雜交鱘“鱘龍1 號(hào)”（Huso dauricus ♀×Acipenser schrenckii ♂）atp1α1 與atp1β1 基因的克隆、序列分析及堿脅迫下鰓的表達(dá)特征

楊合霖，劉霞飛,2，張穎，呂偉華，王念民，豐超杰，徐偉，曹頂臣

（1.中國(guó)水產(chǎn)科學(xué)研究院黑龍江水產(chǎn)研究所，黑龍江省特殊生境魚(yú)類種質(zhì)特性與抗逆育種重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，黑龍江 哈爾濱 150070；2.大連海洋大學(xué)，遼寧 大連 116023）

我國(guó)鹽堿水域分布廣泛，尤其黑龍江省的碳酸型鹽堿水域資源豐富，極大制約了我國(guó)東北地區(qū)水產(chǎn)養(yǎng)殖業(yè)的健康發(fā)展[1]。為進(jìn)一步拓展水產(chǎn)養(yǎng)殖空間和實(shí)現(xiàn)鹽堿水域魚(yú)類養(yǎng)殖增產(chǎn)，開(kāi)發(fā)優(yōu)質(zhì)耐鹽堿魚(yú)類已經(jīng)成為近年來(lái)的重要研究課題[2]。鱘個(gè)體大、抗逆性強(qiáng)，廣鹽性，已被列為II 類鹽堿水養(yǎng)殖魚(yú)類，養(yǎng)殖技術(shù)相對(duì)成熟，已有多個(gè)高原和低洼等鹽堿水域成功養(yǎng)殖的實(shí)例，具有一定鹽堿馴化潛力[3-5]。雜交鱘“鱘龍1 號(hào)”（Huso dauricus♀×Acipenser schrenckii♂）為中國(guó)自主研發(fā)的第一個(gè)雜交鱘新品種，兼具生長(zhǎng)快和性腺品質(zhì)高等優(yōu)勢(shì)，為優(yōu)質(zhì)養(yǎng)殖品種[6,7]。

水體堿度變化影響魚(yú)類的生長(zhǎng)和發(fā)育[8-10]，甚至?xí){魚(yú)類的生存[11,12]，在過(guò)高的堿度下，養(yǎng)殖魚(yú)類的食用價(jià)值也會(huì)下降[13]。大量研究表明，魚(yú)類的Na+/K+-ATP 酶（Na+/K+-ATPase,NKA）響應(yīng)堿度的變化。當(dāng)堿度超過(guò)魚(yú)類的耐受范圍時(shí)，mRNA 表達(dá)水平下降，NKA 的酶活力減弱[14-16]。項(xiàng)目組前期研究發(fā)現(xiàn)，在碳酸鹽堿度脅迫下“鱘龍1 號(hào)”鰓的Na+/K+轉(zhuǎn)運(yùn)相關(guān)的代謝通路變化明顯，atp1α1 基因與atp1β1 基因表達(dá)下調(diào)，其中atp1α1 基因與atp1β1基因分別注釋到了NKA 蛋白的NKAα1 亞基和NKAβ1 亞基[17]。

NKA 為普遍存在于動(dòng)物細(xì)胞膜上的跨膜結(jié)合蛋白，參與細(xì)胞膜內(nèi)外的Na+和K+運(yùn)輸，可調(diào)節(jié)細(xì)胞內(nèi)外的靜息電位與離子平衡[18]。NKAα 亞基為NKA 的催化亞基，是Na+與K+的結(jié)合位點(diǎn)。NKAα1為NKAα 的一種亞型[19,20]；NKAβ 亞基主要參與輔助NKAα 亞基正確折疊、靶向和插入到細(xì)胞膜，穩(wěn)定其構(gòu)型及調(diào)節(jié)其活性。NKAβ1 為NKAβ 的一種亞型[21-23]。研究證實(shí)，NKA在尼羅羅非魚(yú)（Oreochromis niloticus）[10]、松江鱸（Trachidermus fasciatus）[24]、大鱗鲃（Luciobarbus capito）[15]、俄羅斯鱘（Acipenser gueldenstaedti）[25]與大黃魚(yú)（Larimichthys crocea）[26]等魚(yú)類的滲透壓平衡與鹽堿適應(yīng)調(diào)節(jié)中發(fā)揮重要作用，但關(guān)于鱘的研究較少。因此，本研究克隆了“鱘龍1 號(hào)”的atp1α1 基因與atp1β1 基因的cDNA全長(zhǎng)序列，分析了其序列特征，比較了不同碳酸鹽堿度脅迫下atp1α1 基因和atp1β1 基因的表達(dá)特征，以期為揭示鱘科魚(yú)類耐鹽堿脅迫響應(yīng)機(jī)制提供基礎(chǔ)數(shù)據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料及分組

本研究中涉及魚(yú)類處理的所有實(shí)驗(yàn)均獲得了中國(guó)水產(chǎn)科學(xué)院黑龍江漁業(yè)研究所動(dòng)物護(hù)理和使用委員會(huì)（HRFRI）的批準(zhǔn)，并按照指南進(jìn)行。30 日齡”鱘龍1 號(hào)”幼魚(yú)體長(zhǎng)（133.17±16.75）mm，體質(zhì)量（12.43±3.99）g，取自中國(guó)水產(chǎn)科學(xué)研究院鱘魚(yú)工程繁育中心。試驗(yàn)前在水溫（17±2）℃、溶氧量大于6 mg L-1下暫養(yǎng)2 周。試驗(yàn)分4 組，每組3 個(gè)重復(fù)，對(duì)照組為提前曝氣的自來(lái)水，實(shí)際測(cè)定堿度為（3.16±0.03）mmol·L-1（C 組）；依據(jù)II 類鹽堿水質(zhì)養(yǎng)殖魚(yú)類適應(yīng)堿度標(biāo)準(zhǔn)（SC/T 9406-2012）和前期預(yù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果，在3 個(gè)試驗(yàn)組中添加99%純度的食用小蘇打（哈爾濱市呼蘭區(qū)三鑫制堿廠），實(shí)測(cè)堿度分別為（7.61±0.12）mmol·L-1（T1 組）、（12.10±0.05）mmol·L-1（T2 組）和（15.30±0.85）mmol·L-1（T3 組）。于養(yǎng)殖第30 d，采集對(duì)照組的鰓、皮膚、肌肉、心臟、肝臟、脾臟、頭腎、腸道、眼、胃和腎臟和3 個(gè)試驗(yàn)組的鰓，每個(gè)重復(fù)各取5 尾混合，每組共采集15 尾魚(yú)，裝入凍存管后用液氮速凍，轉(zhuǎn)入-80 ℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

1.2 總RNA 提取和cDNA 合成

采用北京康為世紀(jì)生物科技有限公司的試劑，采用Trizol 法提取總RNA，按照說(shuō)明書(shū)方法操作。使用nanodrop 8000 儀器檢測(cè)各RNA 樣品的純度和濃度，采用瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)RNA 的完整性，并于-80 ℃分裝保存?zhèn)溆?。以總RNA 為模板，采用PrimeScriptTMRT reagent Kit with gDNA Eraser 的說(shuō)明進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄，將合成的cDNA 稀釋1/10 后于-20 ℃分裝保存。

1.3 “鱘龍1 號(hào)”atp1α1 與atp1β1 基因的全長(zhǎng)克隆

根據(jù)轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)中的部分CDS 序列設(shè)計(jì)引物，由蘇州金唯智生物科技有限公司（蘇州）合成（表1）。采用5× Es Taq MasterMix（TaKaRa）進(jìn)行PCR擴(kuò)增，反應(yīng)程序?yàn)椋?4 ℃變性5 min；94 ℃變性30 s，60 ℃退火30 s，72 ℃延伸2 min，35 個(gè)循環(huán)；終延伸2 ℃，延伸7 min；采用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)產(chǎn)物，使用瓊脂糖凝膠DNA 回收試劑盒（CWBIO）對(duì)目的片段進(jìn)行切膠回收，純化片段連接到pMD18-T載體（TaKaRa），轉(zhuǎn)染至大腸桿菌DH5a 感受態(tài)細(xì)胞（TaKaRa），在含Amp 的LB 固體平板培養(yǎng)基上37℃過(guò)夜培養(yǎng)；采用菌落PCR 鑒定陽(yáng)性克隆，送菌液至蘇州泓迅生物科技股份有限公司測(cè)序。

表1 實(shí)驗(yàn)使用的引物及序列Tab.1 Sequences of primers used in the experiment

根據(jù)測(cè)序獲得的CDS 區(qū)的部分片段設(shè)計(jì)5’RACE 和3’RACE 的特異性引物（GSP 和NGSP）（表1），按 照SMARTer RACE 5’/3’Kit（TaKaRa，clontech）試劑盒的方法進(jìn)行兩輪PCR 擴(kuò)增，獲得5’/3’末端序列正確片段后，進(jìn)行膠回收、連接載體、轉(zhuǎn)化、鑒定陽(yáng)性及送測(cè)序。

1.4 “鱘龍1 號(hào)”atp1α 與atp1β 基因的序列分析

使用DNAMAN 軟件將atp1α1 與atp1β1 基因的5’RACE 和3'RACE 測(cè)序結(jié)果與部分CDS 區(qū)進(jìn)行拼接與去冗余，得到cDNA 全長(zhǎng)序列；采用NCBI ORF finder 平臺(tái)分析開(kāi)放閱讀框并翻譯為相應(yīng)的氨基酸序列，用NCBI 中的BLAST 程序比對(duì)獲得的序列；使用蛋白在線分析系統(tǒng)（Expert Protien Analysis System,Ex PASy）分析氨基酸序列的理化參數(shù)；使用在線分析平臺(tái)（SOPMA）分析蛋白二級(jí)結(jié)構(gòu)等信息；用TMHMM Server v.2.0 預(yù)測(cè)蛋白跨膜區(qū)；用Net-Phos-3.1 平臺(tái)預(yù)測(cè)磷酸化位點(diǎn)，分?jǐn)?shù)閾值為0.5；采用Mega7 軟件和最大似然法（Maximum-Likehood）構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)，Bootstrap Replications 為1 000。

1.5 實(shí)時(shí)熒光定量PCR 檢測(cè)atp1α 與atp1β 基因的表達(dá)

根據(jù)CDS 序列設(shè)計(jì)定量引物（表1），以不同堿度組的鰓、對(duì)照組鰓、皮膚和肌肉等11 個(gè)組織提取的總RNA 反轉(zhuǎn)錄得到的cDNA 作為熒光定量PCR模板，以β-actin 基因?yàn)閮?nèi)參，使用ABI 7500（Applied Biosystems，USA）熒光定量PCR 儀，并采用TB GreenPremix Ex TaqTMII（TaKaRa）試劑盒，按照說(shuō)明書(shū)進(jìn)行實(shí)驗(yàn)操作。相對(duì)表達(dá)量的結(jié)果采用2-ΔΔCT的方法計(jì)算，數(shù)據(jù)采用平均值±標(biāo)準(zhǔn)差（Mean±SD）表示。使用Excel 2019 軟件統(tǒng)計(jì)分析數(shù)據(jù)，使用SPSS 22 軟件進(jìn)行單因素方差分析及Dunnett 多重比較，顯著性水平為P<0.05。使用GraphPad Prism9進(jìn)行表達(dá)水平結(jié)果可視化。為保證試驗(yàn)的準(zhǔn)確性和可重復(fù)性，設(shè)15 個(gè)生物重復(fù)，5 個(gè)生物重復(fù)為一個(gè)混樣，并做3 個(gè)技術(shù)重復(fù)。

2 結(jié)果與分析

2.1 “鱘龍1 號(hào)”atp1α1 和atp1β1 基因的cDNA 全長(zhǎng)序列信息

本研究擴(kuò)增獲得“鱘龍1 號(hào)”的atp1α1 基因和atp1β1 基因均為單一產(chǎn)物，無(wú)多態(tài)性擴(kuò)增。其中atp1α1 基因的cDNA 全長(zhǎng)序列為3 417 bp（GenBank登錄號(hào)為OM808728），其中5’端非編碼區(qū)（5’UTR）為126 bp，3’端非編碼區(qū)（3’UTR）為207 bp，開(kāi)放閱讀框（ORF）為3 084 bp，共編碼1 027 個(gè)氨基酸（圖1）；atp1β1 基因的的cDNA 全長(zhǎng)序列為2 170 bp（GenBank 登錄號(hào)為OM808729），其中5'UTR 為180 bp，3'UTR 為1 075 bp，ORF 為915 bp，共編碼304 個(gè)氨基酸（圖2）。

圖1 “鱘龍1 號(hào)”atp1α1 基因序列Fig.1 Sequence of atp1α1 gene of the hybrid sturgeon

圖2 “鱘龍1 號(hào)”atp1β1 基因cDNA 全長(zhǎng)序列Fig.2 Full-length cDNA sequence of atp1β1 gene of the hybrid sturgeon

2.2 “鱘龍1 號(hào)”atp1α1 與atp1β1 基因的蛋白結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)

對(duì)atp1α1 與atp1β1 基因的開(kāi)放閱讀框蛋白質(zhì)的預(yù)測(cè)結(jié)果顯示，NKAα1 蛋白質(zhì)分子式為C5041H803N1337O1498S52，相對(duì)分子質(zhì)量為113.01KDa，理論P(yáng)I 值為5.37；NKAβ1 蛋白質(zhì)分子式為C1578H2428N412O457S10，相對(duì)分子質(zhì)量為34.80KDa，理論P(yáng)I 值為8.80；跨膜結(jié)構(gòu)與蛋白信號(hào)肽預(yù)測(cè)結(jié)果顯示，NKAα1 蛋白有8 個(gè)跨膜區(qū)，跨膜片段為TM1（102～124 aa）、TM2（134～153 aa）、TM3（294～316 aa）、TM4（326～348 aa）、TM5（854～876 aa）、TM6（917～936 aa）、TM7（957～974 aa）與TM8（989～1 005 aa）。NKAβ1 蛋白有1 個(gè)跨膜區(qū)，跨膜片段為TM（34～56 aa）（圖1～ 圖3）；蛋白質(zhì)磷酸化位點(diǎn)預(yù)測(cè)結(jié)果顯示，NKAα1 與NKAβ1 蛋白均以絲氨酸（Ser）、蘇氨酸（Thr）和酪氨酸（Tyr）為潛在磷酸化位點(diǎn)（圖4）。二級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)結(jié)果顯示，NKAα1與NKAβ1 蛋白的二級(jí)結(jié)構(gòu)主要為α-螺旋與無(wú)規(guī)則卷曲，β-轉(zhuǎn)角僅局部分布（圖5）。

圖3 “鱘龍1 號(hào)”NKAα1 和NKAβ1 跨膜蛋白Fig.3 Transmembrane protein of NKAα1 and NKAβ1 of the hybrid sturgeon

圖4 “鱘龍1 號(hào)”NKAα1 和NKAβ1 氨基酸潛在磷酸化位點(diǎn)Fig.4 Potential phosphorylation sites of amino acids of NKAα1 and NKAβ1 of the hybrid sturgeon

圖5 “鱘龍1 號(hào)”NKAα1 和NKAβ1 蛋白二級(jí)結(jié)構(gòu)Fig.5 Secondary structure of protein of NKAα1 and NKAβ1of the hybrid sturgeon

2.3 NKAα1 與NKAβ1 蛋白的同源性分析

系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)結(jié)果顯示，“鱘龍1 號(hào)”的NKAα1蛋白和NKAβ1 蛋白與小體鱘（Acipenser ruthenus）的親緣關(guān)系最近（圖6、圖7）。其中“鱘龍1 號(hào)”的NKAα1 蛋白與小體鱘、匙吻鱘（Polyodon spathula）、葦棲多鰭魚(yú)（Erpetoichthys calabaricus）、鱷雀鱔（Atractosteus spatula）、歐洲鰻鱺（Anguilla_anguilla）和大海鰱（Megalops_cyprinoides）的同源性較高（圖6）；“鱘龍1 號(hào)”的NKAβ1 蛋白與小體鱘、匙吻鱘、噬人鯊（Carcharodon carcharias）、點(diǎn)紋斑竹鯊（Chiloscyllium punctatum）、鯨鯊（Rhincodon typus）和虎紋貓鯊（Scyliorhinus torazame）的的同源性較高（圖7）。

圖6 “鱘龍1 號(hào)”NKAα1 與其他魚(yú)類NKAα1 的系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)Fig.6 Phylogenetic tree of NKAα1 between the hybrid sturgeon and other fish

圖7 “鱘龍1 號(hào)”NKAβ1 與其他魚(yú)類NKAβ1 的系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)Fig.7 Phylogenetic tree of NKAβ1 between the hybrid sturgeon and other fish

2.4 “鱘龍1 號(hào)”atp1α1 和atp1β1 基因的組織表達(dá) 特征

采用熒光定量PCR 方法檢測(cè)“鱘龍1 號(hào)”的atp1α1 基因和atp1β1 基因的組織表達(dá)特征。結(jié)果顯示，atp1α1 基因和atp1β1 基因在鰓、皮膚、肌肉、心臟、肝臟、脾臟、頭腎、腸道、眼、胃和腎臟中均表達(dá)，其中atp1α1 基因在鰓中表達(dá)水平最高，其次為腎臟和腸，鰓與其他組織的表達(dá)量均差異顯著（P<0.05）；atp1β1 基因在心臟中表達(dá)水平最高，其次為肝臟、腸、腎臟和鰓等組織（圖8）。

圖8 “鱘龍1 號(hào)”atp1α1 基因與atp1β1 基因組織表達(dá)差異Fig.8 Tissue expression difference of atp1α1 gene and atp1β1 gene in the hybrid sturgeon

2.5 不同堿度下“鱘龍1 號(hào)”鰓atp1α1 基因和atp1β1 基因的表達(dá)特征

不同碳酸鹽堿度下，“鱘龍1 號(hào)”鰓中atp1α1 基因和atp1β1 基因的表達(dá)特征顯示，atp1α1 基因的表達(dá)水平隨堿度升高呈先上升后下降趨勢(shì)，其中T1組的atp1α1 基因表達(dá)水平顯著高于對(duì)照組（P<0.05），T2 組與T3 組的atp1α1 基因表達(dá)水平均低于對(duì)照組，差異不顯著（P>0.05）；atp1β1 基因的表達(dá)水平隨堿度升高而下降，組間表達(dá)水平差異不顯著（P>0.05）（圖9）。

圖9 “鱘龍1 號(hào)”鰓atp1α1 與atp1β1 基因在不同堿度下的表達(dá)特征Fig.9 Expression characteristics of atp1α1 and atp1β1 genes in gill of the hybrid sturgeon exposed to different alkalinities

3 討論

鱘形目魚(yú)類的染色體核型復(fù)雜，鱘魚(yú)的基因組大小與染色體倍型仍有爭(zhēng)議。主流觀點(diǎn)認(rèn)為達(dá)氏鰉核型為四倍體，施氏鱘核型為八倍體。然而雜交鱘“鱘龍1 號(hào)”的染色體核型仍尚未被闡明，這給雜交鱘的基因研究工作增加一定了難度[27]。研究證實(shí)，動(dòng)物遠(yuǎn)緣雜交后代的表型和基因型都會(huì)發(fā)生改變，表現(xiàn)為介于父母本的雜交特征。在雌性白鯽（Carassius auratus cuvieri Temminck et Schlegel）和雄性紅鯽的雜交研究中，其雜交子代序列兼有雙親特異堿基位點(diǎn)，表現(xiàn)出了重組現(xiàn)象[28,29]。本研究發(fā)現(xiàn)，雜交鱘“鱘龍1 號(hào)”的atp1α1 基因和atp1β1 基因無(wú)多態(tài)性擴(kuò)增，推測(cè)其基因重組穩(wěn)定，但由于目前親本基因組信息較少，雜交子代的基因重組機(jī)制仍有待進(jìn)一步研究。由于動(dòng)物雜交導(dǎo)致易遺傳水平的基因組失衡，故不同倍體雜交也可能發(fā)生不兼容現(xiàn)象[30]，但在生產(chǎn)實(shí)踐中，“鱘龍1 號(hào)”的子代兩性可育，表型穩(wěn)定遺傳，可能得益于鱘科魚(yú)類復(fù)雜的染色體倍型，符合孫大江等的猜想[27]。

魚(yú)類的NKA 主要由分子量約為100 KDa 的α催化亞基和分子量約為40 KDa 的β 輔助亞基組成[31]。其中，云斑尖塘鱧（Oxyeleotris marmorata）[32]的NKAα1 亞基分子量為112.5 KDa，攀鱸（Anabas testudineus）[33]的NKAα1 亞基分子量為113 KDa，遮目魚(yú)（Chanos Chanos）[34]的NKA α1 亞基分子量為100 kDa，NKA β1 亞基分子量為40 KDa。與其它魚(yú)類的研究結(jié)果相似。本研究中，“鱘龍1 號(hào)”的NKAα1 亞基分子量為113.01 KDa，NKA β1 亞基分子量為34.80 KDa。NKA 在執(zhí)行離子轉(zhuǎn)運(yùn)功能的過(guò)程中，需要通過(guò)cAmp 依賴性蛋白激酶（PKA）和蛋白激酶C（PKC）等的作用下被磷酸化和去磷酸化，改變NKA 亞基的構(gòu)型，而泵入鉀離子和泵出鈉離子[18]。NKA 磷酸化位點(diǎn)的分布與數(shù)量具有物種差異性，如攀鱸NKA 亞基的磷酸化位點(diǎn)為絲氨酸（Ser），果蠅（Drosophila virilis）的磷酸化位點(diǎn)為蘇氨酸（Thr），在NkAα1 和NkAβ1 中保守[35]。本研究中，“鱘龍1 號(hào)”的NKA 具有多個(gè)潛在磷酸化位點(diǎn)，包括絲氨酸（Ser）、蘇氨酸（Thr）和酪氨酸（Tyr），與攀鱸NKA 功能相同。鱘NKA 磷酸化位點(diǎn)數(shù)量決定了其較強(qiáng)的鹽堿適應(yīng)能力。

研究證實(shí)，NKA 中的α1 亞基與β1 亞基廣泛分布于魚(yú)類的各組織中[36,37]。本研究中，“鱘龍1 號(hào)”atp1α1 和atp1β1 基因在鰓、心臟等11 個(gè)組織中均有分布，其中atp1β1 基因在心臟與肝臟中高表達(dá)，推測(cè)其可能參與調(diào)控心肌與肝臟中的生物過(guò)程[38,39]。魚(yú)類在響應(yīng)非等滲透介質(zhì)脅迫時(shí)會(huì)發(fā)生不同的NKA表達(dá)模式。對(duì)遮目魚(yú)[35]、鳉（Oryzias latipes）[40]與攀鱸[41]等魚(yú)類的研究結(jié)果表明，鰓中NKAα1 和NKAβ1 參與了滲透壓轉(zhuǎn)換調(diào)節(jié)，且NKAα1 和NKAβ1 亞基的mRNA 表達(dá)水平與蛋白質(zhì)含量在魚(yú)類由海水至淡水轉(zhuǎn)移過(guò)程中逐漸升高，被視為“高滲介質(zhì)NKA 低表達(dá)型”魚(yú)類，而對(duì)瓦氏雅羅魚(yú)（Leuciscus waleckii）[42]的研究結(jié)果表明，其NKA 活性隨鹽堿濃度增加而增加，被視為“高滲介質(zhì)NKA高表達(dá)型”魚(yú)類。與遮目魚(yú)[35]等魚(yú)類相似，“鱘龍1號(hào)”鰓組織中atp1α1 和atp1β1 基因的mRNA 表達(dá)水平隨堿度上升而下降，堿度達(dá)到12.10 mmol·L-1時(shí)均開(kāi)始低于對(duì)照組水平，推測(cè)“鱘龍1 號(hào)”為“高滲介質(zhì)NKA 低表達(dá)型”魚(yú)類。值得注意的是，堿度為7.61 mmol·L-1的條件下，“鱘龍1 號(hào)”的鰓中atp1α1 基因的mRNA 表達(dá)水平顯著高于對(duì)照組和高堿度組（P<0.05），而atp1β1 基因的表達(dá)水平無(wú)顯著變化。研究發(fā)現(xiàn)，當(dāng)大西洋鮭（Salmo salar）和虹鱒（Oncorhynchus mykiss）等鮭科魚(yú)類逐漸暴露于海水中時(shí)，在Nka1b 基因的mRNA 表達(dá)水平上升之前，NKA 活性已經(jīng)增強(qiáng)，表明NKAα 亞基可能已經(jīng)優(yōu)先發(fā)生響應(yīng)[18,43]。與鮭科魚(yú)類相似，“鱘龍1 號(hào)”的NKAα 亞基在低堿度下優(yōu)先發(fā)生響應(yīng)，而NKAβ亞基作為輔助亞基，起到穩(wěn)定NKAα 亞基構(gòu)型及調(diào)節(jié)NKAα 亞基活性的作用，變化不明顯。當(dāng)堿度上升到12.10 mmol·L-1時(shí)，atp1α1 基因的mRNA 表達(dá)水平下降，推測(cè)NKA 功能已受阻，該結(jié)果與大鱗鲃[15]相似。

綜上所述，雜交鱘“鱘龍1 號(hào)”NKAα1 和NKAβ1 具有高度保守區(qū)域，與小體鱘的親緣關(guān)系最近；atp1α1 和atp1β1 基因表達(dá)具有組織表達(dá)特異性，其中atp1α1 基因在鰓組織中表達(dá)水平最高，atp1β1 基因在心臟中表達(dá)水平為最高。不同碳酸鹽堿度下，“鱘龍1 號(hào)”的atp1α1 基因在堿脅迫下優(yōu)先發(fā)生響應(yīng)，表明NKA 參與了“鱘龍1 號(hào)”的碳酸鹽堿度脅迫應(yīng)答。