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    荔枝果渣不溶性膳食纖維的結構、體外抗氧化及降血糖活性評價

    2023-12-05 08:10:00李依娜余元善胡騰根吳繼軍肖更生卜智斌
    中國食品學報 2023年10期
    關鍵詞:單糖糖苷酶清除率

    李依娜,余元善,胡騰根,李 璐,吳繼軍,肖更生,鄒 波,卜智斌

    (1 廣東省農業(yè)科學院蠶業(yè)與農產品加工研究所 農業(yè)農村部功能食品重點實驗室廣東省農產品加工重點實驗室 廣州510610 2 華南農業(yè)大學食品學院 廣州510642 3 仲愷農業(yè)工程學院輕工食品學院 廣州 510631)

    荔枝(Litchi chinensis Sonn.)為熱帶亞熱帶常綠喬木植物的果實,含有多種營養(yǎng)和促進健康的生物活性成分,如多酚、膳食纖維、有機酸、氨基酸和維生素等,具有抗氧化、抗腫瘤、降血脂和免疫調節(jié)等功效[1]。據報道,荔枝加工過程中產生的皮渣副產物占全果的40%~50%[2],這些加工副產物比整個果實含有更高的膳食纖維含量和酚類含量,具有廣泛的生理活性和潛在應用價值[3-4]。荔枝果渣在實際生產中的利用程度不高,常被直接丟棄或填埋,少部分用作飼料或堆肥[5]。

    膳食纖維(Dietary fiber,DF)是指天然存在于食物中的可食用碳水化合物或人造碳水化合物的聚合物,能抗人體小腸消化吸收,在大腸中可以部分或全部發(fā)酵[6]。根據其溶解性可分為可溶性膳食纖維(Soluble dietary fiber,SDF)和不溶性膳食纖維(Insoluble dietary fiber,IDF),其中IDF 在天然纖維中占比約為2/3~3/4[7]。進入食品市場的膳食纖維主要來自水果、蔬菜、堅果和谷物,可通過物理、酶和化學法從食物原料中獲得[8]。相關研究發(fā)現,膳食纖維可通過降低餐后血糖水平和餐前膽固醇水平,運輸酚類化合物,促進結腸發(fā)酵,增加糞便量等機制顯著改善人體健康,其獨特的生理作用在很大程度上取決于食物來源、提取方法、化學成分和結構,不同的提取方法會影響膳食纖維的理化性質、結構組成,進而對其功能特性產生影響[9-10]。

    目前對于荔枝果渣膳食纖維的研究主要是提取工藝及理化性質的測定[11],而不同提取方法制備的荔枝果渣膳食纖維的結構組成及功能性質差異鮮有報道。鑒于此,本試驗采用纖維素酶、超聲波、高壓熱水、高靜水壓4 種方法制備荔枝果渣IDF,比較不同提取方法對荔枝果渣IDF 的單糖組成、結構性質及體外功能特性的影響,為評估荔枝果渣IDF 作為功能性食品原料提供理論依據,從而實現荔枝加工副產物的高值化利用。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    荔枝(懷枝)果渣,由廣州順昌源綠色食品有限公司提供,采用發(fā)酵法進行脫糖預處理[12]。α-淀粉酶(2 000 U/mL)、2,2'-聯氮-雙(3-乙基-苯并噻唑-6-磺酸)二銨鹽(ABTS)、1,1-二苯基-2-三硝基苯肼自由基(DPPH)、1-苯基-3-甲基-5-吡唑啉酮(PMP),上海阿拉丁生化科技股份有限公司;中性蛋白酶(100 U/mg)、單糖標準品(色譜純),上海源葉生物科技有限公司;纖維素酶(700 EGU/g),諾維信(中國)生物技術有限公司;其它試劑均為國產分析純級。

    1.2 儀器與設備

    FDU-2110 型冷凍干燥機,上海愛朗儀器有限公司;Infinite M200pro 型酶標儀,奧地利TECAN公司;LC-20A 型高效液相色譜(HPLC),日本島津公司;D3024R 型高速離心機,美國賽洛捷克公司;YXQ-LS-5OS 型立式蒸汽滅菌鍋,上海博訊實業(yè)有限公司醫(yī)療設備廠;JY88-Ⅱ型超聲波細胞粉碎機,寧波新芝生物科技股份有限公司;SHPP-57DZM-600 型高靜壓設備,山西力德??萍加邢薰?。

    1.3 試驗方法

    1.3.1 荔枝果渣IDF 的提取 脫糖荔枝果渣與水以1∶20(m/V)的料液比混合,調節(jié)pH 值為6.0,在95 ℃下加入100 U/g α-高溫淀粉酶反應30 min,冷卻后調節(jié)pH 值至7.0,加入500 U/g 中性蛋白酶,于55 ℃酶解1.5 h,反應結束后沸水浴滅酶10 min。纖維素酶提取法是在50 ℃下加入50 μL/g 纖維素酶水浴振蕩3 h,煮沸10 min 滅酶;超聲波提取法是在超聲波細胞粉碎機中以250 W 處理20 min;高壓熱水提取法是在高壓蒸汽滅菌鍋內(121℃,0.2 MPa)高溫、高壓處理30 min;高靜水壓提取法是在超高壓容腔內以400 MPa 壓力條件保壓處理15 min。將經過纖維素酶、超聲波、高壓熱水和高靜水壓處理的混合物離心,收集沉淀,冷凍干燥,所得荔枝果渣IDF 分別命名為EIDF、UIDF、HIDF 和PIDF。

    1.3.2 色差的測定 采用色差儀(反射模式)對4個荔枝果渣IDFs 樣品的色澤進行標度(L*=暗/光,a*=紅/綠,b*=黃/藍),色彩飽和度C*按式(1)計算。

    1.3.3 粒徑分布的測定 采用激光粒度儀測定樣品的粒度分布情況,通過軟件分析得到累計粒度分布百分數分別達到10%,50%,90%時所對應的粒徑參數(D10、D50、D90),以及粒度分布的平均粒徑Dav 和比表面積(S/V),粉體徑距R 按式(2)計算。

    1.3.4 單糖組成分析 參考周廖強等[13]的方法,使用PMP 柱前衍生化HPLC 法分析4 個荔枝果渣IDFs 的單糖組成。色譜分離條件:以磷酸鈉緩沖液(0.05 mol/L,pH 6.85)-乙腈(87 ∶17,V ∶V)為流動相,流速1 mL/min,等度洗脫60 min,紫外檢測波長250 nm。

    1.3.5 結構特性分析

    1.3.5.1 傅里葉紅外光譜(FTIR)分析 稱取5 mg 待測樣品與100 mg 溴化鉀在研磨缽中充分研磨混合,置于壓片機中進行壓片處理,用傅里葉紅外光譜儀于4 000~400 cm-1范圍掃描,分辨率4 cm-1。

    1.3.5.2 X 射線衍射(XRD)分析 將待測樣品壓片后采用X 射線衍射儀測定。檢測條件:靶型Cu靶,電壓40 kV,電流30 mA,掃描區(qū)域(2θ)5°~50°,掃描速度4°/min。

    1.3.5.3 掃描電子顯微鏡(SEM)分析 將待測樣品置于雙面膠帶上并噴涂薄金層,在20 kV 電壓下通過掃描電鏡進行微觀結構觀察。

    1.3.6 體外抗氧化活性測定 參考種俸亭等[14]的方法并稍作修改。樣品處理:稱取1.0 g 待測樣品,加入30 mL 70%乙醇溶液,混合后置于超聲波清洗槽中超聲處理30 min,離心,收集上清液,沉淀在相同條件下重復提取至上清液基本無色,合并所有上清液,旋干乙醇,定容50 mL,備用。

    1.3.6.1 總酚含量測定 采用福林酚法,以沒食子酸為標準品繪制標準曲線,樣品的總多酚含量以每克干基中所含沒食子酸(GAE)的質量(mg GAE/g)表示。

    1.3.6.2 DPPH 自由基清除率測定 配制1,2,4,6,8,10 mg/mL 的樣品稀釋液。參照Zhang 等[15]方法并稍作修改。取50 μL 待測樣品溶液與150 μL 0.2 mmol/L DPPH 溶液混合后,室溫避光反應30 min,同時以VC 為陽性對照,在波長517 nm 處用酶標儀測定吸光度。DPPH 自由基清除率按式(3)計算,當清除率達50%所對應的樣品濃度用EC50值表示(mg/mL)。

    1.3.6.3 ABTS 自由基清除率測定 參照Garzón等[16]方法并稍作修改,取20 μL 不同濃度的待測樣品溶液加入200 μL ABTS 溶液,室溫避光反應10 min,在波長734 nm 處用酶標儀測定吸光度,VC 為陽性對照,ABTS 自由基清除率按式(4)計算,當清除率達到50%所對應的樣品濃度用EC50值表示(mg/mL)。

    1.3.7 體外降血糖活性測定

    1.3.7.1 α-葡萄糖苷酶抑制率測定 樣品處理同1.3.6 節(jié),配制0.25,0.5,1,2,4,6 mg/mL 的樣品稀釋液,參照Apostolidis 等[17]的方法測定α-葡萄糖苷酶的抑制率,以阿卡波糖為陽性對照,結果用抑制率(%)表示,當抑制率達到50%時所對應的濃度用IC50值(mg/mL)表示。

    1.3.7.2 葡萄糖束縛能力測定 參考官印瓏等[18]的方法并稍作修改,稱取0.5 g 待測樣品加到25 mL 100 mmol/L 葡萄糖溶液中,混勻后置于37℃水浴振蕩3 h,離心,取上清用DNS 法測定其中的葡萄糖含量。葡萄糖束縛能力以每克膳食纖維樣品吸收的葡萄糖物質的量(μmol/g)來表示。

    1.3.7.3 葡萄糖透析延遲指數測定 參考官印瓏等[18]的方法,稱取0.2 g 待測樣品加入10 mL 100 mmol/L 的葡萄糖溶液中,將混合物裝入透析袋中,置于盛有100 mL 蒸餾水的燒杯中,37 ℃振蕩透析,分別在30,60,90 min 時用DNS 法測定透析液中的葡萄糖含量。葡萄糖透析延遲指數按式(5)計算。

    1.4 數據統(tǒng)計與分析

    所有試驗均重復3 次,使用Excel 2010 軟件和SPSS 23.0 軟件進行數據統(tǒng)計分析,結果以“平均值±標準偏差”表示。采用單因素ANOVA 方差分析進行Duncan's 檢驗,P〈0.05表示差異顯著,使用Origin 2018 作圖。

    2 結果與分析

    2.1 荔枝果渣IDF 的理化性質

    2.1.1 荔枝果渣IDF 的色澤 在食品加工中,物料的色澤會顯著影響成品的物化指標,進而影響消費者對產品的接受度。由圖1 可看出,纖維素酶提取、超聲波提取、高靜水壓提取的荔枝果渣IDF樣品為淺褐色、褐色粉末顆粒,而高壓熱水提取的荔枝果渣IDF 為紅褐色粉末顆粒。由表1 可看出,不同提取方法制備的荔枝果渣IDF 樣品間色差值均有不同程度的變化,其中EIDF 的亮度最高(63.26±0.75),UIDF 和EIDF 的色彩飽和度無顯著性差異,PIDF 的黃度最高(12.50±0.33),而HIDF 的亮度最低(52.50±0.85),紅度(8.24±0.28)顯著高于其它樣品。不同提取方法制備的荔枝果渣IDF 色度有顯著性差異,說明不同加工處理條件影響荔枝果渣IDF 的色澤。色澤加深可能是高溫、高壓以及荔枝果渣本身特有性質造成的。

    表1 EIDF、UIDF、HIDF 和PIDF 的色差比較Table 1 Comparison of colour differences between EIDF,UIDF,HIDF and PIDF

    圖1 不同提取方法制備的荔枝果渣IDF 外觀形態(tài)Fig.1 Appearance of litchi pomace IDF prepared by different extraction methods

    2.1.2 荔枝果渣IDF 的粒徑分布比較 粒徑大小和比表面積在一定程度上反映粉粒在食品體系中的分散性和溶解性,并影響其內部活性基團的暴露和營養(yǎng)活性成分的釋放[19]。由表2 可知,各荔枝果渣纖維樣品的平均粒徑在(11.88~55.14)μm,各樣品的粒徑分布存在顯著性差異,這可能是不同提取方法導致纖維物料顆粒的內部結構發(fā)生程度不一的破裂和膨化。EIDF 的平均粒徑【(11.88±1.19)μm】 顯著小于其它樣品,比表面積最大(0.61±0.06)m2/cm3;UIDF 的平均粒徑【(36.63±0.33)μm】和比表面積【(0.20±0.01)m2/cm3】次之。UIDF 的徑距顯著高于另外3 個樣品,為(2.61±0.04)μm,說明超聲波細胞粉碎法制備的荔枝果渣IDF 的粒徑分布最寬。類似的研究顯示,米糠IDF[20]和胡蘿卜渣IDF[21]分別經超微粉碎后,其粒徑相應減小,徑距有所增加。4 個荔枝果渣纖維樣品的徑距分布范圍1.69~2.61 μm,徑距均大于1,表明不同提取方法制備的荔枝果渣IDFs 粉粒為非對稱分布,大顆粒的數量多于小顆粒的數量。膳食纖維的粒徑越小,比表面積越大,有利于增加其內部活性基團的暴露,提高其水合性質及吸附能力[22]。

    表2 EIDF、UIDF、HIDF 和PIDF 的粒徑分布Table 2 Particle size distribution of IDF,UIDF,HIDF and PIDF

    2.1.3 荔枝果渣IDF 的單糖組成 從表3 可以看出,不同提取方法制備的荔枝果渣IDF 均檢出甘露糖、核糖、鼠李糖、半乳糖醛酸、葡萄糖、半乳糖、木糖、阿拉伯糖和巖藻糖共9 種單糖組成,各纖維樣品單糖組成類型相同,含量存在差異。阿拉伯糖、葡萄糖、甘露糖、木糖和半乳糖是荔枝果渣IDF 的主要中性單糖,其中EIDF 和UIDF 的鼠李糖、半乳糖醛酸、葡萄糖、半乳糖和阿拉伯糖含量顯著高于其它兩種IDF 樣品,其原因可能是在酶和超聲的作用下,荔枝果渣細胞壁中的纖維素水解斷裂、纖維分子間的氫鍵受到機械破壞,進而影響其單糖組成[23]。各單糖組成中,荔枝果渣IDF 的阿拉伯糖含量最高,EIDF、UIDF、HIDF、PIDF 的阿拉伯糖含量范圍在51.80~117.51 mg/g,其阿拉伯糖含量分別占其總單糖含量的41.84%,41.13%,32.45%,42.36%。據Hao 等[24]的研究,阿拉伯糖是一種無熱量的糖,可顯著降低高糖、高脂飲食誘導的大鼠的體質量、Lee's 指數和臟器指數,改善糖脂異常和炎癥反應等代謝綜合征。綜上,荔枝果渣IDF 可能對人體健康有積極的作用。

    表3 EIDF、UIDF、HIDF 和PIDF 的單糖組成及含量Table 3 Monosaccharide composition and content of EIDF,UIDF,HIDF and PIDF

    2.2 荔枝果渣IDF 的結構特性

    由圖2a 可看出,各纖維樣品在400~4 000 cm-1范圍有相似的光譜分布,相應波長上的特征吸收峰強度大致相同。3 450 cm-1附近的吸收峰是游離-OH 基團與氫鍵締合而產生的伸縮振動,不同提取方法制備的荔枝果渣IDF 在此處均出現寬而強的吸收帶,表明其分子結構存在較多締合狀態(tài)的氫鍵;2 930 cm-1和2 854 cm-1處的弱吸收峰是由甲基、亞甲基上C-H 伸縮振動引起的,表明荔枝果渣IDF 具有纖維素多糖的典型結構特征;1 740 cm-1和1 640 cm-1處是C=O 和-COOH 的伸縮振動所產生的吸收峰,說明荔枝果渣IDF 均含有糖醛酸[25];1 525 cm-1附近的吸收峰是苯環(huán)特征吸收峰,表明荔枝果渣IDF 中含有木質素;1 441,1 049 cm-1處出現的兩個吸收峰分別對應纖維素和半纖維素中的CH2基團變形振動、C=O 基團伸縮振動[26]。XRD 分析結果如圖2b 所示,4 個荔枝果渣IDF 樣品在掃描角度2θ 為5°~50°范圍呈現彌散衍射,在2θ 為21.3°處均出現一個強衍射峰,該處對應纖維素晶體的002 晶面,表明荔枝果渣IDF 具有典型的纖維素Ⅰ型結構,由結晶區(qū)和無定形區(qū)組成[27]。由圖2c 可看出,所有荔枝果渣IDF樣品的超微結構表面粗糙,EIDF 表面帶有較多的孔洞和褶皺,并附著少些球形小顆粒;UIDF 整體結構疏松,呈膨化狀,表面存在較多的纖維束;HIDF 呈不規(guī)則的塊狀分布,表面凹凸不平,帶有粗糙的凹陷;PIDF 表面的孔隙較大,溝壑和凹槽多且深。這些變化表明纖維素酶解、超聲波、高壓熱水和高靜水壓處理改變了荔枝果渣膳食纖維的內部結構,其粗糙松散的結構有利于形成更大的比表面積,使內部的活性基團更多地暴露在纖維表面,進而對其生理功能產生影響[28]。

    圖2 不同提取方法制備的荔枝果渣IDF 的結構分析圖Fig.2 Structural analysis diagram of litchi pomace IDF prepared by different extraction methods

    2.3 荔枝果渣IDF 的體外抗氧化活性

    2.3.1 總酚含量 荔枝含有豐富的纖維素、葡聚糖、多酚類、黃酮類等生物活性物質,這些生物活性物質是天然抗氧化劑,具有較強的清除自由基能力,可保護機體免受自由基攻擊而導致的酶失活、脂質過氧化和蛋白質損傷等[29-30]。由圖3a 可知,從荔枝果渣中提取的IDF 富含酚類物質,各纖維樣品(EIDF、UIDF、HIDF 和PIDF)的總酚含量依次為(7.50±0.15),(7.12±0.18),(13.23±0.32)mg GAE/g 和(7.73±0.08)mg GAE/g,高于其它報道的番茄果皮纖維[31](1.58 mg GAE/g)和米糠膳食纖維(2.10 mg GAE/g)[32]的總酚含量。HIDF 的總酚含量顯著高于其它3 種IDFs,這種差異可能歸因于高溫、高壓條件下荔枝果渣IDF 的組織結構受到破壞,促使嵌入纖維基質中的酚類物質釋放。相關研究顯示,荔枝汁經121 ℃高溫熱處理后,其酚類物質含量呈現顯著性提高[33],與本試驗結果一致。

    2.3.2 自由基清除能力 DPPH 法和ABTS 法是目前最常用的自由基清除測定方法,被廣泛用于測定物質的抗氧化能力。抗氧化物質可與DPPH或ABTS 自由基結合而使反應體系褪色,通過檢測反應體系在特定波長下的吸光值間接反應該物質的抗氧化能力[34]。圖3b 和圖3c 分別顯示不同質量濃度的荔枝果渣IDF 對DPPH、ABTS 自由基清除率的影響。可以看出不同提取方法制備的荔枝果渣IDF 樣品對DPPH、ABTS 自由基均有一定的清除作用,清除效果弱于VC,呈現明顯的劑量依賴性。隨著荔枝果渣IDFs 溶液質量濃度的增加,各樣品的自由基清除率呈上升趨勢,對DPPH自由基清除率范圍在(14.82±0.65)%~(83.99±0.97)%之間,對ABTS 自由基清除率范圍在(6.11±0.09)%~(81.06±1.62)%之間,與葵花粕IDF 的DPPH、ABTS 自由基清除率的變化趨勢類似[28]。此外,在不同濃度下,HIDF 的自由基清除率顯著高于其它3 個樣品,與圖3a 中的總酚含量結果相對應,說明HIDF 表現出較強的抗氧化作用可能與其酚類物質含量有關。由圖3d 可看出,HIDF 的DPPH、ABTS 自由基清除率EC50值顯著低于其它纖維樣品,分別為(2.11±0.04)mg/mL 和(4.67± 0.14)mg/mL,EIDF 和PIDF 的DPPH、ABTS 自由基清除率EC50值則無顯著性差異。EC50值越小,樣品對于自由基的清除能力越強。Liu等[35]研究發(fā)現冷凍干燥后東奎楊梅果肉提取物的DPPH、ABTS 自由基清除率EC50值分別為(5.42±0.13)mg/mL 和(3.53±0.05)mg/mL。種俸亭等[14]報道百香果皮不可溶纖維提取物的EC50值分別為(172.0 ± 0.55)mg/mL 和(169.4 ± 0.33)mg/mL。相較之下荔枝果渣IDF 的EC50值較低,具有較好的抗氧化能力。

    2.4 荔枝果渣IDF 的體外降血糖活性

    2.4.1 α-葡萄糖苷酶抑制活性 有研究表明,高碳水化合物飲食會導致餐后高血糖反應,α-葡萄糖苷酶抑制劑可通過抑制機體內α-葡萄糖苷酶的活性而減緩碳水化合物消化為可吸收的單糖,被認為是控制餐后血糖水平升高的有效治療方式之一[36]。由圖4a 可知,對照阿卡波糖在0.25~6 mg/mL 范圍對α-葡萄糖苷酶抑制率維持在95%以上。各纖維樣品(EIDF、UIDF、HIDF 和PIDF)質量濃度為0.25 mg/mL 時,對α-葡萄糖苷酶抑制率分別為(30.67±4.39)%,(17.32±2.34)%,(39.49±0.37)%,(40.94±1.14)%。隨著樣品質量濃度的增加,各樣品對α-葡萄糖苷酶抑制率提高,表現出明顯的劑量-效應關系。在樣品質量濃度為4 mg/mL 時,各纖維樣品對α-葡萄糖苷酶抑制率均在90%以上。由圖4b 可知,阿卡波糖的半抑制濃度(IC50)最低,其次是HIDF(0.32 ± 0.02)mg/mL 和PIDF(0.32 ± 0.01)mg/mL,EIDF 的半抑 制濃度(IC50)為(0.42±0.03)mg/mL,顯著低于林良美[37]報道的筍殼IDF 的IC50值(0.517 mg/mL)。IC50值越低,該物質的α-葡萄糖苷酶抑制活性越強。阿卡波糖是生物合成藥物,有一定的副作用[38],而荔枝果渣IDFs 來源于植物性食物,對α-葡萄糖苷酶呈現積極的抑制效果,具有作為食品體系中α-葡萄糖苷酶抑制劑成分的潛力。

    圖4 不同提取方法制備的荔枝果渣IDF 的α-葡萄糖苷酶抑制活性(a)和半抑制濃度(IC50)(b)Fig.4 α-Glucosidase inhibitory activity(a)and semi-inhibitory concentration(IC50)(b)of litchi pomace IDF prepared by different extraction methods

    2.4.2 葡萄糖束縛能力和葡萄糖透析延遲能力膳食纖維可有效束縛小腸內的葡萄糖,延遲葡萄糖在胃腸道的吸收,從而達到降低血糖的作用[39]。膳食纖維的吸附能力與其化學結構、內在結構和表面性質等有關[40]。由圖5a 可看出,在100 mmol/L葡萄糖溶液中,不同提取方法制備的荔枝果渣IDF 均表現出一定的葡萄糖束縛能力,其中UIDF的葡萄糖束縛能力顯著高于其它3 個荔枝果渣IDF,達到(657.96±46.37)μmol/g,HIDF 和PIDF 的葡萄糖束縛能力無顯著性差異。據其它報道,獼猴桃渣膳食纖維[41]、小麥IDF[39]、川秋葵微粉[42]在100 mmol/L 葡萄糖溶液中葡萄糖束縛能力分別為813.60,555.60,369.06 μmol/g,可見膳食纖維的葡萄糖束縛能力同時受不同食物來源的影響。葡萄糖透析延遲指數可用于表征荔枝果渣IDF 延遲葡萄糖擴散的能力,樣品的葡萄糖透析延遲指數越大,表明其對餐后血糖的控制效果越好[14]。圖5b可看出,不同提取方法制備的荔枝果渣IDF 對葡萄糖擴散均有抑制作用,在透析時間30 min 時,荔枝果渣IDFs 的葡萄糖透析延遲指數在(22.58±0.40)%~(43.67±0.80)%之間,之后隨著透析時間的延長各荔枝果渣IDF 樣品的葡萄糖透析延遲指數呈顯著下降,說明葡萄糖延遲擴散能力隨時間的增加而逐漸減弱,這與王彩虹[43]和官印瓏等[18]的研究結果一致。在同一透析時間,UIDF 的葡萄糖透析延遲指數顯著大于其它3 個荔枝果渣IDF 樣品,這進一步證實UIDF 對葡萄糖具有較好的吸附能力,與圖5a 中的葡萄糖束縛能力結果一致。

    圖5 不同提取方法制備的荔枝果渣IDF 的葡萄糖束縛能力(a)和葡萄糖透析延遲指數(b)Fig.5 Glucose binding capacity(a)and glucose dialysis delay index(b)of litchi pomace IDF prepared by different extraction methods

    3 結論

    本試驗通過酶解法、超聲波法、高壓熱水法和高靜水壓法制備的4 個荔枝果渣IDF 平均粒徑范圍為11.88~55.14 μm,主要單糖組成是阿拉伯糖(51.80~117.51)mg/g,占總單糖組分的32.45%~42.36%。各纖維樣品均存在典型的纖維素多糖特征吸收峰和纖維素Ⅰ型結構,其微觀結構粗糙松散。在功能性質方面,4 個荔枝果渣IDF 總酚含量為(7.12±0.18)~(13.23±0.32)mg GAE/g,對DPPH自由基、ABTS 自由基均有較好的清除作用。各纖維樣品均有顯著的α-葡萄糖苷酶抑制活性,其α-葡萄糖苷酶抑制率的半抑制濃度(IC50)為(0.32±0.01)~(0.73±0.03)mg/mL,表現出較好的葡萄糖束縛能力和葡萄糖透析延遲能力。不同提取方法制備的荔枝果渣IDF 的理化結構、抗氧化活性和降血糖活性差異顯著,其中高壓熱水法提取的荔枝果渣IDF 呈明顯的紅褐色,其總酚含量及自由基清除率最高,超聲波法提取的荔枝果渣IDF 微觀結構呈膨化狀,表現出最強的葡萄糖束縛能力和葡萄糖透析延遲能力。綜合來看,荔枝果渣IDF 的理化結構和功能性質受其制備方法的影響,從荔枝果渣中提取的IDF 均具有較好的體外抗氧化和降血糖能力。這一研究結果可為荔枝果渣的精深加工和植物源功能性食品的開發(fā)提供參考。

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