. 融合后的豬腹膜間皮細(xì)胞A. PMC cells in early culture stage; B. Confluent PMC cells

    2.2 超微結(jié)構(gòu)

    利用掃描電鏡對F2代細(xì)胞進(jìn)行超微結(jié)構(gòu)觀察,結(jié)果如下圖所示,電鏡下細(xì)胞較為鋪展,呈橢圓形或多角形,有核處細(xì)胞隆起較厚,細(xì)胞表面可見大量微絨毛(圖2)。

    圖2 掃描電鏡下豬腹膜間皮細(xì)胞超微結(jié)構(gòu)(2 000×)Fig.2 Ultrastructure of porcine peritoneal mesothelial cells under scanning electron microscopy (2 000×)

    2.3 免疫熒光鑒定

    對分離的F2代細(xì)胞進(jìn)行特征性抗原的免疫熒光鑒定,結(jié)果顯示,細(xì)胞角蛋白18抗原(圖3A)和波形蛋白抗原(圖3B)均呈陽性,符合PMC細(xì)胞特征;而第VIII因子相關(guān)抗原和CD45抗原呈陰性,由此排除了成纖維細(xì)胞、血管內(nèi)皮細(xì)胞和白細(xì)胞。PMC細(xì)胞純度可達(dá)95%。

    A. 角蛋白18;B. 波形蛋白A. Cytokeratin 18; B. Vimentin

    2.4 傳代培養(yǎng)

    細(xì)胞傳代培養(yǎng)2~3代時(shí)細(xì)胞貼壁率、生長速度和形態(tài)與初始原代細(xì)胞無明顯差異,4~5代開始細(xì)胞貼壁率降低、生長增殖變緩,部分細(xì)胞膨大、變形,出現(xiàn)衰老現(xiàn)象。體外培養(yǎng)一般可維持到4~6代(圖4)。

    A.F2代;B.F3代;C.F5代;D.F6代A. Second generation; B. Third generation; C. Fifth generation; D. Sixth generation

    2.5 細(xì)胞的凍存與復(fù)蘇

    細(xì)胞經(jīng)凍存復(fù)蘇后,細(xì)胞形態(tài)仍為典型的鵝卵石形,間皮細(xì)胞的純度在90%以上。經(jīng)凍存復(fù)蘇后第6~7天生長至融合(圖5)。

    A.凍存細(xì)胞復(fù)蘇后第2天;B.凍存細(xì)胞復(fù)蘇后第6天A. The second day after resuscitation of the frozen cells; B. The sixth day after resuscitation of the frozen cells

    2.6 Mhr感染誘導(dǎo)豬腹膜間皮細(xì)胞損傷

    Mhr感染PMC細(xì)胞24 h后,光鏡下可觀察到感染組細(xì)胞發(fā)生明顯皺縮(圖6)。通過LDH試劑盒檢測細(xì)胞LDH釋放量,結(jié)果如圖7所示,感染組細(xì)胞的LDH釋放量較對照組細(xì)胞顯著升高(P<0.01)。結(jié)果提示Mhr感染對PMC細(xì)胞有明顯損傷作用。

    A.感染細(xì)胞;B.對照細(xì)胞A.Infected cells;B.Control cells

    **.P<0.01

    3 討 論

    間皮細(xì)胞是研究漿膜炎的主要靶細(xì)胞。大網(wǎng)膜是腹膜的最大褶皺,具有高密度的間皮細(xì)胞,每平方厘米的網(wǎng)膜組織中可提供一百萬個左右的間皮細(xì)胞,能夠獲取相對較多的細(xì)胞,因此常用大網(wǎng)膜分離間皮細(xì)胞[13]。目前報(bào)道的人、大鼠、小鼠等動物的腹腔大網(wǎng)膜間皮細(xì)胞分離多用胰蛋白酶進(jìn)行消化[14-16]。但在豬大網(wǎng)膜間皮細(xì)胞分離中,筆者發(fā)現(xiàn)胰酶消化法效果不穩(wěn)定,時(shí)間難以控制,容易受到動物日齡和脂肪含量的影響,消化時(shí)間過短獲得的細(xì)胞少,時(shí)間過長則易損傷細(xì)胞,或者增加成纖維細(xì)胞污染的概率,筆者改用Ⅰ型膠原酶消化,獲得細(xì)胞得率和純度更佳。

    本研究結(jié)果顯示,從大網(wǎng)膜消化的原代細(xì)胞在培養(yǎng)初期呈拉網(wǎng)狀生長,不易與成纖維細(xì)胞區(qū)別,融合后才形成特殊的鋪路石樣外觀,此時(shí)可與成纖維細(xì)胞明顯區(qū)分開來,與人、大鼠等動物腹腔間皮細(xì)胞分離時(shí)的形態(tài)變化過程類似[17-18]。進(jìn)一步對所分離細(xì)胞進(jìn)行免疫熒光鑒定和掃描電鏡鑒定,波形蛋白和角蛋白-18特征性抗原表達(dá)為陽性,細(xì)胞表面具有微絨毛,證實(shí)了筆者分離的細(xì)胞為豬原代PMC細(xì)胞。由此,本研究成功建立了豬大網(wǎng)膜PMC細(xì)胞的體外培養(yǎng)方法。

    為提高培養(yǎng)成功率,在試驗(yàn)過程中需要注意以下問題:1)選用的試驗(yàn)豬日齡以3月內(nèi)為宜。日齡過大的豬腹腔脂肪過多,大網(wǎng)膜是腹腔脂肪堆積的主要部位,過多的脂肪影響間皮細(xì)胞的消化,分離不易成功。2)處理組織時(shí)盡量摘除血管和脂肪組織,并多次清洗去除多余油脂,組織剪碎至1 cm2左右,組織過大與消化液接觸面積不足,不利于充分消化,剪得過碎消化獲得的細(xì)胞中成纖維細(xì)胞比例上升。3)根據(jù)最終獲得的大網(wǎng)膜組織量,加入適量膠原酶消化,消化液體積以不低于組織體積的3倍為宜。消化液應(yīng)提前預(yù)熱,加入后充分分散組織,置于搖床中震蕩消化。嚴(yán)格掌握消化時(shí)間,消化結(jié)束后及時(shí)終止,并充分振搖使細(xì)胞從組織碎片中釋放出來。4)消化獲得的細(xì)胞通過差速貼壁法去除成纖維細(xì)胞,貼壁時(shí)間以2 h左右為宜。5)合適的接種密度有利于細(xì)胞快速生長并提高細(xì)胞純度。如果接種密度過低,細(xì)胞不但鋪展速度慢,生長形態(tài)差,而且在間皮細(xì)胞的間隙處易出現(xiàn)成纖維細(xì)胞生長。根據(jù)筆者經(jīng)驗(yàn),豬原代PMC 細(xì)胞一般接種密度以2×105~5 × 105·mL-1為宜;6)F1代培養(yǎng)時(shí)避免換液過早。3 d內(nèi)不宜挪動細(xì)胞,首次換液最好在第3~4天后進(jìn)行。換液時(shí)動作輕柔,貼壁良好時(shí)可采用全換液,貼壁不佳時(shí)采用半換液。7)用明膠包被細(xì)胞瓶更有利于PMC細(xì)胞貼壁。8)試驗(yàn)使用細(xì)胞以1~3代為佳,4代以后細(xì)胞增殖活力下降,部分細(xì)胞形態(tài)出現(xiàn)老化現(xiàn)象,可能影響試驗(yàn)結(jié)果的準(zhǔn)確性。

    Mhr是臨床上引起豬多發(fā)性漿膜炎的主要病原之一。本研究嘗試將所分離的PMC細(xì)胞用于Mhr感染,結(jié)果發(fā)現(xiàn)Mhr感染后可造成PMC細(xì)胞形態(tài)發(fā)生明顯的皺縮,細(xì)胞活性受損,提示PMC細(xì)胞對Mhr感染較為敏感,可成為后續(xù)Mhr誘導(dǎo)漿膜炎致病機(jī)制研究和疫苗、藥物研究的良好細(xì)胞模型。

    4 結(jié) 論

    本研究采集豬大網(wǎng)膜組織,利用膠原酶消化法分離獲得原代細(xì)胞,通過形態(tài)學(xué)和免疫學(xué)鑒定為豬PMC細(xì)胞,建立了簡便、快捷的豬原代PMC細(xì)胞分離和體外培養(yǎng)方法。使用Mhr感染PMC細(xì)胞可觀察到明顯的細(xì)胞形態(tài)變化和LDH釋放量的顯著增加。

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