液相色譜-串聯質譜法測定魚肉中青霉素類藥物殘留量的不確定度評定

李歆 湯小葦 張于

作者簡介：李歆（1977—），女，江蘇宿遷人，本科，高級工程師。研究方向：食品及農產品中農殘和獸殘的檢驗和研究。

摘 要：目的：通過高效液相色譜法-串聯質譜法的應用合理評定檢測魚肉中青霉素類藥物殘留量的不確定度。方法：參考《食品安全國家標準 水產品中青霉素類藥物多殘留的測定 液相色譜－串聯質譜法》（GB 31656.12—2021）、《化學分析中不確定度的評估指南》（CNAS—GL 006：2019）中的規(guī)定與要求，分析青霉素類藥物在測定過程中的各種不確定度來源。結果：當11種青霉素類藥物殘留量測定結果在21.07～109.86 mg·kg-1時，其擴展不確定度4.64～20.26 mg·kg-1（k=2）。結論：影響不確定度的關鍵性因素主要有標準溶液的配制過程、標準溶液線性擬合和定容樣液的過程。

關鍵詞：液相色譜-串聯質譜（LC-MS/MS）；魚肉；青霉素類藥物；不確定度

Uncertainty Evaluation of Determination of Penicillin Residues in Fish by Liquid Chromatography-Tandem Mass Spectrometry

LI Xin， TANG Xiaowei， ZHANG Yu

（Huaian Product Quality Supervision and Inspection Center， Huaian 223001， China）

Abstract： Objective： To Evaluation of uncertainty in the determination of penicillin residues in fish by high-performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry. Method： According to the provisions and requirements in GB 31656.12—2021， CNAS—GL006：2019， the sources of uncertainty in the determination of penicillins were analyzed. Result： When the results of 11 kinds of penicillin residues were 21.07～109.86 mg·kg-1 the expanded uncertainty is 4.64～20.26 mg·kg-1 （k=2）. Conclusion： The main factors affecting the uncertainty are the preparation process of standard solution， linear fitting of standard solution and the process of constant volume sample solution

Keywords： liquid chromatography-tandem mass spectrometry （LC-MS/MS）; fish; penicillinmulti-residues; uncertainty

青霉素作為一類抗菌藥品，由青霉菌經過提煉產生，該類抗生素在日常生活中得到了廣泛應用，也被稱為β-內酰胺類抗生素（β-lactams），主要用于治療由病原體微生物引起的人畜共患病，在抗生素中占有重要地位。由于其性價比高，常被企業(yè)用于畜禽業(yè)及水產養(yǎng)殖中的細菌感染防治，但隨著用量的增多，越來越多的獸藥在動物性食品內殘留，造成了十分嚴重的社會危害[1-2]。在2021—2023年，國家農業(yè)部門對相關領域的違法行為采取專項整治措施，提高對該類違法行為的打擊力。2019年9月6日，國家正式出臺了《食品安全國家標準 食品中獸藥最大殘留限量》（GB 31650—2019）[3]，于2020年4月1日開始正式實施，對農業(yè)部公告第235號《動物性食品中獸藥最高殘留限量》[4]的一些內容進行替代，這也是國家相對較為完善的一部強制性規(guī)范，對獸藥殘留限量問題進行了明確規(guī)定，其中針對青霉素類藥物的最大殘留量、適用靶組織均有明確的規(guī)定。

綜合研究現狀來看，檢測青霉素藥物的方法主要包括微生物法[5]、酶聯免疫法[6-7]、氣相色譜法[8]、氣相色譜-串聯質譜法[9]、液相色譜法[10]、液相色譜-串聯質譜法[11-17]。在青霉素藥物中由于存在β-內酰胺環(huán)，具有不穩(wěn)定性，對于許多因素均比較敏感，如環(huán)境pH值、外界溫度以及內部β-內酰胺酶，檢測的難度大大提高，為了得到較好的重現性和精密度，往往需要采用高分辨率的檢測儀器，液相色譜－串聯質譜法的應用最為廣泛。在本次研究中，對水產品中的青霉素藥物殘留按照《食品安全國家標準 水產品中青霉素類藥物多殘留的測定 液相色譜－串聯質譜法》（GB 31656.12—2021）[17]進行測定，參照《化學分析中不確定度的評估指南》（CNAS-GL 006：2019）[18]分析魚肉中青霉素類藥物殘留量的不確定度，以期為實驗研究提供更多可行的參考依據。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

魚肉：自購。

阿莫西林、氨芐西林、青霉素G、青霉素V、苯唑西林、氯唑西林、雙氯西林、萘夫西林、哌拉西林、阿洛西林和甲氧西林標準物質，100 mg，壇墨質檢標準物質中心；乙腈（色譜純），德國默克公司。

1.2 儀器與設備

Agilent 1290/6470型液相色譜-串聯質譜儀，美國安捷倫公司；112900臺式超速冷凍離心機，美國賽默飛世爾公司；Milli-Q超純水儀，美國密理博（Millipore）公司；SQP電子天平，賽多利斯科學儀器（北京）有限公司。

1.3 實驗方法

樣品制備：至少取3尾魚清洗后，去頭、骨、內臟，取肌肉、魚皮等可食部分絞碎混合均勻后備用；樣品量為400 g，分為兩份，其中一份用于檢驗，另一份作為留樣[19]。

提?。悍Q取制備好的魚肉樣品2.5 g（±0.02 g），添加1.0 μg·mL-1內標工作液100 μL，靜置10 min，添加5 mL的80%乙腈水溶液，渦旋混合1 min，超聲10 min，4 ℃，10 000 r·min-1離心5 min，將上清液取出，再將4 mL 80%的乙腈水溶液加入殘渣中，重復一次操作，與上清液合并，將其稀釋到

10.0 mL，留以備用。

凈化：取出大約1 mL的80%乙腈水溶液，潤洗固相萃取柱，棄去流出液，取備用液體2.0 mL過柱，保持流速1滴/s，收集，35 ℃氮吹至少0.5 mL，加水定容至0.5 mL，用超濾管以12 000 r·min-1離心

10 min，取濾液，供液相色譜-串聯質譜測定。

1.4 儀器條件

色譜柱：Waters C18色譜柱（50 mm×2.1 mm，1.8 μm）；溫度：35 ℃；流動相：0.05%甲酸水溶液（A）-0.05%甲酸乙腈溶液（B）；流速：

0.4 mL·min-1；進樣量：10 μL。梯度洗脫條件見表1。

電噴霧離子源；鞘氣流量：11 L·min-1；正離子，MRM模式。具體詳見表2。

2 結果與分析

2.1 不確定度數學模型的建立及來源

測量不確定度數學模型為

（1）

式中：X為樣品中該類藥物的殘留量，μg·kg-1；c為由標準工作曲線獲得樣品進樣液中獲取的該類藥物濃度，ng·mL-1；V為樣品定容體積，mL；m為樣品質量，g；Rec為回收率，%。

樣品中青霉素類藥物殘留量不確定度主要包括樣品稱量引入的不確定度、定容樣液引入的不確定度、配制標準溶液引入的不確定度、內標物添加體積引入的不確定度、標準溶液線性擬合引入的不確定度、重復性測量引入的不確定度、加標回收率引入的不確定度及液相色譜-串聯質譜儀引入的不確定度。在標準系列溶液和樣品待測液中內標物含量一致時，內標物的純度、儲備液和工作液的配制等均不影響樣品中的目標物含量，故本文僅評估內標物加入的體積引入的不確定度[20]。

2.2 不確定度分量的評定

2.2.1 樣品稱量引入的相對標準不確定度urel（m）

稱量天平為SQP電子天平（儀器的精密度為

0.01 mg），按照相應的檢定證書要求可以得出，如果稱樣量在0～5 g的情況下，允許誤差的最大值為±0.05 mg，采取矩形分布的形式，稱樣量在2.5 g的條件下，所產生的相對標準不確定度為

2.2.2 定容樣液引入的相對標準不確定度urel（V）

根據《專用玻璃量器檢定規(guī)程》

（JJG 10—2005）[21]，容量為5 mL的尖底試管的允許誤差是±0.05 mL，分布均勻，其引入的標準不確定度為；實驗室的室溫控制在（20±5）℃，水的體積膨脹系數為2.1×10-4/℃，分布均勻，溫度改變引入的標準不確定度為；

則定容樣液引入的合成標準不確定度為，相對標準不確定度為。

2.2.3 配制標準溶液引入的相對標準不確定度urel（std）

（1）標準儲備液配制引入的相對標準不確定度。①標準物質純度引入的相對標準不確定度。購買的標準物質純度及其引入的相對標準不確定度見表3。②標準物質稱量引入的相對標準不確定度。標準物質稱量使用的天平和樣品稱量的天平一致，稱取依照純度折算后相當于10 mg，見表4。③標準物質配制過程引入的相對標準不確定度。使用濃度30%乙腈水將其溶解，定容到100 mL容量瓶中，配制濃度0.10 mg·mL-1儲備液。100 mL A級容量瓶的誤差為±0.10 mL[22]，k=（三角分布），標準不確定度為；實驗室的室溫需要控制在（20±5）℃，水的體積膨脹系數為2.1×10-4/℃，乙腈的體積膨脹系數為1.37×10-3/℃，分布均勻，則溫度改變所引入的標準不確定度為。

標準物質配制過程引入的合成標準不確定度，相對標準不確定度為。

標準儲備液配制所引入的相對標準不確定度為，通過計算可知，甲氧西林、阿莫西林、氨芐西林、青霉素G、青霉素V、苯唑西林、氯唑西林、雙氯西林、萘夫西林、哌拉西林和阿洛西林標準儲備液配制引入的相對標準不確定度urel（V1）分別為0.020 9、0.003 84、

0.004 96、0.003 84、0.010 5、0.003 84、0.003 94、

0.010 4、0.005 16、0.003 83和0.003 84。

（2）標準中間液配制引入的相對標準不確定度。使用1 mL A級單標線吸量管吸取1 mL 0.10 mg·mL-1的標準液，定容到100 mL容量瓶中，配制濃度

0.10 mg·mL-1中間液。1 mL A級單標線量管和100 mL容量瓶在試驗中均使用1次。1 mL A級單標線吸量管允許的最大誤差達到±0.007 mL[22]，分布均勻，引入的不確定度為；100 mL A級容量瓶的標準不確定度同③是0.040 8 mL；實驗室溫度改變引入的標準不確定度同2.2.2是0.000 606 mL。

標準中間液配制引入的合成標準不確定度為

則其引入的相對標準不確定度為

（3）標準工作溶液配制引入的相對標準不確定度。配制標準工作溶液過程引入的不確定度的主要來源于移液器和容量瓶。移液器的容量允差具體見表5（均勻分布）[23]；10 mL A級容量瓶的允許誤差在±0.020 mL[23]，三角分布，不確定度為 mL；實驗室溫度改變引入的標準不確定度同2.2.2是0.000 606 mL。標準工作溶液配制過程中10 mL A級容量瓶引入的合成標準不確定度 mL，相對標準不確定度為。10 mL A級容量瓶在試驗過程中應用了7次。

標準工作溶液配制引入的相對標準不確定度為

配制標準溶液引入的相對標準不確定度為。見表6。

2.2.4 內標物添加體積引入的相對標準不確定度urel（IS）

內標工作液（1.0 μg·mL-1）使用移液器（規(guī)格100 μL）加入體積為100 μL，容量允許的誤差是±2.0%[23]，。

2.2.5 標準溶液線性擬合引入的相對標準不確定度urel（Line）

本實驗采用7個標準溶液溶液濃度，線性擬合，獲得的回歸方程（Y為峰面積，X為濃度），見表7。按照公式（2）算出標準工作溶液線性擬合的標準不確定度u（Line）。

（2）

式中：S（A）為殘差的標準差，；c0為檢測液的平均濃度，μg·L-1；c為標準溶液的平均濃度，μg·L-1；P為對c0的測量次數，3；N為標準工作溶液的測量次數，21；a為標準曲線的斜率；b為標準曲線的截距。

標準工作溶液線性擬合的相對標準不確定度為。

本次以阿莫西林為例，標準溶液濃度為

1.971 μg·L-1、4.390 μg·L-1、9.000 μg·L-1、21.778 μg·L-1、43.748 μg·L-1、145.551 μg·L-1和301.366 μg·L-1，相對應的峰面積為424、935、1 911、4 616、9 265、

31 541和63 788，其回歸方程為Y=213.6X-470.8，相關系數0.999 6，樣品平均含量15.249 μg·L-1，則

標準不確定度為

相對標準不確定度為

同理，其他化合物標準溶液線性擬合引入的相對標準不確定度如表7所示。

2.2.6 重復性測量引入的相對標準不確定度urel（Rep）

按照標準方法對樣品進行重復性測定。標準偏差為，其標準不確定度為，重復性測定的相對標準不確定度為。

以阿莫西林為例，實際得出的樣品濃度為15.249 μg·L-1、16.026 μg·L-1、15.458 μg·L-1、

14.373 μg·L-1、15.004 μg·L-1和15.385 μg·L-1，稱樣量為

2.5 g，測定值為30.498 μg·kg-1、32.052 μg·kg-1、30.916 μg·kg-1、28.746 μg·kg-1、30.008 μg·kg-1和

30.770 μg·kg-1，標準偏差為，標準不確定度為，相對標準不確定度為。

其他化合物則參照該方法，樣品重復性測量引入的相對標準不確定度結果見表8。

2.2.7 加標回收率引入的相對標準不確定度urel（Rec）

使用加標法對回收率進行檢測。加標量為

50 μg·kg-1，標準偏差為，標準不

確定度為，相對標準不確定度為

以阿莫西林為例，加標回收率為（85.93%、83.44%、85.67%、87.98%、82.15%和85.99%，標準偏差為，標準不確定度為，相對標準不確定度為。其他化合物則參照本方法，加標回收率引入的相對標準不確定度結果見表9。

2.2.8 液相色譜－串聯質譜儀引入的相對標準不確定度urel（LC）

出具校準證書中液相色譜－串聯質譜儀的U=6.8%（k=2），其相對標準不確定度為

2.3 合成不確定度與擴展不確定度

將全部的不確定因素進行整理，計算合成不確定度。以阿莫西林為例

其他化合物則參照本方法，結果見表10。

采用液相色譜-串聯質譜法對魚肉中青霉素類藥物殘留程度進行檢測，標準不確定度u（C）=urel（C）×X，擴展不確定度為U（C）=u（C）×k（k=2），則相關計算結果如表11所示。

3 結論與討論

在此次分析研究期間，使用液相色譜-串聯質譜法對魚肉里的青霉素類藥物殘留量進行檢測，不確定度的關鍵來源為標準溶液的配制、標準溶液線性擬合和定容樣液，而儀器自身的穩(wěn)定程度、樣品重復性檢測、添加內標物的體積、加標回收和樣品稱量當中所產生的不確定度對青霉素類藥物殘留檢測結果影響較小。數據結果證實，在實驗過程中，采用更高純度的標準物質，確保儀器的工作狀態(tài)良好，定時對儀器維護及保養(yǎng)，從而達到穩(wěn)定的再現性，可以減少測定結果的不確定程度，從而提升檢測結果的精準度。

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