趙天珍,宋長江,何國成,丘金珠,梁 瑩,宋海霞
( 中山市農(nóng)產(chǎn)品質(zhì)量安全檢驗所,廣東 中山 528400 )
糖皮質(zhì)激素可分為內(nèi)源性及人工合成的糖皮質(zhì)激素。由于具有解熱、抗炎和抗過敏的作用,合成類糖皮質(zhì)激素被添加在動物飼料中[1-2]。動物生長過程中過量使用這些激素會導(dǎo)致其在動物源性食品中殘留,進而影響人類健康[3],故已被各國禁止在飼料中添加。糖皮質(zhì)激素藥物的殘留檢測方法有免疫分析法[4]、毛細管電泳法[5]、液相色譜法[6]、液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法[7]、液相色譜-飛行時間質(zhì)譜法[8]等。其中,液相色譜法等常用于快速篩查,無法準(zhǔn)確定性;液相色譜-飛行時間質(zhì)譜法設(shè)備昂貴,使用成本高;液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法具有選擇性好靈敏度高等優(yōu)點,應(yīng)用廣泛。通過式固相萃取小柱(PRiME HLB)是近年來通過式固相萃取柱[9-10]建立的樣品前處理新技術(shù),具有操作簡單、無活化和平衡、凈化效率高等優(yōu)點,廣泛應(yīng)用于獸藥殘留檢測。高潔等[9]建立了PRiME HLB 同時檢測豬肉中52種同化激素。檢測飼料中糖皮質(zhì)激素[11]的報道并不多見,應(yīng)用PRiME HLB檢測飼料中糖皮質(zhì)激素未見報道。
本研究以配合、濃縮和添加劑預(yù)混合飼料為目標(biāo),選擇動物源性食品中有檢測要求的8種糖皮質(zhì)激素(潑尼松、潑尼松龍、氫化可的松、甲基潑尼松、倍他米松、倍氯米松、地塞米松、醋酸氟氫可的松)為研究對象,利用PRiME HLB凈化、UPLC-MS/MS測定,基質(zhì)工作曲線和同位素內(nèi)標(biāo)法定量,為飼料中糖皮質(zhì)激素類藥物的風(fēng)險篩查和監(jiān)測工作提供技術(shù)支持。
1.1.1 材料與試劑
標(biāo)準(zhǔn)品:潑尼松、潑尼松龍、氫化可的松、甲基潑尼松、倍他米松、倍氯米松、地塞米松、醋酸氟氫可的松、氟氫可的松-D5、潑尼松-D4、氫化可的松-D3純度均大于98.5%,購自德國Dr. Ehrenstorfer GmbH 公司;乙酸乙酯、甲醇、乙腈均為色譜純,購自默克公司;甲酸,色譜純購自CNW 公司;Oasis PRiME HLB(3 mL/60 mg)、Oasis PRiME HLB(6 mL/200 mg)購自Waters 公司;氯化鈉購自廣州化學(xué)試劑公司;0.22 μm有機濾膜購自津騰公司;陶瓷均質(zhì)子購自Agilent公司;配合飼料、濃縮飼料、添加劑預(yù)混合飼料來自中山市農(nóng)檢所樣品室。
1.1.2 主要儀器設(shè)備
1290+6495A 液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜儀(配電噴霧離子源,安捷倫公司);MSA125P-CE 十萬分之一天平、Quintix1102-1CN 百分之一電子天平(賽多利斯公司);3-30ks高速離心機(SIGMA公司);FV64氮吹儀(德泰公司);KQ-500TDE 型數(shù)控超聲清洗器(昆山市超聲儀器有限公司);Vortex2 振蕩器(IKA 公司);200 μL、1 000 μL、10 mL移液器(eppendorf公司)。
1.2.1 8種糖皮質(zhì)激素混合標(biāo)準(zhǔn)使用溶液
取潑尼松、潑尼松龍、氫化可的松、甲基潑尼松、倍他米松、倍氯米松、地塞米松、醋酸氟氫可的松標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì),用十萬分之一天平準(zhǔn)確稱量,純度換算后用乙腈溶解配制成1 000 mg/L標(biāo)準(zhǔn)溶液,-18 ℃冰箱保存。
使用時用乙腈液逐級稀釋用乙腈配制成100 μg/L 混合標(biāo)準(zhǔn)使用液,現(xiàn)配現(xiàn)用。
1.2.2 同位素內(nèi)標(biāo)使用液配制
取氟氫可的松-D5、潑尼松-D4、氫化可的松-D3標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì),用十萬分之一天平準(zhǔn)確稱量,純度換算后用乙腈溶解配制成1 000 mg/L 標(biāo)準(zhǔn)溶液,-18 ℃冰箱保存。使用時用乙腈逐級稀釋配制成1.00 mg/L 同位素內(nèi)標(biāo)混合使用液,現(xiàn)配現(xiàn)用。
1.3.1 液相色譜條件
色譜柱:Agilent Poroshell 120 EC-C18(2.1 mm×100 mm,2.7 μm)。流動相:A 相為0.005 %甲酸水溶液,B 相為乙腈,流速0.4 mL/min,柱溫45 ℃,進樣量為5 μL,梯度洗脫條件見表1。
表1 梯度洗脫條件Tab.1 Conditions of gradient elution
1.3.2 質(zhì)譜條件
檢測方式為多反應(yīng)監(jiān)測MRM;電離方式為電噴霧離子源負模式;干燥氣溫度:200 ℃,干燥氣流量:14 L/min,干燥氣壓力:35 psi,鞘氣溫度:350 ℃,鞘氣流量:11 L/min,電壓:380 ℃。8 種糖皮質(zhì)激素和3 種同位素內(nèi)標(biāo)的質(zhì)譜條件見表2。
表2 8種糖皮質(zhì)激素藥物和3種同位素內(nèi)標(biāo)的質(zhì)譜參數(shù)Tab.2 Mass spectrometric parameters of eight glucocorticoids and three isotope internal standards
準(zhǔn)確稱取樣品1.00 g(精確至0.01 g),置于50 mL聚丙烯離心管中,取100 μg/L的8種糖皮質(zhì)激素混合標(biāo)準(zhǔn)使用液(1.2.1)加標(biāo),分別加入20、50、100、200、400、500、600、1 000 μL,分別得到濃度2、5、10、20、40、50、60、100 μg/L工作曲線,再加入1.00 mg/L 同位素內(nèi)標(biāo)使用液(1.2.2)50 μL,其余前處理按照1.5中步驟進行。
以糖皮質(zhì)激素濃度和同位素內(nèi)標(biāo)濃度比值為橫坐標(biāo)(X),以各特征離子色譜峰峰面積與內(nèi)標(biāo)的峰面積比為縱坐標(biāo)(Y),繪制基質(zhì)工作曲線。
準(zhǔn)確稱取樣品1.00 g(精確至0.01 g),加入1.00 mg/L內(nèi)標(biāo)(1.2.2)50 μL,加入8 mL 0.5%甲酸-60%乙腈水溶液,1 個陶瓷均質(zhì)子,加入4 gNaCl,渦旋2 min,超聲提取20 min,10 000 r/min冷凍離心5 min,吸取上層全部有機相過3 mL/60 mg 的Oasis PRiME HLB 固相萃取柱,流速1 滴/s,擠干,氮氣吹至近干,40%甲醇水溶液復(fù)溶液定容1.00 mL,過0.22 μm微孔濾膜過濾后分析測定。
在配合飼料、濃縮飼料和添加劑預(yù)混合飼料中分別添加5、10、50 μg/kg的8種糖皮激素類藥物進行準(zhǔn)確度試驗,每個濃度做6個平行樣,計算平均回收率。
2.1.1 提取溶劑的選擇
本試驗以羅非魚配合飼料、濃縮飼料和添加劑(微量元素)預(yù)混合飼料為基質(zhì),糖皮質(zhì)激素常用的提取劑有乙腈[12]、甲醇[13]、乙酸乙酯[7]。祝曙華[14]檢測了飼料中5 種糖皮質(zhì)激素,發(fā)現(xiàn)使用甲醇提取時,大量雜質(zhì)溶出,而乙腈提取雜質(zhì)很少。并且考慮到后續(xù)操作需加入鹽分層操作的簡便性,因此不能選擇甲醇溶劑。
本試驗考察了乙酸乙酯、乙腈、60%乙腈溶液、80%乙腈溶液、含0.5%甲酸-60%乙腈水溶液和含1.5%甲酸-60%乙腈水溶液這6種溶劑對試樣加標(biāo)的平均回收率影響,結(jié)果見圖1。結(jié)果表明,0.5%甲酸-60%乙腈水溶液回收率較好。
圖1 提取溶劑對8種糖皮質(zhì)激素平均回收率的影響Fig.1 Effect of different extraction reagents on recovery rate of eight glucocorticoids
2.1.2 提取體積的選擇
本試驗選擇了0.5%甲酸-60%乙腈水溶液作為提取溶劑,并對溶劑體積作了探討。選取4、8、12 mL 對8 種糖皮質(zhì)激素提取回收率的影響,結(jié)果見圖2。
圖2 提取體積對8種糖皮質(zhì)激素平均回收率的影響Fig.2 Effect of different extraction volumes on recovery rate of eight glucocorticoids
由圖2可知,使用8 mL提取溶劑的回收率高于4 mL,而8 mL 和12 mL 回收率差異不明顯,考慮到環(huán)境友好原則,選擇8 mL作為提取體積。
2.1.3 液相條件的優(yōu)化
本試驗考察了Agilent Poroshell 120 EC-C18(2.1 mm×100 mm,2.7 μm)、Waters Acquity BEH C18(2.1 mm×100 mm,2.7 μm),由于地塞米松和倍他米松是同分異構(gòu)體,用Agilent Poroshell 120 EC-C18分離效果更佳,故本試驗選擇Agilent Poroshell 120 EC-C18。
進一步優(yōu)化流動相種類、梯度洗脫程序、流速、柱溫和進樣體積,8種糖皮質(zhì)激素峰形均對稱尖銳,詳細液相和質(zhì)譜條件見1.3.1 和1.3.2,飼料中添加8 種糖皮質(zhì)激素的MRM總離子色譜圖見圖3。
圖3 空白飼料中添加8種糖皮質(zhì)激素的MRM色譜Fig.3 MRM chromatograms of a blank feed spiked with eight glucocorticoids
按照1.5 前處理條件及1.3.1、1.3.2 色譜分離條件進行測定,以糖皮質(zhì)激素濃度和同位素內(nèi)標(biāo)質(zhì)量濃度比值為橫坐標(biāo)(X),以各特征離子色譜峰峰面積與內(nèi)標(biāo)的峰面積比為縱坐標(biāo)(Y),繪制工作曲線,并計算獲得待測物質(zhì)的線性回歸方程及相關(guān)系數(shù),并以3倍信噪比和10倍信噪比計算方法的檢出限和定量限,結(jié)果見表3~表5。
表3 8種糖皮激素類藥物在配合飼料的線性方程、檢出限和定量限Tab.3 Linear equation, detection limit and quantification limit of eight glucocorticoids in compound feed
表4 8種糖皮激素類藥物在濃縮飼料的線性方程、檢出限和定量限Tab.4 Linear equation, detection limit and quantification limit of eight glucocorticoids in formula feed
表5 8種糖皮激素類藥物在添加劑預(yù)混合飼料的線性方程、檢出限和定量限Tab.5 Linear equation, detection limit and quantification limit of eight glucocorticoids in additive premix feed
由表3~表5可知,在濃度為2~100 μg/L范圍內(nèi),8種糖皮質(zhì)激素呈良好的線性關(guān)系,相關(guān)系數(shù)均大于0.998,飼料的檢出限為0.2~1.6 μg/kg,定量限為0.6~4.8 μg/kg,略高于農(nóng)業(yè)部1063 號公告—5—2008[15]標(biāo)準(zhǔn)中檢出限2 μg/kg 和定量限5 μg/kg,遠優(yōu)于農(nóng)業(yè)部1068號公告—2—2008[16]標(biāo)準(zhǔn)中檢出限0.5、1.0 mg/kg,故滿足飼料中糖皮質(zhì)激素風(fēng)險篩查的技術(shù)要求。
向配合飼料、濃縮飼料、添加劑預(yù)混合飼料中分別添加8 種糖皮質(zhì)激素的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,添加濃度分別為5、10、50 μg/kg,按照1.5方法進行處理,3個添加水平下重復(fù)測定6次,平均回收率結(jié)果見表6。由表6可知,8種糖皮質(zhì)激素的回收率為80.6%~96.2%。根據(jù)GB/T 27404—2008標(biāo)準(zhǔn)要求,當(dāng)添加量<0.1 mg/kg,標(biāo)準(zhǔn)規(guī)定回收率為60%~120%,本方法測定回收率遠遠優(yōu)于規(guī)定要求,表明本研究建立的方法準(zhǔn)確度滿足檢測工作需求。
表6 配合、濃縮、添加劑預(yù)混合飼料中8種糖皮質(zhì)激素類藥物加標(biāo)回收率結(jié)果(n=6)Tab.6 Spiked recovery of eight glucocorticoids informula feed, concentrated feed and additive premix feed( n=6)
為驗證本方法可靠性,應(yīng)用本研究建立的方法對10種配合飼料、5 種濃縮飼料和2 種添加劑預(yù)混合飼料進行檢測,同時作質(zhì)控樣品。樣品經(jīng)前處理和上機測試后,對其中8種糖皮質(zhì)激素進行定性篩查,可疑樣品結(jié)合特征離子比,樣品均未檢出糖皮質(zhì)激素。加入的質(zhì)控樣品加標(biāo)回收率達到定量分析要求,表明方法和結(jié)果可信。
本試驗考察了乙酸乙酯、乙腈、60%乙腈溶液、80%乙腈溶液、含0.5% 甲酸-60% 乙腈水溶液和含1.5% 甲酸-60%乙腈水溶液這6種溶劑對試樣加標(biāo)的平均回收率影響。結(jié)果表明,乙酸乙酯和乙腈為提取溶劑,3種飼料的加標(biāo)回收率較低,可能乙酸乙酯共提物較多,對目標(biāo)提取物干擾嚴(yán)重;乙腈沉淀蛋白易結(jié)塊,導(dǎo)致提取目標(biāo)物不充分;乙腈水溶液提取效率高于乙酸乙酯、乙腈,其中體積分?jǐn)?shù)為60%乙腈溶液提取效率高于體積分?jǐn)?shù)80%乙腈溶液,可能是水有助于提取水溶性物質(zhì);體積分?jǐn)?shù)60%乙腈溶液中加入0.5%甲酸提取效率高于1.5%甲酸,可能是酸度過高影響了離子化效率,流動相中加入0.5%甲酸利于目標(biāo)化合物的離子化,響應(yīng)有所提高,重復(fù)性好,故選擇0.5%甲酸-60%乙腈水溶液,這與郭添榮[17]報道結(jié)論基本一致。
飼料樣品蛋白脂肪含量較高,使用乙腈溶液提取后會含有脂溶性物質(zhì),因而為減少對儀器污染,選擇凈化效果較好的固相萃取柱。有文獻采用固相萃取柱[11]、分散固相萃取[18]、整體在線凈化[19]等方法,操作較煩瑣,耗時長,有機溶劑用量較大。有文獻采用通過PRiME HLB 凈化魚肉[20]、育發(fā)液[21]、化妝品[22]中糖皮質(zhì)激素,但未見PRiME HLB 應(yīng)用于飼料中糖皮質(zhì)激素檢測前處理的報道。本研究采用PRiME HLB通過式固相萃取柱,無須活化和平衡,能夠有效吸附脂溶性雜質(zhì),凈化效率高,操作簡單,前處理時間短,重現(xiàn)性好。本試驗選取兩種型號的PRiME HLB(3 mL/60 mg和6 mL/200 mg),對回收率進行比較;結(jié)果顯示,3 mL/60 mg 平均提取回收率更好,故選擇3 mL/60 mg PRiME HLB固相萃取柱。
同位素內(nèi)標(biāo)法優(yōu)點較多,如定量時可以有效避免樣品前處理提取過程對目標(biāo)組分丟失造成定量不準(zhǔn)確的影響,但無法避免基質(zhì)效應(yīng)的影響?;|(zhì)效應(yīng)是指在樣品檢測過程中,除目標(biāo)組分以外的物質(zhì)對目標(biāo)組分的影響,有基質(zhì)增強或減弱效應(yīng)。王博等[23]研究測定了配合飼料中11種蛋白同化激素含量,發(fā)現(xiàn)基質(zhì)對部分目標(biāo)物具有抑制作用。消除基質(zhì)效應(yīng)常見方法有基質(zhì)匹配工作曲線、內(nèi)標(biāo)法、改進凈化方法等。由于飼料基質(zhì)復(fù)雜,飼料種類繁多,不同飼料基質(zhì)差別較大,通過選擇基質(zhì)工作曲線和同位素內(nèi)標(biāo)法同時定量,既可以消除或減弱基質(zhì)效應(yīng)的影響,還能夠避免樣品前處理中目標(biāo)物的損失。因此,優(yōu)化后的方法回收率可達80%以上,準(zhǔn)確度高。
飼料種類繁多,除了幾種常見飼料外,還有一些特殊類型的飼料,如寵物飼料、飼料添加劑和混合型飼料添加劑、植物源性和微生物發(fā)酵類等研究對象,本研究未涉及,未來需要進一步探究。此外,本研究只使用了3種同位素內(nèi)標(biāo),部分化合物回收率略低,不到90%,原因可能為使用3 種內(nèi)標(biāo)結(jié)構(gòu)與結(jié)構(gòu)存在差異,未來研究中將尋找合適的同位素內(nèi)標(biāo)進行試驗。
本試驗以配合飼料、濃縮飼料和添加劑預(yù)混合飼料作為研究對象,建立了8種糖皮質(zhì)激素快速篩查糖皮質(zhì)激素的分析方法,樣品經(jīng)0.5%甲酸-60%乙腈水溶液提取后離心,上清液經(jīng)Oasis PRiME HLB 固相萃取柱凈化后使用氮吹儀吹干,用40%甲醇溶液溶解上液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜儀測定,基質(zhì)工作曲線和同位素內(nèi)標(biāo)法同時定量。8 種糖皮質(zhì)激素添加回收率為80.6%~96.2%,檢出限為0.2~1.6 μg/kg,定量限為0.6~4.8 μg/kg。結(jié)果表明,該方法前處理操作簡單、快速,凈化效果好,基質(zhì)效應(yīng)不明顯,靈敏度高,準(zhǔn)確性好,建立的分析方法適用于飼料中多種糖皮質(zhì)激素檢測,可為風(fēng)險監(jiān)測和監(jiān)督抽查提供技術(shù)支持。