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    撒壩豬TEPP 基因多態(tài)性與產(chǎn)仔數(shù)關(guān)系研究

    2023-10-13 01:02:42趙培文付生娣
    云南農(nóng)業(yè) 2023年9期

    趙培文,付生娣

    (保山市動物衛(wèi)生監(jiān)督所,云南 保山 678000)

    1 TEPP 基因研究

    1.1 研究背景

    生豬作為畜牧業(yè)支柱產(chǎn)業(yè),是保障人們?nèi)忸愂称返闹饕獊碓?。隨著科學(xué)選育的推進(jìn),在生長速度、飼料報酬和瘦肉率方面的選育進(jìn)展很快,而在繁殖性狀方面進(jìn)展很慢[1]。根據(jù)平均飼養(yǎng)水平,母豬每胎產(chǎn)仔數(shù)提高1頭,最低可增收100元左右,在遺傳上改良繁殖性狀有利于提高經(jīng)濟(jì)價值,因而提高豬的繁殖力愈來愈受到重視[2]。目前多采用數(shù)量遺傳學(xué)方法,通過選擇和雜交從遺傳上達(dá)到改良群體的目的。豬產(chǎn)仔數(shù)遺傳力低,常規(guī)育種對產(chǎn)仔數(shù)性狀的改變非常有限,所以尋找控制豬繁殖率的主效基因及其遺傳標(biāo)記對提高豬產(chǎn)仔數(shù)具有重要意義[3]。借助分子標(biāo)記改變繁殖性狀,從而加速遺傳研究進(jìn)展。只要能發(fā)現(xiàn)影響重要繁殖性狀候選基因的分子標(biāo)記,便可通過輔助育種有效提高豬繁殖能力。

    1.2 TEPP基因研究進(jìn)展

    TEPP是表達(dá)動物生殖器官如睪丸、前列腺、胎盤的一種基因,在睪丸中表達(dá)水平最高,可能對動物生殖過程起著重要的作用[4]。由于TEPP基因在動物體內(nèi)的表達(dá)特性,推斷可能對動物生殖過程有重要作用,可作為繁殖相關(guān)候選基因進(jìn)行研究。

    1.3 撒壩豬

    是云南省的地方特色優(yōu)良品種,是云南省保護(hù)及開發(fā)利用較為系統(tǒng)、完整的地方豬種資源之一。撒壩豬分布面較廣、養(yǎng)殖數(shù)量多、環(huán)境適應(yīng)性強(qiáng),而且肉質(zhì)優(yōu)良、繁殖性能好,是生產(chǎn)雜種商品肉豬的優(yōu)良母本[5]。撒壩豬按體型大小、頭式、外貌特征及成熟早晚等分為大、中、小3種類群,其中大型稱為“八卦頭”,小型稱為“狗頭”或“油葫蘆”豬,中型稱為“羊頭”或“二虎頭”,被毛大多以黑毛為主,也有火毛等。經(jīng)過純繁選育的新品系撒壩豬,初產(chǎn)達(dá)8.72頭,經(jīng)產(chǎn)仔數(shù)11.84頭,7對乳頭的仔豬占總產(chǎn)仔數(shù)的37.2%。

    本實驗?zāi)康脑谟诶矛F(xiàn)代分子生物學(xué)技術(shù)研究撒壩豬TEPP基因SNP位點,統(tǒng)計其在撒壩豬群中的等位基因頻率和基因型頻率,并分析SNP位點多態(tài)性與豬產(chǎn)仔數(shù)的關(guān)系,為提高豬繁殖性能提供理論基礎(chǔ),以期為豬遺傳育種提供指導(dǎo)。

    2 材料與方法

    2.1 實驗材料

    實驗豬耳尖部分經(jīng)乙醇消毒后夾取小塊耳組織,分別放入已滅菌的1.5 mL Eppendorf管中,加入75%乙醇,置于-20 ℃環(huán)境儲存?zhèn)溆?。記錄實驗撒壩母豬的總產(chǎn)仔數(shù)和產(chǎn)活仔數(shù)等指標(biāo)數(shù)據(jù)(見表1)。

    表1 樣本數(shù)量和來源表

    2.2 實驗方法

    2.2.1 常規(guī)酚-氯仿抽提法提取DNA

    ①取約10 mg耳組織置于1.5 mL的離心管中,用眼科手術(shù)剪剪碎,置于37 ℃恒溫烘箱中待乙醇揮發(fā)30 min→ ②向耳組織樣品中加入650 μL的DNA組織提取液和25 μL蛋白酶K(10 mg/mL)溶液,顛倒混勻后置于55~56 ℃的水浴鍋中消化6~9 h(最好放置過夜)。最初1 h輕輕顛倒幾次,待消化好時,可見離心管內(nèi)的液體清亮、均勻,且不見組織塊狀物→ ③向消化好的組織樣中加入等體積的Tris飽和酚,輕輕混勻10 min,用高速臺式離心機(jī)(12 000 r/min,以下同)離心10 min,吸取上清液600 μL置于另一干凈的1.5 mL離心管內(nèi),注意盡量避免吸取白膜樣物質(zhì)→ ④向吸取的上清液中加入等體積的25∶24∶1的酚∶氯仿∶異戊醇,輕輕混勻10 min,離心10 min,吸取上清液約500 μL置于另一干凈的1.5 mL 離心管內(nèi)→ ⑤向吸取的上清液中加入等體積(500 μL)的24∶1的氯仿∶異戊醇,輕輕混勻10 min,心10 min,吸取上清液約400 μL。重復(fù)該步驟1次→ ⑥向吸取的上清液中加入2倍體積(600~700 μL)的無水乙醇,輕輕顛倒幾次,可見白色DNA團(tuán)出現(xiàn),在-20 ℃環(huán)境下靜置4 h以上。再離心1~2 min后,小心倒掉無水乙醇,保留DNA團(tuán)→ ⑦加入70%的乙醇1 000 μL清洗DNA團(tuán)2次,輕輕顛倒幾次,小心倒去乙醇,清洗完畢倒置離心管,自然恢復(fù)2 h→ ⑧加入TE緩沖液約100 μL溶解DNA團(tuán),37℃助溶過夜,68 ℃水浴15~30 min滅活后,瞬時離心,于-20 ℃長期貯存?zhèn)溆谩?/p>

    2.2.2 全基因組DNA的檢測過程

    ① 制備1%瓊脂糖凝膠→ ② 吸取2 μL的DNA原液,與3 μL雙蒸水混合稀釋,加入1 μL上樣緩沖液。80 V穩(wěn)壓電泳20 min→ ③電泳完畢,置于紫外透射儀下觀測DNA亮度及是否存在降解情況→ ④將DNA原液稀釋1 000倍,加入比色皿中,置于檢測孔→ ⑤檢測DNA樣品的值及濃度,并換算為原液濃度→ ⑥依原液濃度酌量加入TE稀釋至50 ng/μL,標(biāo)明記錄→ ⑦DNA原液于-20 ℃環(huán)境長期凍藏,稀釋液可儲存于4 ℃環(huán)境下待用。

    2.2.3 PCR反應(yīng)和酶切反應(yīng)的反應(yīng)體系及條件

    (1)PCR引物的設(shè)計與合成。利用GenBank公共數(shù)據(jù)庫下載豬TEPP基因序列;利用Primer Premier 5.0 和 Oligo 7.0 軟件為豬TEPP基因SNP位點設(shè)計引物;引物序列為F:5-CGGGTCCCTGACTCCCTT-3和R:5-GTAGACCGACCCCTCTTG-3;目的片段長度為214 bp。

    (2)PCR反應(yīng)的反應(yīng)體系及反應(yīng)條件。PCR反應(yīng)體系,PCR擴(kuò)增采用2×Taq PCR MasterMix 試劑,25 μL反應(yīng)體系(見表2)。PCR反應(yīng)條件(見表3)。

    表2 PCR反應(yīng)體系表

    表3 PCR反應(yīng)條件表

    (3)PCR產(chǎn)物的檢測。制備2%瓊脂糖凝膠,取10 μL的PCR產(chǎn)物上樣,其中一孔點入5 μL的DNAmarker2000作為對照。穩(wěn)壓120 V電泳40 min,待目的條帶完全分開,于凝膠成像系統(tǒng)上觀察結(jié)果并記錄。

    (4)PCR產(chǎn)物的回收純化。①實驗前準(zhǔn)備,在Buffer W2中加入指定體積的無水乙醇,準(zhǔn)備高壓滅菌的Tips頭、離心管,水浴鍋水溫調(diào)節(jié)至70 ℃,待其升溫→ ②在紫外燈下迅速切取含有目的DNA的瓊脂糖凝膠,用紙巾吸盡凝膠表面液體。將含有目的片段的凝膠切碎后裝入已稱重的1.5 mL離心管中,再稱量。按照1 mg = 1 μL體積進(jìn)行換算→ ③加入3個凝膠體積的Buffer DE-A,混合均勻后于70 ℃加熱,期間間斷混合,直至凝膠塊完全熔化為止→④加入0.5個Buffer DE-A體積的Buffer DE-B,混合均勻→ ⑤吸取步驟③中的混合液,將其轉(zhuǎn)移至含有吸附柱的制備管中,離心1 min,棄濾液→ ⑥將制備管置回離心管中,加入500 μL的Buffer W1,再離心1 min,棄濾液→ ⑦將制備管置回離心管中,加入700 μL的 Buffer W2,再離心1 min,棄濾液。重復(fù)該步驟→ ⑧將制備管置回離心管中,再離心1 min→ ⑨將制備管置于1.5 mL離心管中,在DNA制備膜中央加入Eluent 30 μL,室溫靜置1 min,再離心1 min洗脫DNA→ ⑩將回收純化的目的片段存放于-20℃環(huán)境下備用。

    2.2.4 酶切反應(yīng)的反應(yīng)條件

    酶切反應(yīng)體系為15 μL,其中8 μL的為PCR擴(kuò)增膠回收產(chǎn)物,酶切反應(yīng)Buffer終濃度為1.5×,HpaⅡ內(nèi)切酶終濃度為5 U,加dd H2O補(bǔ)足至15 μL,37 ℃恒溫水浴4 h。

    2.2.5 酶切反應(yīng)的檢測

    制備3%瓊脂糖凝膠,待冷卻凝固后小心放入電泳槽中,電泳緩沖液(TAE)沒過膠面1 mm深,預(yù)電泳20~30 min,使瓊脂糖凝膠內(nèi)部結(jié)構(gòu)均勻,上樣量10 μL,同時一孔加入 DNA Marker(DL 2000)作為分子量對照。120 V電泳使樣品跑出點樣孔,之后50~60 V下電泳3~4 h至條帶完全分開。在紫外燈下觀察結(jié)果,并在凝膠成像分析系統(tǒng)上照相保存。

    2.2.6 TEPP基因型命名

    TEPP基因PCR擴(kuò)增后所有實驗樣品均只有1條214 bp的條帶,經(jīng)HpaⅡ內(nèi)切酶酶切后,呈現(xiàn)多態(tài)性,根據(jù)酶切條帶差異可將其分為3種基因型:若只出現(xiàn)214 bp單條帶即可判定為AA基因型;若出現(xiàn)214 bp、168 bp和46 bp條帶可判定為AB基因型;若出現(xiàn)168 bp和46 bp條帶可判定為BB基因型。

    2.2.7 數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析

    (1)基因頻率和基因型頻率的計算?;蝾l率是指一個群體中某一基因與其等位基因的相對比率。PA為A等位基因的頻率,PB為B等位基因的頻率,AA為AA基因型個體數(shù),AB為AB基因型個體數(shù),N為總?cè)后w數(shù)其計算如下:

    PA= (2×AA+AB)/(2×N);PB=1-PA;

    基因型頻率=基因型個體數(shù)/N

    (2)數(shù)據(jù)統(tǒng)計模型。根據(jù)影響豬繁殖性能的因素,用SAS(9.0版本)的GLM過程,配合下列模型進(jìn)行最小二乘方差分析,比較各個豬種的總產(chǎn)仔數(shù)(TNB)、產(chǎn)活仔數(shù)(NBA)和在各基因型之間的差異:

    Y = 均數(shù)+基因型效應(yīng)+胎次效應(yīng)+季節(jié)效應(yīng)+殘差效應(yīng)

    3 結(jié)果與分析

    3.1 全基因組DNA提取結(jié)果(圖1)

    圖1 部分撒壩豬耳組織DNA凝膠電泳圖

    從實驗豬耳組織中提取的DNA,經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測,DNA條帶清晰明亮,沒有拖帶,整齊,符合PCR擴(kuò)增實驗要求。

    3.2 基因多態(tài)性檢測結(jié)果

    3.2.1 撒壩豬TEPP基因PCR擴(kuò)增結(jié)果(圖2)

    圖2 部分撒壩豬TEPP基因PCR擴(kuò)增結(jié)果圖

    TEPP基因PCR擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)2%瓊脂糖凝膠電泳檢測結(jié)果,PCR擴(kuò)增產(chǎn)物條帶大小為214 bp,條帶清晰、整齊、無雜帶,符合所要擴(kuò)增的目的基因片段大小,可進(jìn)行后續(xù)的酶切實驗。

    3.2.2 撒壩豬TEPP基因PCR-RFLP反應(yīng)結(jié)果(圖3)

    圖3 部分撒壩豬TEPP基因PCR-RFLP結(jié)果

    TEPP基因PCR-RFLP反應(yīng)產(chǎn)物經(jīng)3%瓊脂糖凝膠電泳檢測,呈現(xiàn)多態(tài)性,根據(jù)酶切條帶差異,可將其分為3種基因型,即只有214 bp條帶的是AA基因型,同時具有214 bp、168 bp和46 bp條帶的是AB基因型,有168 bp、46 bp條帶的是BB基因型。

    3.3 TEPP基因頻率和等位基因頻率(表4)

    表4 撒壩豬TEPP基因的基因型頻率和等位基因頻率表

    對撒壩豬TEPP基因用HpaⅡ酶切檢測結(jié)果進(jìn)行基因型頻率和基因頻率統(tǒng)計分析。AB為優(yōu)勢基因型,基因型頻率0.431,基因型頻率為AB>AA>BB。撒壩豬的優(yōu)勢等位基因為A,等位基因頻率為0.549。

    3.4 TEPP基因不同基因型與產(chǎn)仔數(shù)的關(guān)系

    3.4.1 基因型與初產(chǎn)仔數(shù)的關(guān)系(表5)

    表5 撒壩豬不同基因型與初產(chǎn)仔數(shù)關(guān)系表

    總產(chǎn)仔數(shù)中,BB型總產(chǎn)仔數(shù)最高,BB型>AB型>AA型,BB型比AB型和AA型分別多2.14頭和2.83頭,AA型和BB型差異極顯著,AB型與BB型差異顯著;產(chǎn)活仔數(shù)中,BB型產(chǎn)活仔數(shù)最高,BB型>AB型>AA型,BB型比AB型和AA型分別多1.66頭和1.83頭,AA型、AB型和BB型之間差異不顯著。

    3.4.2 不同基因型與經(jīng)產(chǎn)仔數(shù)的關(guān)系(表6)

    總產(chǎn)仔數(shù)為BB型>AA型>AB型,產(chǎn)活仔數(shù)為AA型>BB型>AB型,總產(chǎn)仔數(shù)和產(chǎn)活仔數(shù)的AA型、AB型和BB型3個基因型之間差異均不顯著。

    4 討論與結(jié)論

    4.1 結(jié) 論

    本研究發(fā)現(xiàn),撒壩豬的優(yōu)勢基因型為AB型,基因型頻率為0.431,撒壩豬優(yōu)勢等位基因為A,等位基因頻率為0.549。撒壩豬TEPP基因在初產(chǎn)母豬中高產(chǎn)基因型為BB型,其總產(chǎn)仔數(shù)趨勢為BB型>AB型>AA型,BB型比AA型和AB型多2.14頭和2.83頭,經(jīng)產(chǎn)母豬中沒表現(xiàn)出高產(chǎn)基因型。

    4.2 討 論

    通過對撒壩豬TEPP基因的優(yōu)勢基因型和優(yōu)勢等位基因的研究,對撒壩豬TEPP基因不同基因型與初產(chǎn)和經(jīng)產(chǎn)仔數(shù)的關(guān)系的研究得出TEPP基因的SNP位點與豬總產(chǎn)仔數(shù)、產(chǎn)活仔數(shù)2個性狀存在相關(guān)性,但能否作為分子標(biāo)記對豬多產(chǎn)性開展標(biāo)記輔助選擇工作,有待進(jìn)一步研究。

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