副干酪乳桿菌ALAC 產抗真菌肽發(fā)酵工藝的優(yōu)化

岳子堯，董力源，李 戀,2，滿都拉，孫子羽，陳忠軍,*

（1.內蒙古農業(yè)大學食品科學與工程學院，內蒙古呼和浩特 010018；2.內蒙古醫(yī)科大學基礎醫(yī)學院，內蒙古呼和浩特 010107）

乳酸菌是日常生活中人們較為熟悉的菌種，不論是酸奶、泡菜還是各類飲品都有其參與發(fā)酵，并且在自然界中分布廣泛。乳酸菌在幫助腸道蠕動、促進消化的同時，可以降低膽固醇吸收，調節(jié)免疫系統(tǒng)，使乳糖不耐受的癥狀得到緩解[1-3]。目前已被證實某些乳酸菌能夠產生抗菌肽，除抑制細菌、真菌外，還能對癌細胞產生滅殺作用[4-5]。乳酸菌抗菌肽因其生物安全性及抑菌活性在食品加工保藏、飼料生產、及醫(yī)藥領域已有較成功應用[6]。自乳鏈球菌素Nisin 和片球菌素Pediocins PA1 被批準作為食品防腐劑以來[4]，新型乳酸菌抗菌肽已成為最主要研究熱點和重要資源。因此，新型乳酸菌抗菌肽資源的開發(fā)挖掘勢在必行。

真菌污染是食品、飼料、醫(yī)療及環(huán)境領域最廣泛的污染類別，不僅給生產帶來明顯經濟損失，而且真菌毒素直接危害人類健康[7]?，F有化學防霉劑的大量使用導致致腐霉菌和酵母耐藥性增加，采用天然生物防霉劑代替化學防腐劑勢在必行[8-9]。由于抗真菌肽提取成本過高，目前商業(yè)化乳酸菌防霉產品幾乎全部采用了活菌劑型或無細胞提取物。

乳酸菌抗菌肽的生物合成發(fā)生在對數生長期，一般分泌到細胞外，但在特殊條件下會留在細胞內，導致抑菌活性降低。有研究表明，乳酸菌的培養(yǎng)基內主要營養(yǎng)物質改變后，其產生抗菌肽抑菌活性就會發(fā)生改變[10-12]。影響乳酸菌抑菌活性的主要因素除了培養(yǎng)基外還有菌株生長的環(huán)境與營養(yǎng)條件。封成玲等[13]采用單因素與正交試驗對產酶溶桿菌L-43 的發(fā)酵條件進行了優(yōu)化，使抗菌肽產量進一步得到了提高。江晨等[14]采用單因素實驗和響應面試驗對花生抗菌肽復合物的工藝進行了優(yōu)化，研究發(fā)現制備的花生抗菌肽復合物可以提高對枯草芽孢桿菌、大腸桿菌和米曲霉的抑菌效果。秦楠等[15]采用單因素實驗和響應面法優(yōu)化解淀粉芽孢桿菌HRH317 菌株產抗菌肽的發(fā)酵條件。Amiri 等[16]對嗜酸乳桿菌LA-5、乳酸芽孢桿菌BB-12 生物生產抗菌肽及其混合培養(yǎng)物的發(fā)酵溫度、發(fā)酵時間等進行優(yōu)化，從而增強了對單核細胞增生李斯特菌的抑制活性。目前雖對于乳酸菌產抗菌肽的發(fā)酵條件做了大量研究，但是大多針對具有抑制細菌作用的抗菌肽，而對于抑真菌肽研究很少。

本課題組前期從內蒙古傳統(tǒng)發(fā)酵食品中分離出副干酪乳桿菌ALAC，發(fā)現其分泌的抗真菌肽對常見食品致腐霉菌和酵母具有強烈抑制活性，且安全無毒[17-18]。本研究將菌株ALAC 在前期優(yōu)化的乳清培養(yǎng)基中發(fā)酵，通過單因素實驗與響應面分析探究接種量、培養(yǎng)基初始pH、發(fā)酵時間及發(fā)酵溫度對其產抗真菌肽的影響，并確定最佳發(fā)酵工藝，為后期制備無細胞提取物生產抗真菌肽粉奠定基礎。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

副干酪乳桿菌ALAC 本實驗室保存；指示菌白假絲酵母（Candida albicans） 編號為32819，來自中國工業(yè)微生物菌種保藏管理中心；乳清粉 浙江一諾生物科技有限公司；牛肉膏、酵母膏、細菌學蛋白胨、大豆蛋白胨、胰蛋白胨、酵母提取粉 廣東環(huán)凱維生物科技有限公司；氯化鈉、檸檬酸氫二胺、磷酸氫二鉀、硫酸錳、瓊脂粉、硫酸銨、TWEEN80、硫酸鎂、蔗糖、磷酸氫二鉀 國藥集團化學試劑有限公司；無水乙酸鈉、葡萄糖 天津市大茂化學試劑廠；酶水解酪蛋白 北京酷來博科技有限公司；所用試劑均為分析純。

HZQ-F100 型全溫震蕩培養(yǎng)箱 蘇州培英實驗設備有限公司；H3018DR 型高速冷凍離心機 上海知信實驗儀器技術有限公司；DHG-9053A 型電熱鼓風干燥箱、HZQ-311C 型落地振蕩器 上海一恒科學儀器有限公司；JM-A6002 型電子天平 諸暨市超澤衡器設備有限公司；SW-CJ-2FD 型雙人單面垂直凈化工作臺 哈爾濱市東聯(lián)公司；XH-C 型漩渦混勻器 常州未來儀器制造有限公司；IKARV10digital型旋轉蒸發(fā)儀 廣州儀科實驗室技術有限公司；SHB-Ⅲ型循環(huán)水式多用真空泵 鄭州長城科工貿有限公司；P0-1000 型單道移液器 梅特勒-托利多儀器有限公司；LDZX-75KBS 型立式壓力蒸汽滅菌鍋上海申安醫(yī)療器械廠；SYNERGY H1 型酶標儀雷康恒泰商貿有限公司；MCCWS 乳成分分析儀Milkotronic 有限公司。

1.2 實驗方法

1.2.1 培養(yǎng)基的配制 MRS 培養(yǎng)基：葡萄糖20 g/L、Tween 80 1 mL/L、酵母提取粉5 g/L、檸檬酸氫二銨2 g/L、硫酸錳0.25 g/L、檸檬酸氫二銨2 g/L、硫酸鎂0.58 g/L、無水乙酸鈉5 g/L、磷酸氫二氨2 g/L、檸檬酸氫二銨2 g/L、牛肉浸膏10 g /L、細菌學蛋白胨10 g/L，調節(jié)pH 至6.5，121 °C 滅菌20 min。

YEPD 液體培養(yǎng)基：葡萄糖20 g/L、大豆蛋白胨20 g/L、酵母提取粉10 g/L，調節(jié)pH 至6.0，121 ℃滅菌20 min。

YEPD 固體培養(yǎng)基：葡萄糖20 g/L、大豆蛋白胨20 g/L、酵母提取粉10 g/L，瓊脂粉15 g/L，調節(jié)pH 至6.0，121 ℃滅菌20 min。

水瓊脂固體培養(yǎng)基：瓊脂粉15 g/L，121 °C 滅菌20 min。

乳清培養(yǎng)基：乳清液100 g/L、酶水解酪素5 g/L、葡萄糖1 g/L、酵母提取粉2 g/L。

1.2.2 乳桿菌ALAC 的活化 將斜面保存的乳桿菌ALAC 按4%接種量接種于MRS 液體培養(yǎng)基中，180 r/min，37 ℃條件下培養(yǎng)24 h，活化至三代后備用。

1.2.3 指示菌（白假絲酵母）的活化 將斜面保存的白假絲酵母菌按4%接種量接種于YEPD 液體培養(yǎng)基中，180 r/min，30 ℃條件下48 h，活化至三代后備用。

1.2.4 指示菌菌懸液制備 將活化三代的白假絲酵母稀釋，將0.1 mL 菌液吸入0.9 mL 生理鹽水的無菌EP 管中，混合均勻，重復操作，稀釋至10-6倍備用。

1.2.5 乳清培養(yǎng)基中乳清液的制備 將100 g 乳清粉加入1 L、90 ℃蒸餾水中（先加熱水，再加乳清粉以防糊狀）。用0.1 mol/L 鹽酸溶液把以上溶液pH調成4.5，90 ℃恒溫水浴30 min，使酪蛋白凝結沉淀成塊。用脫脂棉、紗布過濾，然后用1 mol/L 氫氧化鈉溶液將濾后乳清液的pH 調成6.5，煮沸后進行抽濾，115 ℃滅菌20 min 后4 ℃冷藏備用。

1.2.6 乳桿菌抗真菌肽發(fā)酵液的處理 將活化至三代的乳酸菌ALAC 按4%接種量分別接種到乳清培養(yǎng)基中，在180 r/min 條件下培養(yǎng)24 h，發(fā)酵液離心分離去除菌體及沉淀（8000 r/min，20 min，4 ℃），取上清液在50 ℃、0.075 MPa 條件下濃縮至10%。

1.2.7 單因素實驗

1.2.7.1 菌株接種量對乳酸菌產抑菌活性物質的影響 將乳桿菌ALAC 分別按1%、2%、3%、4%、5%的接種量接入乳清培養(yǎng)基，37 ℃下培養(yǎng)24 h，發(fā)酵液離心分離濃縮后進行抑菌試驗。

1.2.7.2 發(fā)酵時間對乳酸菌產抑菌活性物質的影響

將乳桿菌ALAC 按4%的接種量接入培養(yǎng)基，37 ℃下分別培養(yǎng)18、24、30、32、36、42 h，同上處理后進行抑菌試驗。

1.2.7.3 發(fā)酵溫度對乳酸菌產抑菌活性物質的影響

將乳桿菌ALAC 按4%接種量接入乳清培養(yǎng)基，分別在27、32、37、42、47 ℃下培養(yǎng)24 h，發(fā)酵液同上處理后進行抑菌試驗。

1.2.7.4 培養(yǎng)基初始pH 對乳酸菌產抑菌活性物質的影響 將乳桿菌ALAC 按4%接種量接入乳清培養(yǎng)基，分別調節(jié)pH 到6.0、6.5、7.0、7.5、8.0，37 ℃下培養(yǎng)24 h，發(fā)酵液同上處理后進行抑菌試驗。

1.2.8 響應面試驗 由單因素實驗得出最佳發(fā)酵條件后，結合試驗結果，選取對抑菌圈影響較大的3 個因素，培養(yǎng)基初始pH、培養(yǎng)時間、培養(yǎng)溫度，利用響應面分析法進行優(yōu)化設計。以各因最優(yōu)取值為中心，上下區(qū)域各取1 個水平值作為響應面試驗設計水平見表1。通過發(fā)酵濃縮液的抑菌圈大小作為評價指標，設計三因素三水平17 個試驗點的響應面試驗，其中零點實驗重復5 次，采用Design-Expert 8.0.6 統(tǒng)計軟件對實驗結果進行響應面回歸分析。

表1 Box-Behnken 試驗因素與水平設計Table 1 Factors and levels of Box-Behnken

1.2.9 牛津杯法檢測抑菌性 配制水瓊脂及YEPD培養(yǎng)基，滅菌備用。將水瓊脂加熱融化，取15 mL 倒入培養(yǎng)皿中，凝固后在固體瓊脂上放置三只牛津杯（呈正三角形形狀）。將稀釋后的白假絲酵母按4%比例接入35 ℃左右25 ml YEPD 培養(yǎng)基中，將其倒入已凝固的瓊脂培養(yǎng)基待凝固。凝固后培養(yǎng)皿呈明顯兩層狀態(tài)，遂取出牛津杯，在孔洞中加入200 μL 發(fā)酵濃縮液，37 ℃培養(yǎng)24 h 觀察結果。每組試驗進行三次，計算平均值?？梢酝ㄟ^比較抑菌圈大?。ò＝虮闹睆? mm）來反應其抑菌性強弱。

1.2.10 抗菌肽粗提粉的品質分析 抗菌肽發(fā)酵液粗提粉制備，將濃縮至10%的發(fā)酵粗提液進行冷凍干燥，36 h 后取出研磨成均勻粉末4 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

理化指標測定：將抗菌肽粗提粉添加10 倍的蒸餾水溶解均勻，通過乳成分分析儀進行蛋白質、乳糖、脂肪理化指標測定。水分含量測定根據GB 5009.3-2016 中的直接干燥法測定?？咕拇痔岱畚⑸镏笜藱z測，菌落總數測定方法參考GB 4789.2-2016。大腸菌群數測定方法參考GB 4789.3-2016。致病菌（志賀氏菌、沙門氏菌、金黃色葡萄球菌）測定方法參考GB 4789.10-2016。

1.3 數據處理

所有實驗進行3 次重復，采用SPSS 19.0 軟件統(tǒng)計處理數據，采用Design-Expert 8.0.6 統(tǒng)計軟件進行響應面分析，采用Originpro 2019，excle 2016 軟件作圖。

2 結果與分析

2.1 乳桿菌ALAC 發(fā)酵條件單因素實驗

2.1.1 接種量對菌株產抗菌肽的影響 通過前期研究結果發(fā)現試驗菌株對大多數霉菌和酵母具有抑菌性，尤其對白假絲酵母具有極強抑菌性，且白假絲酵母為食品中常見的致病致腐酵母，故將其作為指示菌來測定乳桿菌產抑菌活性物質的抑菌效果。通過研究不同接種量對乳桿菌產抑菌活性物質的影響（圖1），發(fā)現接種量對菌株抑菌效果有顯著影響（P＜0.05），隨著接種量的增加，抑菌圈直徑迅速增大，在接種量為4%條件下發(fā)酵液的抑菌圈直徑達到峰值16.47 mm，再繼續(xù)增大接種量抑菌圈直徑減小。據研究表明，細菌素合成在對數期，一定程度加大接種量會加速菌種生長，快速到達對數期，從而加速合成細菌素，使抑菌活性增強[19]。從圖1 中可以看出當接種量高于4%時抑菌圈直徑有明顯的下降趨勢，可能是由于乳酸菌發(fā)酵過程中，一定的空間內微生物數量增加會引起生存空間和營養(yǎng)物質的爭奪，因而造成菌株生長情況下降，抗菌物質合成受阻，抑菌圈直徑變小。也可能是接種量過大，縮短合成時間，產量有很大程度的下降，抗菌肽的活性也會降低，這可能也與細菌素吸附到產生菌菌體表面有關[20]。

圖1 接種量對抑菌效果的影響Fig.1 Effect of inoculum on antibacterial efficacy

2.1.2 發(fā)酵時間對菌株產抗菌肽的影響 由圖2 所示，發(fā)酵時間對抑菌效果有顯著影響（P＜0.05），抑菌圈直徑隨發(fā)酵時間的延長先迅速增高，在24 h 達到峰值16.78 mm，后隨著發(fā)酵時間增長發(fā)酵液抑菌活性呈逐漸下降趨勢。通常來說，抗菌肽在對數生長前期開始合成，在指數生長末期或穩(wěn)定前期達到最大量[21]。副干酪乳桿菌ALAC 的對數生長期為18～30 h[22]，生長24 h 時乳桿菌正處于對數生長期中期，產生的抑菌物質活性最強，菌株抑菌活性與生長曲線變化基本一致，這與王瑤等[23]研究發(fā)現相符，即植物乳桿菌LPL-1 菌株的細菌素產量與生長曲線有一致性。隨著發(fā)酵時間延長但抑菌活性逐漸降低，這可能是菌體進入衰亡期，合成抗菌肽能力減弱導致抗菌活性下降。

圖2 發(fā)酵時間對抑菌效果的影響Fig.2 Effect of fermentation time on antibacterial efficacy

2.1.3 發(fā)酵溫度對菌株產抗菌肽的影響 研究不同的發(fā)酵溫度對菌株合成抗菌肽的影響，結果發(fā)現（圖3）隨著發(fā)酵溫度的增長，抑菌圈直徑呈現先增大后減小的趨勢，在37 ℃達到峰值16.93 mm，超過37 ℃后抑菌圈直徑大幅降低。Ogunbanwo 等[24]研究發(fā)現30 ℃時最有利于植物乳桿菌產細菌素，這與本研究結果不同，說明不同菌株產抗菌肽的最適發(fā)酵溫度不同，這與抗菌肽的合成機制有關[25]，也有可能該菌株抗菌物質代謝途徑受到阻礙導致抑菌活性下降。

圖3 發(fā)酵溫度對抑菌效果的影響Fig.3 Effect of fermentation temperature on antibacterial efficacy

2.1.4 初始pH 對菌株產抗菌肽的影響 培養(yǎng)基初始pH 在5.5～7.0 范圍內時（圖4），抑菌圈直徑不斷增加，在pH 為7 時抑菌圈直徑達到峰值17.1 mm，隨后抑菌圈直徑下降。研究表明乳酸菌的最適生長pH 與細菌素合成的最適pH 可能不相同[26]。乳桿菌最適生長pH 在5.5～6.0 左右，但在酸性條件下抗菌肽的轉錄翻譯過程受阻，導致抑菌活性低；也可能是菌體細胞在不同pH 條件下對抗菌肽的吸附能力不同[27]，不利于代謝生成抑菌物質。在培養(yǎng)基初始pH為7.0 時盡管菌體生長未處于最佳狀態(tài)，但此時生成的抑菌物質活性最強。

圖4 初始pH 對抑菌效果的影響Fig.4 Effect of initial pH on antibacterial efficacy

2.2 響應面試驗優(yōu)化發(fā)酵工藝

2.2.1 響應面試驗設計及結果 在單因素實驗的基礎上，選取A 接種量、B 發(fā)酵時間、C 初始pH 3 個因素，采用三因素三水平的響應面分析試驗對乳桿菌ALAC 培養(yǎng)基發(fā)酵條件優(yōu)化。利用Design-Expert8.0.6 軟件進行試驗設計、數據處理及模型的建立。試驗結果與分析見表2。

表2 Box-Behnken 試驗設計及結果Table 2 Experimental design and results of Box-Behnken

將得到的實驗結果用Design-Expert10.0.7 軟件對所得試驗數據進行二次多項式回歸擬合，得到抑菌圈直徑與各因素變量的二次回歸方程如下：Y=17.10-0.31A-0.075B-0.44C+0.22AB-0.25AC+0.075BC-1.80A2-1.88B2-1.85C2，此方程試驗方差分析見表3。

表3 Box-Behnken 回歸模型方差分析Table 3 ANOVA for Box-Behnken regression model

由表3 可知，模型決定系數R2為0.9688，說明抑菌圈直徑的實際值與預測值擬合較好，96.88%的抑菌圈直徑大小變化可用此回歸方程模型來解釋，可以較好的反映出抑菌圈直徑與接種量、發(fā)酵時間和初始pH 之間的關系。調整決定系數R2Adj為0.9287，說明92.87%實驗數據的變異性可用該方程解釋且抑菌圈大小由92.87%受實驗因素影響。該模型的P值＜0.01，具有顯著性，失擬項P值0.9674＞0.05，表明失擬項不顯著，模型擬合度好，能較好的反映響應面的變化，描述本實驗結果。綜上所述，以抑菌圈直徑為響應值建立的乳酸菌最佳發(fā)酵工藝模型，可對不同發(fā)酵條件下乳酸菌抑菌能力進行分析和預測。對回歸模型進行顯著性檢驗可知，A2、B2、C2抑菌圈直徑大小的影響極顯著（P＜0.01），C 對抑菌圈直徑大小的影響顯著（P＜0.05）。根據表中F值可知，各因素對抑菌圈大小影響程度為C＞A＞B，即：初始pH＞接種量＞發(fā)酵時間。

2.2.2 響應面交互效應分析 圖5 是接種量和發(fā)酵時間影響抑菌活性的響應面圖。從圖中可以看出當初始pH 不變，發(fā)酵時間處于最值時，隨著接種量的增加，抑菌圈直徑呈先增加后下降趨勢；接種量處于最值時，隨著發(fā)酵時間增加，抑菌圈大小呈現出相同趨勢。發(fā)酵時間與接種量的曲面較陡，對抑菌活性影響顯著。

圖5 接種量和發(fā)酵時間對抑菌活性影響的響應面圖Fig.5 Response surface diagram of the effect of inoculation amount and fermentation time on antibacterial activity

從圖6 可以看出，當發(fā)酵時間不變，接種量處于最值時，隨著初始pH 的增加，抑菌圈直徑呈先增加后下降趨勢；初始pH 處于最值，隨著接種量的增加，抑菌圈大小呈相同趨勢。接種量與初始pH 的曲面較陡，對抑菌活性影響顯著。

圖6 接種量和初始pH 對抑菌活性影響的響應面圖Fig.6 Response surface diagram of the effect of inoculation amount and initial pH on antibacterial activity

圖7 是發(fā)酵時間和初始pH 影響抑菌活性的響應面圖。當接種量固定，發(fā)酵時間處于最值時，隨著初始pH 的增加，抑菌圈直徑呈先增加后下降趨勢；初始pH 處于最值時，隨著發(fā)酵時間增加，抑菌圈大小呈相同趨勢。代表初始pH 的響應曲面坡度較陡，說明初始pH 的變化對抑菌活性的影響比發(fā)酵時間對其影響大。

圖7 發(fā)酵時間和初始pH 對抑菌活性影響的響應面圖Fig.7 Response surface diagram of the effect of fermentation time and initial pH on antibacterial activity

2.2.3 工藝條件驗證實驗 根據抑菌圈直徑大小模型的二次回歸方程，利用 Design-Expert 8.0.6 軟件對乳酸菌發(fā)酵條件工藝參數進行優(yōu)化，得到最優(yōu)參數為接種量3.907%、發(fā)酵時間23.706 h、初始pH 為6.946，在此條件下抑菌圈直徑為17.143 mm。為驗證響應面優(yōu)化的可行性，在此最佳條件下進行乳酸菌最優(yōu)發(fā)酵條件的驗證試驗，同時考慮實際操作可行性，調整參數為接種量4%、發(fā)酵時間24 h、初始pH 為7.0，進行3 次平行試驗，得到抑菌圈直徑平均值為17.33±0.17 mm，與理論值較為接近。說明采用響應面法對乳酸菌發(fā)酵工藝參數優(yōu)化得出的結果可靠，具有實用價值。

2.3 抗菌肽粗提粉的品質分析

采用本實驗優(yōu)化的最佳發(fā)酵工藝制得發(fā)酵粗提液，經過濃縮蒸發(fā)，冷凍干燥制得抗菌肽粗提粉?？咕拇痔岱塾休^好的組織狀態(tài)，滋味氣味正常，色澤均一。組織狀態(tài)整體均勻、松散，粉質干燥且無結塊，具有良好的流動性；滋氣味有較濃的乳香味及乳酸菌發(fā)酵后特有的淡香味；色澤呈均勻一致的乳黃色、有光澤。

抗菌肽粗提粉的理化指標如表4 所示，由表4可知，抗菌粗提粉的脂肪含量為0.53 g/100 g，蛋白質含量為34 g/100 g，含水量為3.4%（w/w），乳糖含量77 g/100 g，溶水后溶液pH 為4.5。

表4 抗菌肽粗提粉理化指標Table 4 Physical and chemical indexes of crude powder of antimicrobial peptides

抗菌肽粗提粉的根據微生物檢測結果見表5，抗菌肽粗提粉中菌落總數＜3000 cfu/g，大腸菌群數＜90 MPN/100 g。沙門氏菌、志賀氏菌及金黃色葡萄球菌這三種食品中常見致病菌沒有被檢測出。考慮后期可以安全應用于食品中延長食品保質期。

表5 抗菌肽粗提粉微生物指標Table 5 Test results of microbial indexes of crude powder of antimicrobial peptides

3 結論

安全高效的天然抑菌產品有望代替化學防腐劑用于食品、飼料等行業(yè)[28-29]。當下發(fā)酵乳酸菌抗菌肽的培養(yǎng)基以MRS、M17 培養(yǎng)基居多，采用農業(yè)、工業(yè)副產物為培養(yǎng)基主要成分發(fā)酵乳酸菌抗菌肽成為研究熱點[30]。本研究選用乳清發(fā)酵培養(yǎng)基，以自主分離的具有抑真菌特性的副干酪乳桿菌ALAC 生產抗菌肽粉。采用響應面分析對副干酪乳桿菌的發(fā)酵條件進行了優(yōu)化，確定了最佳發(fā)酵工藝條件為培養(yǎng)基初始pH 為7.0、接種量4%、發(fā)酵時間24 h，此條件下乳桿菌產抗菌肽的抑菌圈達到17.33±0.17 mm。最佳發(fā)酵條件制得的抗菌肽粗提粉感官狀態(tài)良好，理化指標和微生物指標符合要求。研究結果表明副干酪乳桿菌ALAC 發(fā)酵生產的抗菌肽具有較強的抑菌特性，為后期進一步優(yōu)化后處理工藝，從而生產抗菌肽粉奠定了基礎。