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    嗜果刀孢菌的室內(nèi)藥劑篩選及拮抗菌的種類(lèi)鑒定

    2023-10-27 04:35:56陳帥康肖木迪麗努爾孫添琦艾爾西丁·阿巴斯馬榮
    果樹(shù)學(xué)報(bào) 2023年10期
    關(guān)鍵詞:防治

    陳帥康 肖木 迪麗努爾 孫添琦 艾爾西丁·阿巴斯 馬榮

    DOI:10.13925/j.cnki.gsxb.20230201

    摘? ? 要:【目的】由嗜果刀孢菌(Wilsonomyces carpophilus)引起的穿孔病對(duì)野杏、野生櫻桃李、栽培杏和桃的葉片、果實(shí)造成了嚴(yán)重危害。對(duì)嗜果刀孢菌的室內(nèi)藥劑篩選及拮抗菌的種類(lèi)鑒定可有效防治野杏真菌性穿孔病?!痉椒ā坎捎镁z生長(zhǎng)速率法和孢子萌發(fā)法測(cè)定8種殺菌劑對(duì)嗜果刀孢菌的室內(nèi)毒力;同時(shí)從野杏葉片上分離出1株拮抗細(xì)菌,結(jié)合形態(tài)學(xué)特征、生理生化特性和基于16S rDNA基因序列的系統(tǒng)發(fā)育分析開(kāi)展拮抗菌株的鑒定?!窘Y(jié)果】室內(nèi)毒力測(cè)定結(jié)果表明,50%多菌靈對(duì)嗜果刀孢菌菌絲生長(zhǎng)抑制效果較好,75%百菌清抑制效果較差,有效中濃度(ρ,median effective concentration,EC50)為918.8 mg·L-1;27%戊唑·噻霉酮對(duì)分生孢子萌發(fā)毒力較強(qiáng),EC50為0.060 5 mg·L-1,75%百菌清對(duì)分生孢子萌發(fā)毒力較弱,EC50為1103.0 mg·L-1;拮抗菌株XHG-1-3m2對(duì)嗜果刀孢菌抑制率為88.88%,同時(shí)對(duì)17種病菌具有抑菌效果,經(jīng)鑒定該菌株為萎縮芽孢桿菌Bacillus atrophaeus?!窘Y(jié)論】50%多菌靈對(duì)嗜果刀孢菌菌絲生長(zhǎng)抑制效果較好;27%戊唑·噻霉酮對(duì)分生孢子萌發(fā)抑制效果較好;菌株XHG-1-3m2對(duì)嗜果刀孢菌有較好的抑制效果。

    關(guān)鍵詞:野杏;嗜果刀孢菌;萎縮芽孢桿菌;防治

    中圖分類(lèi)號(hào):S662.2;S436.629 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A 文章編號(hào):1009-9980(2023)10-2229-12

    Indoor fungicide screening and identification of antagonistic strains against Wilsonomyces carpophilus

    CHEN Shuaikang1, XIAO Mu2, Dlinur1, SUN Tianqi1, Aierxiding·Abasi1, MA Rong1*

    (1Collage of Forestry and Landscape Architecture, Xinjiang Agricultural University, Urumqi 830052, Xinjiang, China; 2Xinyuan State Owned Forest Administration Bureau of Yili Kazakh Autonomous Prefecture, Xinyuan 844900, Xinjiang, China)

    Abstract: 【Objective】 Prunus armeniaca is one of the main tree crops in the Tianshan wild fruit forest, which plays an important role in maintaining the stability of the Tianshan wild fruit forest ecosystem. The occurrence of wild apricot perforation disease caused by Wilsonomyces carpophilus has become an important factor endangering the healthy growth of P. armeniaca. W. carpophilus mainly harms the leaves and fruits of P. armeniaca, causing leaf perforation and fruit browning. Screening of fungicides and identification of antagonistic fungi against W. carpophilus can effectively control fungal perforation of wild apricot. 【Methods】 Based on the previous research, 8 types of commonly used low-toxicity and high-efficiency fungicides on the market were selected as the test agents, and the concentrations of each fungicide were adjusted according to the recommended dilution ratio and pre-experiment results of the commercial agents. Using the mycelial growth rate method to determine the toxicity of different fungicides for the mycelial growth of W. carpophilus. Mix the fungicide and PDA medium in a 1∶9 ratio to form a medicated medium, inoculate the bacterial cake into the center of the plate, and use the non-medicated medium as the control. Measure the colony diameter using the cross over method to calculate the inhibition rate of mycelial growth. Prepare a suspension of conidia of W. carpophilus, mix the prepared suspension with the medicinal solution and incubate at a constant temperature for 14 hours before observing the results. The spore germination standard is set below: when the length of the bud tube exceeds half of the maximum diameter length of the spore, it is considered as initial germination. The effective result is to control the germination rate to reach 90% or above. Use the spore germination method to compare the sensitivity of the conidia of W. carpophilus to the toxicity of eight fungicides. The toxicity regression equation (y=ax+b) was established by using the least square method with the natural logarithm of the concentration of the agent as the independent variable (x) and the probability values of the inhibition rate and the inhibition rate of spore germination as the dependent variable (y). Observe and record the size, color, transparency, surface texture, and other cultural characteristics of individual colonies of antagonistic strains, as well as the results of Gram staining and physiological and biochemical characteristics measurement; Using the Neighbor-jioning method, we selected known sequences with high homology on the NCBI website to construct a phylogenetic tree of antagonistic strains, and determined the taxonomic status of the strains based on comprehensive cultural characteristics and molecular biology results; Determinate the inhibitory effect of antagonistic strains on different pathogens using plate confrontation method. 【Results】 Different fungicides had inhibitory effects on the growth of the hyphae of W. carpophilus. Among them, 50% carbendazim at different concentration gradients had a strong inhibitory effect on the growth of the hyphae. After being inoculated into the medicated medium, the hyphae did not grow. 722 g·L-1 propamocarb hydrochloride and 36% quinoline·tebuconazole had strong inhibitory effects on the growth of W. carpophilus hyphae, with EC50 values being 0.322 5 mg·L-1 and 0.329 8 mg·L-1, respectively; The inhibitory effect of 75% chlorothalonil on the growth of W. carpophilus hyphae was poor, with an EC50 value of 918.8 mg·L-1. The results of inhibiting the germination of conidia of W. carpophilus using different fungicides showed that among the 8 selected fungicides, 27% pentazole·thiamethoxazole and 722 g·L-1 propamocarb hydrochloride had better inhibitory effects on the germination of conidia of W. carpophilus, with EC50 values being 0.060 5 mg·L-1 and 0.164 mg·L-1, respectively. The inhibitory effect of 75% chlorothalonil on the germination of conidia of W. carpophilus was poor, with an EC50 of 1103 mg·L-1. After incubating the antagonistic strain XHG-1-3m2 on LB solid culture medium at a constant temperature for 3 d, the single colony was circular, with irregular edges and milky white color in the early stage, but showed gradually deepened, opaque, and slightly raised in the later stage, and the surface was not smooth. Gram staining was positive, V-P and nitrate reduction reactions were both positive and aerobic, and can liquefy gelatin and hydrolyze starch. The similarity between strain XHG-1-3m2 and B. atrophaeus sequence reached 100% in the NCBI database BLAST results. The phylogenetic tree results showed that strain XHG-1-3m2 and B. atrophaeus were clustered into the same branch. Based on comprehensive cultural characteristics and molecular biology analysis, strain XHG-1-3m2 was identified as B. atrophaeus. The antagonistic strain XHG-1-3m2 had an inhibitory effect of 88.88% on W. carpophilus, which can inhibit the growth of W. carpophilus hyphae, cause deformities, shorten internodes and affect the normal growth of hyphae. Simultaneously, it had inhibitory effects on all 17 other pathogenic fungi. 【Conclusion】 50% carbendazim had a good inhibitory effect on the mycelial growth and conidial germination of W. carpophilus. The antagonistic strain XHG-1-3m2 was B. atrophicus, which can not only inhibit the growth of W. carpophilus, but also have good antagonistic effects on other fungi, with broad-spectrum antifungal properties.

    Key words: Prunus armeniaca; Wilsonomyces carpophilus; Bacillus atrophaeus; Prevention and cure

    嗜果刀孢菌(Wilsonomyces carpophilus)是引起新疆伊犁地區(qū)天山野果林野杏(Prunus armeniaca L.)真菌性穿孔病的病原菌[1]。由嗜果刀孢菌引起的穿孔病是危害核果類(lèi)果樹(shù)的重要病害,而野杏(P. armeniaca L.)是天山野果林原始植物區(qū)系組成物種之一,對(duì)維持穩(wěn)定的野果林生態(tài)系統(tǒng)起著重要作用[2]。因此,由嗜果刀孢菌引起的野杏穿孔病的防治對(duì)保護(hù)野杏種質(zhì)資源及野果林生態(tài)系統(tǒng)的恢復(fù)有著重要意義。目前,嗜果刀孢菌的防治主要以化學(xué)防治為主。Azmy等[3]在2007—2008年在埃及Nobariya地區(qū)的杏樹(shù)上噴施克菌星(Punch)、烯唑醇(Sumi-8)、腈菌唑(Sythane-24)、戊菌唑(Topas-100)、多菌靈(Cam-zen)、肟菌酯(Flint)、吡唑醚菌酯(Pyraclostrobin)和氫氧化銅(Copper acrobat)8種殺菌劑進(jìn)行杏樹(shù)嗜果刀孢菌的防治,發(fā)現(xiàn)腈菌唑、多菌靈、烯唑醇、克菌星和戊菌唑5種殺菌劑在1 mg·L-1時(shí)的防效能夠完全抑制杏樹(shù)穿孔病的發(fā)生。此外,克菌丹(captan)、己唑醇(hexaconazole)、苯醚甲環(huán)唑(difenoconazole)等[4]都可用來(lái)防治穿孔病。錢(qián)超等[5]和王召元等[6]使用代森鋅、代森錳鋅、苯醚甲環(huán)唑和甲基硫菌靈進(jìn)行桃穿孔病田間防治,發(fā)現(xiàn)代森鋅和代森錳鋅800倍液對(duì)桃穿孔病均有不錯(cuò)的防治效果。趙俊芳等[7]通過(guò)對(duì)比克菌康、戊唑醇和葉枯唑3種殺菌劑對(duì)杏李嗜果刀孢菌的田間藥效,發(fā)現(xiàn)戊唑醇2000倍液對(duì)杏李穿孔病的防效較好,防治效果達(dá)83.74%。近年來(lái),伊犁地區(qū)天山野果林野杏穿孔病的大面積發(fā)生導(dǎo)致了野杏資源的減少,而有關(guān)嗜果刀孢菌化學(xué)藥劑防治的研究年限較早,且相關(guān)防治均在平原地區(qū)栽培杏園內(nèi)開(kāi)展,同時(shí)伊犁地區(qū)天山野果林尚未見(jiàn)防治研究報(bào)道。

    生物防治能有效避免環(huán)境污染和病原物產(chǎn)生抗藥性等問(wèn)題,因此越來(lái)越受到國(guó)內(nèi)外專(zhuān)家學(xué)者的重視。Azmy等[3]發(fā)現(xiàn)哈茨木霉(Trichoderma harzianum)和綠色木霉(T. viride)能有效防止桃、杏和李穿孔病的發(fā)生,但枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis)的防效較低。Karlidag等[8]利用芽孢桿菌OSU-142懸浮液(109 CFU·mL-1)有效防止了杏穿孔病的發(fā)生。目前,國(guó)外生物防治均使用成品菌株制劑,國(guó)內(nèi)尚未見(jiàn)嗜果刀孢菌生物防治的相關(guān)報(bào)道。因此,筆者在本研究中以嗜果刀孢菌YA21為供試菌株,通過(guò)生長(zhǎng)速率法和孢子萌發(fā)法篩選防治殺菌劑,并采用平板對(duì)峙法篩選拮抗細(xì)菌,為嗜果刀孢菌的化學(xué)和生物防治提供理論依據(jù)。

    1 材料和方法

    1.1 供試材料

    供試培養(yǎng)基:馬鈴薯瓊脂糖培養(yǎng)基(potato dextrose agar,PDA)配方為馬鈴薯200 g、葡萄糖20 g、瓊脂糖20 g、蒸餾水1 L;LB液體培養(yǎng)基配方為胰蛋白胨10 g、酵母粉5 g、NaCl 10 g、蒸餾水1 L;LB固體培養(yǎng)基是在LB液體培養(yǎng)基的基礎(chǔ)上添加瓊脂粉18 g。所有培養(yǎng)基均在121 ℃滅菌30 min后使用。

    含藥培養(yǎng)基的制備:將不同殺菌劑按推薦倍數(shù)經(jīng)預(yù)試驗(yàn)調(diào)整后分別稀釋至相應(yīng)的倍數(shù)備用。將配置好的PDA培養(yǎng)基每瓶99 mL分裝在250 mL錐形瓶中,待滅菌完成后冷卻至60 ℃加入配置好的殺菌劑,比例為V藥劑∶V培養(yǎng)基=1∶9,以不加殺菌劑的PDA平板作為對(duì)照,振蕩搖勻后倒入直徑90 mm的培養(yǎng)皿中備用[9]。

    供試菌株:嗜果刀孢菌YA21(GenBank:OQ547194)于野杏芽中分離獲得;所有供試菌株均保存于新疆農(nóng)業(yè)大學(xué)林學(xué)與風(fēng)景園林學(xué)院森林保護(hù)學(xué)實(shí)驗(yàn)室。

    各供試殺菌劑試驗(yàn)稀釋倍數(shù)根據(jù)商品藥劑推薦稀釋倍數(shù)及預(yù)試驗(yàn)結(jié)果調(diào)整為最終試驗(yàn)所用稀釋倍數(shù)。殺菌劑見(jiàn)表1。

    1.2 不同殺菌劑對(duì)嗜果刀孢菌菌絲生長(zhǎng)的抑制作用

    用直徑5 mm滅菌打孔器打取菌餅,將菌餅菌絲一面向下放置于不同殺菌劑不同稀釋倍數(shù)和對(duì)照PDA平板中央,每個(gè)處理3次重復(fù),置于25 ℃恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng),每天觀察其生長(zhǎng)狀況,采用十字交叉法測(cè)量菌落直徑,根據(jù)式(1)計(jì)算菌絲生長(zhǎng)抑制率,采用菌絲生長(zhǎng)速率法[10]對(duì)殺菌劑毒力進(jìn)行評(píng)估。以藥劑稀釋倍數(shù)的自然對(duì)數(shù)值為自變量(x),以抑菌率的概率為因變量(y),利用最小二乘法建立毒力回歸方程(y=ax+b),計(jì)算出各供試殺菌劑的有效中濃度(median effective concentration,EC50),進(jìn)行不同殺菌劑毒力大小的評(píng)估[11]。

    [對(duì)照組菌落直徑-處理組菌落直徑對(duì)照組菌落直徑-菌餅直徑]×100。 (1)

    1.3 不同殺菌劑對(duì)嗜果刀孢菌分生孢子萌發(fā)的抑制作用

    純培養(yǎng)菌落在顯微鏡下觀察到有分生孢子產(chǎn)生后,向產(chǎn)孢平板內(nèi)加入無(wú)菌水,用接種環(huán)在菌落表面輕輕刮取使分生孢子脫落,將分生孢子懸浮液用雙層無(wú)菌紗布過(guò)濾,過(guò)濾后的溶液使用離心機(jī)1000 r·min-1離心5 min,棄上清液,再加入無(wú)菌水配置成107個(gè)·mL-1的孢子懸浮液。將配置好的孢子懸浮液與藥液混勻,比例為V藥液∶V孢子懸浮液=1∶1,25 ℃恒溫保濕培養(yǎng),根據(jù)預(yù)試驗(yàn)結(jié)果14 h后進(jìn)行觀察。采用孢子萌發(fā)法比較嗜果刀孢菌分生孢子對(duì)8種殺菌劑毒力的敏感性。孢子萌發(fā)標(biāo)準(zhǔn)為當(dāng)芽管長(zhǎng)度超過(guò)孢子最大直徑長(zhǎng)度的一半時(shí)即視為萌發(fā)[4]。以加入清水的孢子懸浮液作為對(duì)照,對(duì)照萌發(fā)率超過(guò)90%時(shí),統(tǒng)計(jì)8種殺菌劑不同稀釋倍數(shù)下的孢子萌發(fā)情況,根據(jù)式(2)和式(3),每個(gè)稀釋倍數(shù)檢查200個(gè)孢子,計(jì)算孢子萌發(fā)率和孢子萌發(fā)抑制率。孢子萌發(fā)對(duì)各殺菌劑敏感性毒力回歸方程建立同1.2。

    孢子萌發(fā)率/%=[萌發(fā)孢子數(shù)檢查孢子數(shù)]×100;? ? ? ? ? (2)

    [對(duì)照孢子萌發(fā)率-處理孢子萌發(fā)率對(duì)照孢子萌發(fā)率]×100。

    利用Microsoft Excel 2019和GraphPad Prism 8.0軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)整理、統(tǒng)計(jì)與分析,求出各殺菌劑對(duì)嗜果刀孢菌菌絲和孢子的毒力回歸方程、EC50及相關(guān)系數(shù)。

    1.4 拮抗菌株的分離與純化

    選取具有典型野杏穿孔病癥的葉片,用無(wú)菌水沖洗干凈,無(wú)菌濾紙濾干水分。取病健交界部位切成5 mm的小塊,用3%次氯酸鈉溶液浸泡30 s,用無(wú)菌鑷子放置于LB固體培養(yǎng)基表面,每皿放置5塊,28 ℃恒溫培養(yǎng)箱中黑暗培養(yǎng)7 d。將采集的土壤樣品通過(guò)稀釋涂布法分離,取10 g土樣倒入150 mL的錐形瓶中,加無(wú)菌水至100 mL,充分振蕩,即制成10-3、10-5、和10-7的懸浮液,用移液槍吸取200 μL的上清液置于含有0.05 g·L-1鹽酸四環(huán)素的PDA培養(yǎng)基上,用無(wú)菌玻璃棒涂抹均勻,設(shè)置3次重復(fù),放于28 ℃恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng),待有明顯菌落出現(xiàn)后立即進(jìn)行純化。待病原菌落長(zhǎng)出后,將其周?chē)L(zhǎng)的單菌落劃線轉(zhuǎn)接至新的LB培養(yǎng)基中,轉(zhuǎn)接2~3次直至獲得純化的單菌落,再將純化的單菌落轉(zhuǎn)接到LB液體培養(yǎng)基中28 ℃、150 r·min-1振蕩培養(yǎng)24 h,-20 ℃冰箱中保藏備用。

    1.5 拮抗菌株對(duì)嗜果刀孢菌的抑制效果

    采用平板對(duì)峙法[12]測(cè)定拮抗菌株對(duì)嗜果刀孢菌的抑制效果。用直徑5 mm的打孔器在活化培養(yǎng)5 d的菌落邊緣取菌餅置于PDA平板中央。挑取單菌落細(xì)菌菌株在菌餅兩側(cè)劃線接種菌株,以只接種菌餅的平板為對(duì)照,每個(gè)處理3次重復(fù),放入恒溫培養(yǎng)箱25 ℃培養(yǎng),待對(duì)照菌落生長(zhǎng)至滿皿或停止生長(zhǎng)后,測(cè)量菌落直徑,依據(jù)式(4)計(jì)算抑制率。

    [對(duì)照組菌落直徑-處理組菌落直徑對(duì)照組菌落直徑]×100。

    1.6 拮抗菌株的鑒定

    1.6.1 拮抗菌株的培養(yǎng)特征觀察及生理生化特性測(cè)定 挑取純化后的單菌落劃線轉(zhuǎn)接至新的LB固體培養(yǎng)基表面,28 ℃黑暗培養(yǎng)3 d后觀察,記錄單菌落的大小、顏色、透明度和表面質(zhì)地等形態(tài)學(xué)特征[13],同時(shí)進(jìn)行革蘭氏染色,測(cè)定拮抗菌株的生理生化特性。

    1.6.2 拮抗菌株分子生物學(xué)鑒定 用Ezup柱式細(xì)菌基因組DNA抽提試劑盒提取拮抗菌株的DNA,采用細(xì)菌通用引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,引物序列為:27F(5-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3)和1492R(5-TACCTTGTTACGACTT -3),引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。PCR擴(kuò)增反應(yīng)總體系25 ?L:2×Taq PCR Master Mix 12.5 ?L,上下游引物各0.5 μL,模板DNA 1 ?L、ddH2O補(bǔ)充至25 μL。PCR擴(kuò)增條件為:95 ℃預(yù)變性5 min;94 ℃變性30 s,57 ℃退火30 s,72 ℃延伸90 s,30個(gè)循環(huán);72 ℃延伸10 min。PCR產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳(150 V,20 min)檢測(cè)后,凝膠成像系統(tǒng)分析結(jié)果。切割PCR產(chǎn)物電泳條帶所需DNA目的條帶,使用SanPrep柱式DNA膠回收試劑盒回收DNA片段。

    將回收成功的PCR產(chǎn)物送至生工生物工程(上海)股份有限公司進(jìn)行測(cè)序,在NCBI網(wǎng)站(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/)進(jìn)行BLAST同源序列比對(duì)[14],選取同源性較高的已知菌株序列,利用MEGA 6.0軟件進(jìn)行序列分析,采用Neighbor-jioning法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù),確定菌株的分類(lèi)地位。

    1.7 拮抗菌株對(duì)不同病原菌的抑菌效果測(cè)定

    方法同1.4。供試菌株見(jiàn)表2。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 不同殺菌劑對(duì)嗜果刀孢菌菌絲生長(zhǎng)的毒力測(cè)定結(jié)果

    8種殺菌劑對(duì)嗜果刀孢菌的菌落生長(zhǎng)均表現(xiàn)出抑制作用,但不同的殺菌劑抑菌效果有著明顯的差異。由表3可知,50%多菌靈各稀釋倍數(shù)梯度藥液對(duì)菌絲生長(zhǎng)均有強(qiáng)抑制作用,嗜果刀孢菌菌絲均未生長(zhǎng),在抑菌試驗(yàn)結(jié)束后將含50%多菌靈培養(yǎng)基上的菌餅回接至正常培養(yǎng)基,菌絲恢復(fù)生長(zhǎng);722 g·L-1霜霉威鹽酸鹽和36%喹啉·戊唑醇對(duì)嗜果刀孢菌菌絲的生長(zhǎng)抑制作用較強(qiáng),EC50分別為0.322 5和0.329 8 mg·L-1;27%戊唑·噻霉酮、20%吡唑·嘧菌酯和80%代森錳鋅的抑制作用次之,EC50分別為10.66、37.18和41.81 mg·L-1;40%?!じd\的抑制作用較弱,EC50為114.5 mg·L-1;75%百菌清的抑制效果最差,EC50為918.8 mg·L-1。

    2.2 不同殺菌劑對(duì)嗜果刀孢菌分生孢子萌發(fā)的毒力測(cè)定結(jié)果

    嗜果刀孢菌分生孢子在25 ℃保濕培養(yǎng)14 h后,對(duì)照的萌發(fā)率為97%。8種殺菌劑對(duì)嗜果刀孢菌分生孢子的萌發(fā)都有一定的抑制作用。8種殺菌劑中27%戊唑·噻霉酮和722 g·L-1霜霉威鹽酸鹽的抑制效果最好,EC50分別為0.060 5和0.164 0 mg·L-1;其次是80%代森錳鋅,EC50為2.352 mg·L-1;20%吡唑·嘧菌酯和36%喹啉·戊唑醇的抑制效果較弱,EC50分別為34.41和58.50 mg·L-1;40%?!じd\和50%多菌靈的抑制效果相對(duì)前5種殺菌劑較差,EC50分別為162.6和223.2 mg·L-1;75%百菌清的抑制效果最差,EC50為1103 mg·L-1(表4)。

    2.3 拮抗菌株XHG-1-3m2的種類(lèi)鑒定

    2.3.1 拮抗菌株XHG-1-3m2的培養(yǎng)特征與生理生化特性 菌株XHG-1-3m2在LB固體培養(yǎng)基表面28 ℃黑暗培養(yǎng)3 d后,培養(yǎng)特征如圖1所示。該菌為桿狀、單菌落圓形、邊緣不整齊,前期乳白色,后期顏色逐漸加深、不透明、微隆起,表面不光滑,鑒定為革蘭氏染色陽(yáng)性。

    2.3.2 拮抗菌株XHG-1-3m2的生理生化特性測(cè)定 菌株XHG-1-3m2乙酰甲基甲醇試驗(yàn)和硝酸還原反應(yīng)均為陽(yáng)性(表5),好氧,能使明膠液化,可以水解淀粉等,符合萎縮芽孢桿菌的生理生化特征。

    2.3.3 拮抗菌株XHG-1-3m2的分子生物學(xué)鑒定 菌株XHG-1-3m2的16S rDNA擴(kuò)增序列片段長(zhǎng)度為1487 bp,GenBank登錄號(hào)為OQ438428。菌株XHG-1-3m2在NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)BLAST結(jié)果與Bacillus atrophaeus序列相似度達(dá)到100%,采用鄰接法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)(圖2),菌株XHG-1-3m2與B. atrophaeus聚為同一支,綜合培養(yǎng)特征學(xué)及分子生物學(xué)分析確定菌株XHG-1-3m2為萎縮芽孢桿菌(B. atrophaeus)。

    2.4 拮抗菌株XHG-1-3m2對(duì)嗜果刀孢菌菌絲生長(zhǎng)的影響

    采用平板對(duì)峙法測(cè)定拮抗菌株XHG-1-3m2對(duì)嗜果刀孢菌的抑制效果達(dá)88.88%(圖3)。嗜果刀孢菌在受到菌株XHG-1-3m2的抑制后菌落前沿顏色加深;挑取菌絲在顯微鏡下觀察,發(fā)現(xiàn)該菌菌絲畸形,節(jié)間縮短,末端相比正常菌絲膨大,粗細(xì)不均勻或產(chǎn)生多個(gè)分支或細(xì)胞質(zhì)外滲的現(xiàn)象,影響了菌絲的正常生長(zhǎng)。

    2.5 拮抗菌株XHG-1-3m2對(duì)不同病原菌的抑菌測(cè)定結(jié)果

    通過(guò)采用平板對(duì)峙法將菌株XHG-1-3m2劃線接種培養(yǎng),發(fā)現(xiàn)菌株XHG-1-3m2對(duì)17種病原菌都有抑制效果(表6,圖4),其中對(duì)M. laxa(R1~R2)有明顯的抑制效果,抑制率為89.41%,對(duì)病菌D. aliena(M1~M2)、A. pullulans(G1~G2)、A. nigripycnidia(Q1~Q2)、C. ulmi(N1~N2)、P. herbarum(L1~L2)、C. pruinopsis(D1~D2)、D. maydis(P1~P2)的抑制率為60%~70%;對(duì)D. glomerata(J1~J2)、N. dematiosa(K1~K2)、N. quercina(O1~O2)、C. elatum(H1~H2)、N. nigrescens(F1~F2)、P. avenaria(A1~A2)、C. donetzica(C1~C2)、D. omnivora(B1~B2)、D. sarmentorum(I1~I(xiàn)2)的抑制率為50%~60%;對(duì)病菌N. gorlenkoana(E1~E2)無(wú)明顯的抑制效果。

    3 討 論

    嗜果刀孢菌先后在2019年和2020年被程元等[15]和葉雙華[16]證實(shí)在伊犁哈薩克族自治州野果林主要分布的縣域大量存在,并明確了真菌性穿孔病在野果林中的危害。目前,嗜果刀孢菌防治均在平原地區(qū)開(kāi)展,缺乏山區(qū)防治的研究報(bào)道,且關(guān)于新疆地區(qū)由嗜果刀孢菌引起的真菌性穿孔病的防治研究也尚未見(jiàn)相關(guān)報(bào)道。筆者在本研究中采用菌絲生長(zhǎng)速率法和孢子萌發(fā)抑制法研究了多菌靈、霜霉威、喹啉·戊唑醇、戊唑·噻霉酮、吡唑·醚菌酯、代森錳鋅、?!じd\和百菌清8種殺菌劑室內(nèi)對(duì)嗜果刀孢菌菌絲生長(zhǎng)及孢子萌發(fā)的毒力,結(jié)果表明,供試的8種殺菌劑均具有一定的抑菌作用,其中多菌靈對(duì)菌絲生長(zhǎng)抑制作用最強(qiáng),在試驗(yàn)中將殺菌劑稀釋倍數(shù)由500~2500倍液調(diào)整至2000~6000倍液,所接菌餅菌絲均未生長(zhǎng),在培養(yǎng)25 d后將菌餅回接至正常PDA培養(yǎng)基后菌絲恢復(fù)生長(zhǎng),表明該殺菌劑對(duì)嗜果刀孢菌菌絲生長(zhǎng)具有強(qiáng)烈的抑制作用。Azmya等[3]2007—2008年在杏樹(shù)上噴施多菌靈防治杏穿孔病,結(jié)果顯示50%多菌靈500倍液噴施后能完全抑制穿孔病的發(fā)生,1000和2000倍液噴施后發(fā)病率為30%~40%。此外,在春季樹(shù)體發(fā)芽前噴施4~5°Bé石硫合劑、在生長(zhǎng)季噴施代森鋅等對(duì)穿孔病的防治也能起到不錯(cuò)的效果[5-6]。本研究中722 g·L-1霜霉威鹽酸鹽具有內(nèi)吸、保護(hù)作用且兼具低毒、高效等特性,對(duì)菌絲生長(zhǎng)和孢子萌發(fā)均具有較強(qiáng)的抑制作用。36%喹啉·戊唑醇對(duì)菌絲抑制效果較強(qiáng),27%戊唑·噻霉酮對(duì)孢子抑制效果較強(qiáng),這2種復(fù)配殺菌劑的室內(nèi)抑菌效果較好,其有效成分多為三唑類(lèi)殺菌劑,具有促進(jìn)植物生長(zhǎng)的作用,被廣泛應(yīng)用于多種真菌病害防治。因此,在防治真菌性穿孔病的過(guò)程中,將這3種殺菌劑輪換使用,可以在提高防效的同時(shí)延緩病原菌抗藥性的產(chǎn)生。

    筆者在本研究中首次從田間發(fā)病的野杏植株上分離到能夠?qū)κ裙舵呔哂幸种菩Ч霓卓辜?xì)菌萎縮芽孢桿菌B. atrophaeus,且該菌對(duì)其他多種病原真菌均具有不錯(cuò)的抑制效果。芽孢桿菌屬是一類(lèi)好氧或兼性厭氧的革蘭氏陽(yáng)性菌,該屬細(xì)菌的重要特性是能夠產(chǎn)生芽孢抵抗各種不利條件和環(huán)境[17]?;瘜W(xué)藥劑防治是目前控制植物病害大面積發(fā)生的主要手段,但化學(xué)藥劑的長(zhǎng)期使用對(duì)自然環(huán)境的破壞難以恢復(fù)且存在病原菌出現(xiàn)耐藥性等潛在問(wèn)題。生防菌的研究和應(yīng)用逐漸被研究者重視起來(lái),芽孢桿菌屬的枯草芽孢桿菌B. subtilis、解淀粉芽孢桿菌B. amyloliquefaciens、萎縮芽孢桿菌B. atrophaeus和貝萊斯芽孢桿菌B. velezensis都是應(yīng)用廣泛的拮抗細(xì)菌。

    朱杰等[12]利用平板稀釋法從枸杞根際土壤中篩選鑒定出的菌株QH-588為B. atrophaeus,該菌株不僅能夠明顯抑制櫻桃葉斑病菌的菌絲生長(zhǎng),還能夠抑制櫻桃葉斑病菌的孢子萌發(fā)。與該結(jié)果不同,本研究中嗜果刀孢菌在接種菌株XHG-1-3m2后于后續(xù)的試驗(yàn)觀察中發(fā)現(xiàn)病原菌未能產(chǎn)孢,這表明B. atrophaeus對(duì)嗜果刀孢菌的防效可能會(huì)更好。劉欣等[18]從土樣中分離鑒定出對(duì)蘋(píng)果樹(shù)腐爛病具有良好拮抗效果的菌株DM3-18為B. atrophaeus。王璐[19]在研究中發(fā)現(xiàn)B. atrophaeus CP 297對(duì)黃曲霉也有明顯的抑制效果。付莉媛[20]從草莓根際土壤等樣品中分離篩選出4株芽孢桿菌對(duì)草莓根腐病菌具有良好的拮抗作用,經(jīng)鑒定為B. velezensis和B. subtilis。敖靜等[21]篩選出對(duì)黃瓜枯萎病具有較強(qiáng)抑制作用的B. amyloliquefaciens菌株XN-3。郝芳敏等[22]從甜瓜根部分離得到對(duì)甜瓜多種真菌病害病原菌均有抑制作用的多黏類(lèi)芽孢桿菌NBmelon-1,該菌對(duì)甜瓜幼苗的生長(zhǎng)還具有促進(jìn)作用。李娜等[23]從黃瓜根萎病根際土分離得到在黃瓜苗期對(duì)尖孢鐮刀菌(Fuasrium oxypsorum)有較好防治效果的弗雷德里克斯堡假單胞菌33-1(Pseudomonas frederiksbergensisi)。

    萎縮芽孢桿菌對(duì)多種病原真菌的抑制效果都比較明顯,具有抑菌廣譜性。此外,4種生防細(xì)菌對(duì)病原菌抑制機(jī)制相似,都是通過(guò)影響病原菌菌絲正常生長(zhǎng)導(dǎo)致畸形和抑制產(chǎn)孢或孢子萌發(fā)的方式達(dá)到抑菌效果。芽孢桿菌的抑菌機(jī)制多樣,能夠產(chǎn)生抗菌物質(zhì)如抗生素、細(xì)菌素、酶類(lèi)或其他抗菌蛋白等,通過(guò)不同的途徑抑制甚至殺死病原菌,也能夠通過(guò)產(chǎn)生促進(jìn)植株生長(zhǎng)的物質(zhì)如合成植物激素、固氮等方式增強(qiáng)植物的生長(zhǎng)能力,提高抗病性,從而達(dá)到防治或減少病害發(fā)生的效果[19, 24]。筆者在本研究中篩選出了嗜果刀孢菌的拮抗菌株XHG-1-3m2,對(duì)抑菌機(jī)制進(jìn)行了初步探索,但對(duì)于其抑菌物質(zhì)的種類(lèi)、含量及具體抑菌機(jī)制尚不明確,有待進(jìn)一步探索和研究。

    4 結(jié) 論

    筆者在本研究中所選用的8種殺菌劑對(duì)嗜果刀孢菌的菌絲生長(zhǎng)和孢子萌發(fā)都有一定的抑制作用。50%多菌靈對(duì)嗜果刀孢菌菌絲生長(zhǎng)抑制作用較強(qiáng);27%戊唑·噻霉酮對(duì)嗜果刀孢菌分生孢子萌發(fā)抑制效果較強(qiáng)。筆者在本研究中首次從野杏發(fā)病葉片上分離篩選出對(duì)嗜果刀孢菌具有良好抑制效果的拮抗菌株XHG-1-3m2,綜合培養(yǎng)特征和16s rDNA序列分析確定菌株XHG-1-3m2為萎縮芽孢桿菌(B. atrophaeus)。

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    收稿日期:2023-05-24 接受日期:2023-06-19

    基金項(xiàng)目:新疆維吾爾自治區(qū)杰出自然科學(xué)基金項(xiàng)目(2022D01E47);新疆農(nóng)業(yè)大學(xué)大學(xué)生創(chuàng)新項(xiàng)目(dxscx2023156,dxscx2023175);第三次新疆綜合科學(xué)考察專(zhuān)項(xiàng)(2021xjkk05005-3)

    作者簡(jiǎn)介:陳帥康,男,在讀碩士研究生,研究方向?yàn)樾陆帜静『Φ脑\斷。Tel:15719993537,E-mail:1627033151@qq.com

    通信作者Author for correspondence. Tel:0991-8762361,E-mail:xjaumr@sina.com

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