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      LRR-RLKs參與番茄抗根結(jié)線蟲病途徑中的功能分析與驗證

      2024-01-01 00:00:00劉麗麗陳銀霞聶蔚丹馮成蒿王超楠楊中敏杜崇
      江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2024年4期
      關(guān)鍵詞:根結(jié)線蟲抗病番茄

      摘要:前期以對南方根結(jié)線蟲(Meloidogyne incognita)具有熱穩(wěn)定抗性的野生秘魯番茄LA3858(Mi-3/Mi-3)為試材,采用不同土壤溫度處理形成抗感態(tài),進行轉(zhuǎn)錄組測序(RNA-seq)。本研究以該測序數(shù)據(jù)為依托,篩選出8個編碼LRR-RLKs的差異表達基因(DEGs)并進行相關(guān)分析與功能驗證。結(jié)果表明,目標LRR-RLKs基因分布在番茄的1號、2號、3號、5號、7號和8號染色體上,編碼蛋白均被定位于細胞膜上;在目標LRR-RLKs中,只有編碼Solyc07g055810.3的氨基酸是堿性氨基酸;組織特異性表達分析發(fā)現(xiàn),Solyc05g056370.3在栽培番茄Heinz1706根部較其他基因高水平表達,并且接種線蟲后,該基因在LA3858抗病材料根部響應(yīng)迅速,24 h內(nèi)積累水平明顯高于其他基因;同時,系統(tǒng)進化樹分析發(fā)現(xiàn),Solyc05g056370.3所在分組大部分蛋白與油菜素類信號傳導(dǎo)、細胞死亡控制、發(fā)病機制等免疫防衛(wèi)進程相關(guān);進一步VIGS功能驗證揭示,Solyc05g056370.3正向調(diào)控番茄對根結(jié)線蟲的抗性。綜上,Solyc05g056370.3參與番茄介導(dǎo)抗病并正反饋響應(yīng)防衛(wèi)進程,是很有價值的抗性改良資源,因此,該基因的深入挖掘?qū)罄m(xù)番茄抗根結(jié)線蟲病新材料的選育具有理論指導(dǎo)意義。

      關(guān)鍵詞:LRR-RLK;番茄;抗??;根結(jié)線蟲;VIGS

      中圖分類號:S436.412" 文獻標志碼:A

      文章編號:1002-1302(2024)04-0063-08

      收稿日期:2023-05-28

      基金項目:新疆維吾爾自治區(qū)自然科學(xué)基金青年基金(編號:2022D01B95);2020年新疆維吾爾自治區(qū)“天池博士計劃”項目(編號:390000017);新疆維吾爾自治區(qū)重點研發(fā)計劃子課題(編號:2022B02032-2)。

      作者簡介:劉麗麗(1998—),女,河南周口人,碩士研究生,研究方向為番茄分子遺傳育種。E-mail:206346559@qq.com。

      通信作者:杜 崇,博士,碩士生導(dǎo)師,主要從事番茄分子遺傳育種研究。E-mail:godv2018@163.com。

      富亮氨酸重復(fù)類受體蛋白激酶(LRR-RLK)是植物中最大的一類跨膜類受體蛋白[1],通過胞外信號分子與胞外區(qū)結(jié)構(gòu)域特異結(jié)合,激活胞內(nèi)激酶域完成跨膜信號的轉(zhuǎn)導(dǎo)[2-3]。LRR-RLKs胞外區(qū)的顯著特點是含有串聯(lián)排列的LRR結(jié)構(gòu),參與蛋白質(zhì)間的相互作用[4]。隨著研究的深入,LRR-RLKs在作物抗病途徑中的功能也被相繼挖掘。

      在番茄中單獨或共同沉默2個LRR-RLKs,基因SlSERK3A和SlSERK3B,導(dǎo)致植株對致病菌株P(guān)st DC3000的敏感性增強[5];在馬鈴薯中沉默NbSerk3后植株表現(xiàn)出對晚疫病更強的敏感性,說明馬鈴薯對晚疫病的基礎(chǔ)抗性依賴該LRR-RLK的調(diào)控[6];在水稻中超表達OsSERK1提高了對稻瘟病菌的抗性,該基因編碼的LRR-RLK可由水楊酸、茉莉酸和脫落酸誘導(dǎo),從而正向調(diào)控水稻對真菌感染的防御反應(yīng)[7];在小麥中沉默TaSERK1,發(fā)現(xiàn)該基因能正向調(diào)控對條紋銹病的抗性,同時該基因編碼的LRR-RLK蛋白可與TaDJA7相互作用并磷酸化,而沉默TaDJA7再次增強了小麥對條紋銹病的敏感性,表明TaSERK1-TaDJA7復(fù)合體共同正反饋調(diào)節(jié)小麥植株對條紋銹病的抗性水平[8]。

      根結(jié)線蟲病是作物重大土傳病害之一[9],其侵染通常導(dǎo)致植株根部出現(xiàn)根瘤[10],降低植株對水分和養(yǎng)分的吸收,該病害一般可導(dǎo)致作物減產(chǎn)20%~30%,嚴重時可減產(chǎn)50%~70%,甚至絕收[11]。筆者前期選用抗根結(jié)線蟲病秘魯番茄材料LA3858(Mi-3/Mi-3),通過設(shè)置不同土溫(25 ℃和 34 ℃)形成抗感態(tài),利用RNA-seq篩選差異表達基因,最終發(fā)現(xiàn)8個LRR-RLKs基因在植株根部差異表達顯著。本研究在此基礎(chǔ)上,對目標LRR-RLKs進行生物信息學(xué)分析,通過基因克隆結(jié)合功能驗證,鑒定出有價值的目標基因,旨在后期對其分子機制進行解析,以期為番茄優(yōu)質(zhì)種質(zhì)資源的抗性改良提供夯實的理論依據(jù)。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      本試驗于2023年3月在新疆農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝學(xué)院蔬菜生物技術(shù)實驗室開展。供試材料是對根結(jié)線蟲表現(xiàn)出高抗的番茄材料LA3858(Mi-3/Mi-3)和Motelle(Mi-1/Mi-1),由番茄遺傳資源中心(TGRC)惠贈;南方根結(jié)線蟲由筆者所在團隊多年純化積累所得;pTRV1、pTRV2克隆質(zhì)粒由筆者所在實驗室自行克隆保存。

      1.2 試驗方法

      1.2.1 根結(jié)線蟲的培養(yǎng)

      將帶有根結(jié)的番茄病根用1%~3% NaClO洗滌2~3 min,隨后用蒸餾水流動洗滌15 min。從清洗后的根結(jié)表面挑取成熟的卵塊并置于含有適量蒸餾水的無菌培養(yǎng)皿中;每個培養(yǎng)皿中的卵塊數(shù)為100~150個。最后將卵塊密封于28 ℃培養(yǎng)箱中避光培養(yǎng)。3 d后,提取線蟲懸液,計算濃度并接種[12]。

      1.2.2 LRR-RLKs的無縫克隆

      利用Trizol法提取材料根部RNA,反轉(zhuǎn)錄合成cDNA,以BamHⅠ為酶切位點設(shè)計各帶有15 bp重組同源臂的特異性上下游引物,對以上基因CDS區(qū)進行PCR擴增,運用無縫克隆構(gòu)建pTRV2-LRR-RLKs重組載體。質(zhì)粒構(gòu)建后,進行感受態(tài)大腸桿菌DH5ɑ轉(zhuǎn)化,挑取單克隆菌落在含有卡那霉素(Kan)的LB固體培養(yǎng)基上劃線并進行菌落PCR鑒定,篩選陽性克隆送到華大基因進行測序,隨后在NCBI中BLAST鑒定。

      1.2.3 LRR-RLKs染色體定位及蛋白結(jié)構(gòu)分析

      用軟件MapChart進行LRR-RLKs染色體定位并可視化;運用在線網(wǎng)站CELLO(http://cello.life.nctu.edu.tw/)進行亞細胞定位預(yù)測;利用在線分析軟件ProtParam(https://web.expasy.org/protparam/)對編碼LRR-RLKs的氨基酸進行理化性質(zhì)分析;利用Sopma(https://npsa-prabi.ibcp.fr/cgi-bin/npsa_automat.pl?page=npsa_sopma.html)和數(shù)據(jù)庫Swiss-Model進行蛋白質(zhì)的二級結(jié)構(gòu)和三級結(jié)構(gòu)預(yù)測。

      1.2.4 LRR-RLKs系統(tǒng)進化樹分析

      從NCBI(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/)得到與LRR-RLKs同源的擬南芥和水稻氨基酸序列,運用MEGA 11軟件構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹。系統(tǒng)發(fā)育樹采用鄰接法(NJ)構(gòu)建,參數(shù)設(shè)置:自展值(bootstrap)設(shè)為500,遺傳距離計算模型選擇P-distance,partion deletion=50%,其余參數(shù)默認。

      1.2.5 LRR-RLKs組織特異性表達分析及根部表達模式驗證

      利用在線網(wǎng)站BAR(http://bar.utoronto.ca/)收錄的番茄基因表達數(shù)據(jù)庫,對目標基因在番茄Heinz1706根、葉組織中的表達水平進行分析;選取4葉1心時期的LA3858番茄植株,室溫下接種南方根結(jié)線蟲,采集未接種和接種后12、24 h階段的根部,提取總RNA,反轉(zhuǎn)錄cDNA,對目標LRR-RLKs設(shè)計RT-qPCR引物,采用ΔΔCT法進行根部表達模式鑒定[13]。

      1.2.6 病毒誘導(dǎo)的基因沉默(virus induced gene silencing,VIGS)植株的獲取與初步功能驗證

      對質(zhì)粒pTRV2進行BamHⅠ位點單酶切,對目標LRR-RLKs的CDS編碼區(qū)設(shè)計帶有20 bp同源臂的特異性引物,進行PCR擴增,運用 “1.2.1”節(jié)中的方法構(gòu)建沉默表達載體。將制備好的農(nóng)桿菌侵染液(pTRV1、pTRV2-目標基因)進行葉片侵染,每個處理25株,待接種15~20 d,對目標基因表達量進行檢測,選取沉默效率在50%以上的番茄植株與CK(pTRV2空載)各10株進行根結(jié)線蟲接種,標準為 1 500頭 2齡幼蟲(J2)/株,并進行抗病性鑒定。

      病情指數(shù)(DI)=∑(各病級×各級株數(shù))/(最高病級×總調(diào)查株數(shù))×100。對接種線蟲的番茄材料進行抗性級別的劃分,即免疫(I):DI=0;高抗(HR):0lt;DI≤20;中抗(MR):20lt;DI≤40;抗?。≧):40lt;DI≤60;感?。⊿):60lt;DI≤80;高感(HS):DIgt;80 [14]。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 LRR-RLKs基因的無縫克隆鑒定

      依據(jù)前期RNA-seq數(shù)據(jù)基因表達水平差異(|log2FC|≥1)[15],Solyc03g005960.3、Solyc02g072480.3、Solyc08g061560.3、Solyc01g107650.3、Solyc07g055810.3、Solyc05g056370.3、Solyc02g071800.3和Solyc05g014240.3共8個編碼LRR-RLKs的DEGs被篩選出來,成功無縫克隆后(圖1),進行測序比對。利用NCBI和SGN數(shù)據(jù)庫對序列進行注釋,明確了8個目標基因分別編碼At1g53420、At3g47570、ERECTA、At4g37250、At1g07650、At5g63710、At1g53430以及At1g67720。

      2.2 LRR-RLKs基因的染色體定位

      利用MapChart進行LRR-RLKs染色體定位分析, 結(jié)果(圖2)表明," 8個LRR-RLKs分別分布在番茄的6條染色體上,其中Solyc02g071800.3和Solyc02g072480.3定位在2號染色體上;Solyc05g014240.3和Solyc05g056370.3定位在5號染色體上;Solyc01g107650.3、Solyc03g005960.3、Solyc07g055810.3以及Solyc08g061560.3分別定位在1號、3號、7號和8號染色體上;其余染色體未有

      目標基因分布。

      2.3 LRR-RLKs蛋白結(jié)構(gòu)分析

      LRR-RLKs編碼氨基酸理化性質(zhì)分析結(jié)果(表1)表明,8個LRR-RLKs均定位于細胞膜,理論等電點顯示只有編碼Solyc07g055810.3的氨基酸是堿性氨基酸,其余7個LRR-RLKs均為酸性氨基酸;除了編碼Solyc05g056370.3的氨基酸為不穩(wěn)定氨基酸,其余LRR-RLKs穩(wěn)定性均lt;40%,為穩(wěn)定氨基酸;脂溶指數(shù)在80~110之間,除了編碼Solyc02g072480.3的氨基酸為疏水氨基酸,其余LRR-RLKs親水性指數(shù)均lt;0,屬于親水氨基酸。蛋白質(zhì)二級結(jié)構(gòu)預(yù)測顯示,目標LRR-RLKs由α螺旋、β轉(zhuǎn)角、延伸主鏈和無規(guī)則卷曲4個部分組成,無其他亞結(jié)構(gòu),且比例各不相同,目標LRR-RLKs中α螺旋和無規(guī)則卷曲所占組分最多,分別在27.65%~41.40%和39.12%~48.38%之間(圖 3-A),側(cè)面說明α螺旋和無規(guī)則卷曲是目標 LRR-RLKs二級結(jié)構(gòu)組成的主要形式,而β轉(zhuǎn)角和延伸主鏈可能起到修飾和輔助作用, 從而共同參與

      后期蛋白復(fù)雜構(gòu)象的形成,發(fā)揮特異性功能[16]。蛋白質(zhì)三級結(jié)構(gòu)建模結(jié)果(圖3-B)表明,目標 LRR-RLKs與模板的比對質(zhì)量均在0~4之間,全局得分的絕對值均在0~4之間,說明比對模板可信[17];目標LRR-RLKs均不能形成同源二聚體,其中Solyc02g071800.3含有鎂離子配體,其余7個均沒有配體結(jié)合域;功能注釋表明,Solyc05g056370.3屬于油菜素類固醇相關(guān)受體激酶,廣泛參與植物抗病等各種生理過程[18]。

      2.4 LRR-RLKs系統(tǒng)進化樹分析

      利用NCBI數(shù)據(jù)庫進行BLAST鑒定,篩選并獲得與目標LRR-RLKs同源性較強的26個擬南芥LRR-RLKs,17個水稻LRR-RLKs,以及本研究中的8個LRR-RLKs,共51個LRR-RLKs蛋白序列構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹。結(jié)果(圖4)顯示,這些 LRR-RLKs被分為5組(Ⅰ~Ⅴ),其中Ⅴ組成員最多,有17個,Solyc02g072480.3和Solyc08g061560.3被分到該組;Ⅰ和Ⅳ組成員最少,均有6個成員,其中Ⅰ組成員主要來自于擬南芥,而Solyc05g014240.3和Solyc01g107650.3分別分布在Ⅰ和Ⅳ組;Ⅲ組成員數(shù)量有13個,Solyc07g055810.3、Solyc03g005960.3和Solyc02g071800.3被分在該組,其中Solyc03g005960.3和Solyc02g071800.3同源性最高,推測它們的功能相近;Solyc05g056370.3被單獨分在Ⅱ組,與擬南芥中的Solyc05g056370.3的同源性最高,前期報道該蛋白可能參與油菜素類信號傳導(dǎo)、細胞死亡控制、發(fā)病機制等多種生理過程[19]。

      2.5 LRR-RLKs組織特異性表達分析和根部響應(yīng)模式驗證

      利用在線網(wǎng)站BAR收錄的番茄基因表達數(shù)據(jù)庫,對目標LRR-RLKs在番茄Heinz1706根、葉組織中的表達水平進行分析。結(jié)果(圖5-A)表明,Solyc03g005960.3和Solyc02g072480.3在根、葉組織的表達水平都很低甚至不表達;Solyc08g061560.3在葉片部位表現(xiàn)出特異性表達特征;除此之外,Solyc07g055810.3、Solyc05g056370.3、Solyc02g071800.3以及Solyc05g014240.3在根、葉均呈現(xiàn)較高的表達水平,尤其以Solyc05g056370.3在根中的表達水平最高,側(cè)面反映其很有可能在番茄植株的根部發(fā)揮功能[20],這在線蟲侵染后根部表達模式上得到了證明。利用RT-qPCR對各LRR-RLKs在線蟲接種后不同階段進行表達水平測定。結(jié)果(圖5-B)發(fā)現(xiàn),Solyc05g056370.3在接種線蟲后6 h迅速響應(yīng),表達量上調(diào)至2.4倍,較大多數(shù)基因在12 h的積累水平要高,而待接種時間達到 24 h,Solyc05g056370.3的表達差異達到了最高的3.67倍。

      2.6 Solyc05g056370.3在番茄防衛(wèi)根結(jié)線蟲病中的初步功能驗證

      通過無縫克隆構(gòu)建pTRV2-Solyc05g056370.3重組載體,PCR鑒定陽性克?。▓D6-A),通過農(nóng)桿菌轉(zhuǎn)染Motelle(Mi-1/Mi-1)番茄抗病材料,獲取Solyc05g056370.3表達量下降50%以上的沉默植株(圖6-B),室溫下接種南方根結(jié)線蟲,鑒定其抗病性。結(jié)果(圖7)表明,Solyc05g056370.3沉默后,Mi-1番茄根部的根結(jié)數(shù)量相對于對照顯著增多,病情指數(shù)(DI)由3.4上升至46.3,最終植株抗性等級(RL)由高抗態(tài)(HR)轉(zhuǎn)變?yōu)榭共B(tài)(R),反映了沉默株系的易感能力增強,說明Solyc05g056370.3在番茄抗根結(jié)線蟲病過程中起到積極的正反饋調(diào)節(jié)作用。

      3 討論與結(jié)論

      LRR-RLKs在植物中的作用豐富多樣,本研究通過前期RNA-seq分析數(shù)據(jù),獲得差異表達的目標LRR-RLKs基因,隨后進行生物信息學(xué)分析、基因表達模式驗證及VIGS鑒定,從而初步了解其生物學(xué)功能。

      對8個LRR-RLKs編碼氨基酸進行理化性質(zhì)分析發(fā)現(xiàn),編碼Solyc02g072480.3的氨基酸為疏水氨基酸,編碼Solyc07g055810.3的是堿性氨基酸,而編碼Solyc05g056370.3的為不穩(wěn)定氨基酸,其余目標氨基酸均為親水性穩(wěn)定酸性氨基酸。RLKs是許多信號識別傳遞途徑中的關(guān)鍵組分[21],作為識別信號的質(zhì)膜受體能夠感受外界刺激,通過磷酸化作用參與胞內(nèi)信號傳遞[22],本研究中的LRR-RLKs均被定位在細胞膜上,作為膜受體蛋白發(fā)揮功能。二級結(jié)構(gòu)預(yù)測分析發(fā)現(xiàn),目標LRR-RLKs的組分差異不明顯;三級結(jié)構(gòu)預(yù)測發(fā)現(xiàn),Solyc05g056370.3蛋白屬于油菜素類固醇相關(guān)受體激酶,而這類激酶廣泛參與植物抗逆、抗病等進程[18]。

      組織表達模式分析發(fā)現(xiàn),目標LRR-RLKs基因在栽培番茄植株的根、葉中均有不同程度的表達,其中Solyc05g056370.3在根和葉中呈現(xiàn)較高的表達水平,尤其在根中較其他基因表達量高,表明該基因很可能在上述組織中行使重要的生物學(xué)功能[11]。

      接種線蟲后,根部表達模式驗證進一步說明,Solyc05g056370.3在線蟲入侵時響應(yīng)迅速,在24 h的積累水平高于其他基因,說明Solyc05g056370.3可能積極參與番茄對根結(jié)線蟲的防衛(wèi);進化樹分類把Solyc05g056370.3分在第Ⅱ組,該組成員大多參與植物的抗病調(diào)節(jié)過程。其中目標Solyc05g056370.3與擬南芥中的Solyc05g056370.3同源性最高,除此之外,擬南芥中的At5g10290、At5g65240、水稻中的SERK2-like和BAK1也和目標Solyc05g056370.3具有較好的同源關(guān)系。前人研究表明,擬南芥Solyc05g056370.3、At5g10290和At5g65240分別編碼SARK、SERK1-5和NIK1-2蛋白[23],其中,SARK在控制細胞死亡、發(fā)病機制和花粉發(fā)育等多種生理過程中發(fā)揮相關(guān)功能[24],而SERK1-5在擬南芥中參與油菜素類信號傳導(dǎo)[25];NIK1在擬南芥抵抗病毒和細菌病原體方面發(fā)揮作用[19];SERK2-like沉默的水稻植株表現(xiàn)出形態(tài)改變以及對油菜素內(nèi)酯的敏感性降低,進一步發(fā)現(xiàn)SERK2通過XA21、XA3和FLS2(免疫受體)的介導(dǎo),正向調(diào)控水稻免疫反應(yīng)[26];而水稻BAK1蛋白可通過與NADPH氧化酶RbohD直接互作促進活性氧(ROS)的產(chǎn)生[27],同時BAK1也可被flg22激活后磷酸化,并激活2個Ca+2通道蛋白進而促進ROS的積累[28],ROS是植物最早的免疫反應(yīng)標志之一,適量的ROS水平有助于植物產(chǎn)生超敏反應(yīng)(HR)抵御病原菌的侵染[29-30]。因此,筆者推測番茄中的Solyc05g056370.3基因所編碼的LRR-RLK可能在抵御生物脅迫方面同樣發(fā)揮作用,可能介導(dǎo)多樣的信號傳導(dǎo)途徑參與番茄防衛(wèi)根結(jié)線蟲的入侵。為了確定其反饋調(diào)節(jié)方式,利用VIGS發(fā)現(xiàn)Solyc05g056370.3沉默的植株根部對線蟲的敏感性增強,根結(jié)數(shù)量增加,植株整體抗病水平由高抗態(tài)(HR)轉(zhuǎn)變?yōu)榭共B(tài)(R),證明了Solyc05g056370.3正向參與番茄對于根結(jié)線蟲病的抵抗。

      本研究通過對篩選出的8個LRR-RLKs進行生物信息學(xué)分析,并結(jié)合組織特異性表達分析和根部響應(yīng)模式驗證發(fā)現(xiàn),Solyc05g056370.3很可能參與番茄抗根結(jié)線蟲病的進程;VIGS功能驗證進一步說明,該基因編碼的LRR-RLK蛋白正反饋調(diào)節(jié)植株的抗性。因此,Solyc05g056370.3功能的深入挖掘及分子機制的探究為番茄抗病種質(zhì)的創(chuàng)制具有較好的應(yīng)用價值。

      參考文獻:

      [1]Zhu Q F,F(xiàn)eng Y Z,Xue J,et al. Advances in receptor-like protein kinases in balancing plant growth and stress responses[J]. Plants,2023,12(3):427.

      [2]Man J,Harrington T,Lally K,et al. Asymmetric evolution of protein domains in the leucine-rich repeat receptor-like kinase (LRR-RLK) family of plant developmental coordinators[J/OL]. bioRxiv,2023(2023-03-13)[2023-05-28]. https://doi.org/10.1101/2023.03.13.532436.

      [3]Chen T S.I dentification and characterization of the LRR repeats in plant LRR-RLKs[J]. BMC Molecular and Cell Biology,2021,22(1):9.

      [4]Walker J C. Structure and function of the receptor-like protein kinases of higher plants[J]. Plant Molecular Biology,1994,26(5):1599-1609.

      [5]Peng H C,Kaloshian I. The tomato leucine-rich repeat receptor-like kinases SlSERK3A and SlSERK3B have overlapping functions in bacterial and nematode innate immunity[J]. PLoS One,2014,9(3):e93302.

      [6]Chaparro-Garcia A,Wilkinson R C,Gimenez-Ibanez S,et al. The receptor-like kinase SERK3/BAK1 is required for basal resistance against the late blight pathogen phytophthora infestans in Nicotiana benthamiana[J]. PLoS One,2011,6(1):e16608.

      [7]Hu H,Xiong L,Yang Y. Rice SERK1 gene positively regulates somatic embryogenesis of cultured cell and host defense response against fungal infection[J]. Planta,2005,222(1):107-117.

      [8]Shi Y F,Bao X Y,Song X P,et al. The leucine-rich repeat receptor-like kinase protein TaSERK1 positively regulates high-temperature seedling plant resistance to Puccinia striiformis f. sp. tritici by interacting with TaDJA7[J]. Phytopathology,2023,113(7):1325-1334.

      [9]Karssen G,Van Aelst A. Root-knot nematode perineal pattern development:a reconsideration[J]. Nematology,2001,3(2):95-111.

      [10]Aydnl G,Kurtar E S,Mennan S. Screening of Cucurbita maxima and Cucurbita moschata genotypes for resistance against Meloidogyne arenaria,M. incognita,M. javanica,and M. luci[J]. Journal of Nematology,2019,51(1):1-10.

      [11]馬少軍,劉佳偉,金玉華,等. 兵團第十四師四十七團設(shè)施蔬菜根結(jié)線蟲種類鑒定[J]. 新疆農(nóng)墾科技,2022,45(4):37-39.

      [12]Du C,Jiang J B,Zhang H,et al. Transcriptomic profiling of Solanum peruvianum LA3858 revealed a Mi-3-mediated hypersensitive response to Meloidogyne incognita[J]. BMC Genomics,2020,21(1):250.

      [13]Kppel R,Bucher T B. Duplex real-time PCR for the determination of wasabi (Eutrema wasabi) contents in horseradish (Armoracia rusticana) products applying the ΔΔCT-method[J]. European Food Research and Technology,2016,242(7):1111-1115.

      [14]Taylor A L,Sasser J N.Biology,identification and control of root-knot nematodes (Meloidogyne spp.)[J/OL]. [2023-05-28]. https://www.researchgate.net/publication/303264394_Biology_Identification_and_control_of_Root-knot_Nematodes_Meloidogyne_spp.

      [15]Mutz K O,Heilkenbrinker A,Lnne M,et al. Transcriptome analysis using next-generation sequencing[J]. Current Opinion in Biotechnology,2013,24(1):22-30.

      [16]Banach M,Konieczny L,Roterman I.Secondary and supersecondary structure of proteins in light of the structure of hydrophobic cores[J]. Methods in Molecular Biology,2019,1958:347-378.

      [17]Schwede T,Kopp J,Guex N,et al. SWISS-MODEL:an automated protein homology-modeling server[J]. Nucleic Acids Research,2003,31(13):3381-3385.

      [18]Clouse S D. Molecular genetic studies confirm the role of brassinosteroids in plant growth and development[J]. Plant Journal,2010,10:1-8.

      [19]Li B,F(xiàn)erreira M A,Huang M L,et al. The receptor-like kinase NIK1 targets FLS2/BAK1 immune complex and inversely modulates antiviral and antibacterial immunity[J]. Nature Communications,2019,10:4996.

      [20]Takeuchi H,Higashiyama T. Tip-localized receptors control pollen tube growth and LURE sensing in Arabidopsis[J]. Nature,2016,531(7593):245-248.

      [21]Sakamoto T,Deguchi M,Brustolini O J B,et al. The tomato RLK superfamily:phylogeny and functional predictions about the role of the LRRII-RLK subfamily in antiviral defense[J]. BMC Plant Biology,2012,12:229.

      [22]Brustolini O J B,Silva J C F,Sakamoto T,et al. Bioinformatics analysis of the receptor-like kinase (RLK) superfamily[J]. Methods in Molecular Biology,2017,1578:123-132.

      [23]魏志蓉. 番茄(亨氏1706)富含亮氨酸重復(fù)序列類受體蛋白激酶基因家族生物信息學(xué)與表達分析[D]. 天津:天津大學(xué),2016:56-78.

      [24]王亞南,孟 濤,徐 凡,等. GmSARK⊿LRR過表達擬南芥衰老相關(guān)的表型分析與分子鑒定[J]. 南開大學(xué)學(xué)報(自然科學(xué)版),2021,54(5):82-87.

      [25]Wu W Z,Wu Y J,Gao Y,et al. Somatic embryogenesis receptor-like kinase 5 in the ecotype Landsberg erecta of Arabidopsis is a functional RD LRR-RLK in regulating brassinosteroid signaling and cell death control[J]. Frontiers in Plant Science,2015,6:852.

      [26]Alvy R I,Mubassir M H M. Effect of D128N mutation on OsSERK2 in Xa21 mediated immune complex:an in-silico study[J/OL]. bioRxiv,2022(2022-11-30)[2023-05-28]. https://doi.org/10.1101/2022.11.30.518629.

      [27]Upadhyay S K. Calcium channels,OST1 and stomatal defence:current status and beyond[J]. Cells,2022,12(1):127.

      [28]Tian W,Hou C C,Ren Z J,et al. A calmodulin-gated calcium channel links pathogen patterns to plant immunity[J]. Nature,2019,572(7767):131-135.

      [29]Zafari S,Vanlerberghe G C,Igamberdiev A U. The role of alternative oxidase in the interplay between nitric oxide,reactive oxygen species,and ethylene in tobacco (Nicotiana tabacum L.) plants incubated under normoxic and hypoxic conditions[J]. International Journal of Molecular Sciences,2022,23(13):7153.

      [30]Wang J,Nan N,Shi L L,et al. Arabidopsis BRCA1 represses RRTF1-mediated ROS production and ROS-responsive gene expression under dehydration stress[J]. New Phytologist,2020,228(5):1591-1610.

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