余希文 王亞琪 趙志鑫 傅蒙蒙 李曙光 楊加銀 徐海風
摘 ? ?要:種子大小是大豆產(chǎn)量構(gòu)成因素之一,同時對大豆商品性有重要影響。文章按照研究方法對近年來大豆種子大小遺傳研究進行了歸納總結(jié),簡單概述了植物種子大小調(diào)控網(wǎng)絡(luò),通過對比大豆和其他植物中種子大小相關(guān)研究的差異,探討大豆種子大小遺傳研究和育種中存在的不足及可行的解決辦法,并展望了后續(xù)研究。
關(guān)鍵詞:大豆;種子大小;遺傳研究;基因
文章編號:1005-2690(2023)14-0007-05 ? ? ? 中國圖書分類號:S565.1 ? ? ? 文獻標志碼:A
種子大小是作物馴化的一個主要農(nóng)藝性狀,也是產(chǎn)量構(gòu)成因素之一。種子大小形成機制的研究是種子生物學的一大熱點,其遺傳調(diào)控網(wǎng)絡(luò)研究主要在擬南芥和水稻中進展顯著[1]。種子大小影響大豆種子產(chǎn)量,還影響大豆的商品性。在消費市場,大粒大豆更受消費者的歡迎。文章概述了種子大小在不同物種中的研究現(xiàn)狀,按照研究方法分類詳解了大豆種子大小相關(guān)研究,通過對比其他植物中的研究進展,總結(jié)其存在的不足,并探討了可行的解決方法,以期為大豆種子大小相關(guān)研究提供思路。
1 植物種子大小調(diào)控路徑
植物種子大小受多種因素調(diào)控,現(xiàn)有研究表明,泛素蛋白酶體途徑、G蛋白途徑、絲裂原活化蛋白激酶途徑、植物激素以及多種轉(zhuǎn)錄因子都參與了植物種子大小的調(diào)控[2]。
泛素蛋白酶體途徑是指蛋白質(zhì)通過與E1泛素受體和E2泛素結(jié)合酶連接,然后與E3泛素連接酶結(jié)合而泛素化,最終泛素化的蛋白質(zhì)會被26S蛋白酶體降解為短肽或者氨基酸的過程。該途徑中多個基因參與了種子大小的調(diào)控,如DA1、DA2、EOD1等,擬南芥中相關(guān)研究揭示了這一過程。泛素受體DA1負調(diào)控擬南芥種子大小,DA2和DA1相互作用,增強其與底物結(jié)合的特異性,繼而選擇性降解下游底物,共同調(diào)節(jié)種皮細胞增殖的過程,限制種子的生長。EOD1(DA1增強因子)也能與DA1互作而增強其表達,負調(diào)控種子生長。這一途徑受親代基因型控制,具有母體效應(yīng)[3-4]。
G蛋白參與多種生命活動過程,G蛋白由3個亞基Gα、Gβ、Gγ組成,非活性狀態(tài)為3個亞基聚合而成的三聚體結(jié)構(gòu),感受到上游信號之后,G蛋白會與受體GPCR相互作用而被磷酸化,磷酸化的α亞基會與βγ二聚體分離,使得兩者都被活化,從而將上游信號傳遞下去[5]。水稻Gα突變體對赤霉素的敏感性降低,植株矮小,種子變短變小,表現(xiàn)為小而圓的種子。Gβ和Gγ正向調(diào)控種皮細胞增殖從而促進種子生長[6-7]。
植物激素途徑是一種重要的種子大小調(diào)控方式。參與調(diào)控植物種子大小的主要植物激素是生長素、油菜素內(nèi)酯、細胞分裂素和赤霉素。生長素調(diào)控種子大小主要通過ARFs(生長素響應(yīng)因子)實現(xiàn),擬南芥ARF2突變體種子變小,進一步研究表明,ARF2主要通過限制珠被細胞增殖來影響種子大小[8-9]。甘藍型油菜中相關(guān)研究發(fā)現(xiàn),BnARF18可以正向調(diào)節(jié)角果長度和種子大小。BR(油菜素內(nèi)酯)通過調(diào)控胚和胚乳的生長發(fā)育來調(diào)控種子大小。CKX2(細胞分裂素氧化酶)發(fā)生突變的擬南芥株系表現(xiàn)為種子增大,表明CKX2負調(diào)控種子大小。赤霉素可以降解下游DELLA蛋白,從而正調(diào)控種子大小。
MPK(絲裂原活化蛋白激酶)蛋白家族參與植物多種生命活動,如抗蟲、抗病、抗逆等。此外,MPK通過一系列磷酸化過程,也能正調(diào)控種子發(fā)育[10-11]。
此外,多種轉(zhuǎn)錄因子,如GRF4、KLU等,也通過調(diào)控種子種皮細胞增殖和胚乳的生長等過程來調(diào)控植物種子大小[12-14]。
2 大豆種子大小遺傳研究
大豆種子大小差異很大,小的大豆品種百粒重不到10 g,大的大豆品種百粒重可達40~50 g,野生豆百粒重一般在3 g左右[15]。大豆種子是雙子葉無胚乳種子,由種皮和胚構(gòu)成。種皮約占種子重量的8%,一般差異不大[16],種皮限制了種子內(nèi)容物的生長,因此種皮對于種子大小有重要的影響。種皮的生長主要受母體基因型調(diào)控,在植物中已發(fā)現(xiàn)多個基因參與種皮細胞的增殖和增大[17]。胚由胚芽、胚根、胚軸和子葉4個部分構(gòu)成,其中大豆子葉占據(jù)了種子重量的90%以上,其他3個部分占種子重量的2%左右。子葉細胞的增殖和增大也顯著影響種子大小,子葉的生長受子代基因型調(diào)控,因此,種子大小也受子代基因型的調(diào)控[18]。大豆種子的發(fā)育從R1開始,直到R8結(jié)束,但是不同時期大豆種子干重增加速度不同。大豆粒重增加速度總體上呈先增快后減慢的趨勢,R5和R6粒重增加最為顯著,這一時期粒重增加占成熟大豆粒重的80%左右。因此,研究大豆粒重的調(diào)控因素,應(yīng)重點關(guān)注這一時期特異表達的基因[19]。
2.1 大豆種子大小QTL定位
www.soybase.org現(xiàn)已報道的大豆種子大小QTL有304個,分布于大豆的20條染色體上[20]。Yan L等(2014)[21]利用冀豆12×ZYD2738構(gòu)建的F2群體和冀豆9號×ZYD2738構(gòu)建的F2:3群體,共檢測到7個與百粒重相關(guān)的QTL;其中qSWT13-1位于13號染色體上,與Satt114連鎖,連續(xù)2代在2個群體中表現(xiàn)出超顯性效應(yīng),是提高雜交大豆百粒重的潛在有用基因。郭潔等(2017)[22]利用東農(nóng)46和L-100構(gòu)建RIL群體,共檢測到5個百粒重QTL,遺傳貢獻率為2.30%~7.59%。Yang Zhe(2013)等[23]利用美國高產(chǎn)大豆品種Charleston和東農(nóng)594雜交,獲得147個重組自交系,檢測到11個百粒重相關(guān)QTL。Kato Shin等(2014)[24]利用粒重相差2倍的日本大豆和美國大豆為親本構(gòu)建重組自交系群體,共檢測到15個粒重QTL,其中在多個生長環(huán)境中都檢測到的qSW17-1位于17號染色體上,可以解釋粒重表型變異的9.4%~20.9%。Li J(2019)等[25]利用3個不同生態(tài)區(qū)SNPs全基因組關(guān)聯(lián)分析,找到21個粒重相關(guān)QTL,可以解釋8.12%~14.25%的表型變異,其中位于9號染色體上的SW9-1可以解釋表型變異的10.05%~10.93%,且在栽培大豆中的占比遠高于野生大豆,表明這個QTL在大豆育種過程中受到選擇。這些研究表明,關(guān)于大豆百粒重這一性狀,已定位到較多相關(guān)QTL,但在不同的品種和不同的生態(tài)區(qū),定位到的QTL差異較大,且定位到的QTL區(qū)間跨度較大,仍有待進一步研究。
2.2 關(guān)聯(lián)分析發(fā)掘大豆種子大小相關(guān)基因
關(guān)聯(lián)分析又稱關(guān)聯(lián)作圖,是通過統(tǒng)計分析群體內(nèi)的遺傳標記與表型變異之間的相關(guān)性來發(fā)掘與性狀相關(guān)聯(lián)的遺傳位點的方法[26]。由于不需要構(gòu)建遺傳分析群體,關(guān)聯(lián)分析已被廣泛用于鑒定和驗證與農(nóng)藝性狀和標記輔助選擇育種相關(guān)的分子位點。
Wang Xiaobo等(2015)[27]對23 587份大豆種質(zhì)資源中GmCYP78A10使用CAPs標記進行基因分型,發(fā)現(xiàn)該基因只有2種等位變異。GmCYP78A10a等位變異主要分布在野生型大豆中,GmCYP78A10b主要分布于栽培大豆,GmCYP78A10b等位變異的分布比例與種子大豆極顯著正相關(guān),與單株莢數(shù)極顯著負相關(guān),但與單株產(chǎn)量無明顯關(guān)聯(lián),表明GmCYP78A10在大豆馴化的早期經(jīng)歷了人工選擇。Feng X等(2022)對來自中國三大生態(tài)區(qū)共146份大豆種質(zhì)材料進行了重測序,而后使用4 987個SNP進行GWAS分析,共鑒定21個種子大小相關(guān)的SNP,包括3個百粒重相關(guān)SNP、16個種子長相關(guān)SNP、2個單株粒重相關(guān)SNP,平均每個SNP能解釋11.34%的表型變異;其中,位于9號染色體上的SW9-1(ss246792949T/C)位點在大粒群體和小粒群體中有顯著差異,SW9-1C在野生型大豆中分布較廣,SW9-1T主要分布在栽培大豆中,表明q-SW9-1是大豆百粒重的一個可靠位點,且在大豆馴化過程中受到了人工選擇。Assefa T等(2019)利用419份大豆種質(zhì)的基因分型數(shù)據(jù),發(fā)掘出5個粒重QTL位點;19號染色體上相關(guān)位點的候選基因Glyma.19 g151900編碼一種AP2結(jié)構(gòu)域蛋白,其擬南芥中的同源基因AT1G03430.1參與了擬南芥種子大小調(diào)控。
2.3 生物信息學發(fā)掘大豆種子大小相關(guān)基因
生物信息學通過綜合運用數(shù)學和信息科學等多領(lǐng)域方法,對生物信息進行獲取、加工、存儲、分析和解釋,闡明大量生物學數(shù)據(jù)中包含的生物學意義,主要包括基因組學、蛋白質(zhì)組學,轉(zhuǎn)錄組學等。
在大豆種子大小調(diào)控基因的發(fā)掘方面,生物信息學得到了廣泛的運用。Lu Xiang等(2016)[28]通過研究40個發(fā)育中種子的轉(zhuǎn)錄組,構(gòu)建了基因共表達網(wǎng)絡(luò),結(jié)合已報道的種子大小相關(guān)QTL位點,發(fā)掘出潛在的種子大小調(diào)控基因GA20OX。這個基因編碼赤霉素生物合成中的限速酶,在擬南芥中過表達該基因表現(xiàn)出顯著的種子增大表型,表明其對種子大小具有調(diào)控作用。Du Juan等(2017)[29]對2個種子大小差異顯著的大豆品種的發(fā)育中的種子進行轉(zhuǎn)錄組分析,發(fā)現(xiàn)其中表達量差異顯著的基因CYP78A5在種子大小調(diào)控中發(fā)揮重要的作用,過表達CYP78A5的轉(zhuǎn)基因大豆表現(xiàn)出顯著的種子增大表型。Gu Yongzhe等(2017)[30]利用轉(zhuǎn)錄組分析了野生型大豆和栽培大豆發(fā)育中種子的差異表達基因,發(fā)掘出和種子大小表型關(guān)聯(lián)的差異表達基因SoyWRKY15a,研究表明該基因在野生豆和栽培豆中的不同單倍型的編碼區(qū)一致,但在啟動子區(qū)域存在4種單倍型,啟動子區(qū)域的SNP造成了該基因在栽培豆中的表達量顯著高于野生型大豆。
2.4 同源克隆發(fā)掘大豆種子大小相關(guān)基因
近緣物種間基因存在一定的同源性,許多基因在不同物種間功能保守。目前種子大小在擬南芥和水稻中的相關(guān)研究較為透徹,利用同源克隆的方法來發(fā)掘大豆種子大小調(diào)控基因也是有效的。
相關(guān)研究表明,擬南芥KLU正調(diào)控種子大小。Zhao Baotian等(2016)[31]克隆了大豆中KLU同源基因GmCYP78A72,GmCYP78A72在發(fā)育中的種子中表達量最高,在擬南芥和大豆中分別過表達GmCYP78A72都表現(xiàn)出顯著的種子增大表型;GmCYP78A72單突變體種子大小變化不明顯,但GmCYP78A57、GmCYP78A70和GmCYP78A72三突變體種子大小顯著減小,表明這3個基因在調(diào)控大豆種子大小方面功能冗余,同時CYP78A72在擬南芥和大豆中功能保守。擬南芥PSK-α編碼一種硫酸化五肽植物激素,參與多種植物生長發(fā)育的過程。Yu Liangliang等(2019)[32]利用同源克隆的方法從大豆基因組中克隆了1個擬南芥PSK-α同源基因GmPSKγ,這2個基因編碼的蛋白質(zhì)只有1個氨基酸差異,在擬南芥和煙草中過表達GmPSKγ都能顯著提升種子大小,表明其對種子大小具有調(diào)控作用。Jiang W等(2020)也在大豆中同源克隆了多個擬南芥AP2家族同源基因,并在擬南芥中進行了轉(zhuǎn)基因驗證,發(fā)掘出多個潛在的大豆種子大小調(diào)控基因,包括GmAP2-1、GmAP2-2、GmAP2-3等。
2.5 突變體研究發(fā)掘大豆種子大小相關(guān)基因
可穩(wěn)定遺傳的植物突變體和其內(nèi)部遺傳物質(zhì)的改變存在對應(yīng)關(guān)系,通過構(gòu)建突變體庫來定位基因是有效的研究手段。
目前已有多個利用突變體來定位種子大小調(diào)控基因的報道。Ge Liangfa等(2016)[33]通過篩選快中子苜蓿突變體庫發(fā)現(xiàn)了一個種子大小顯著高于野生型的突變體mtbs1-1,并使用圖位克隆的方法定位了此基因,轉(zhuǎn)錄組分析和其他一些分子生物學研究揭示了BS1通過與Medicago NINJA互作來調(diào)控原初細胞增殖繼而調(diào)控種子大小。在大豆中過表達該基因的大豆同源基因能顯著調(diào)控大豆種子大小,同時蛋白質(zhì)含量有一定的提高,表明GmBS1是大豆種子大小的一個重要調(diào)控因子。Yin Pengcheng等(2020)[34]利用苜蓿小粒突變體SLB1定位到編碼F-box家族蛋白的基因SLB1,SLB1與MtASK1和MtASK2共同組成E3泛素連接酶復(fù)合體并降解BS1來調(diào)控種子大??;過表達同源基因GmSLB1的轉(zhuǎn)基因大豆具有顯著的種子增大表型,說明SLB1參與了種子大小調(diào)控,且在苜蓿和大豆中功能保守。
3 展望
種子大小是一個多基因控制的復(fù)雜農(nóng)藝性狀,其調(diào)控網(wǎng)絡(luò)涉及多種物質(zhì)的相互作用[35]。結(jié)合大豆中相關(guān)研究來看,許多種子大小調(diào)控基因在各種作物之間功能保守[36]。目前大豆種子大小相關(guān)研究以發(fā)掘單個基因為主,尚未構(gòu)建完整的調(diào)控路徑。其他作物中已有的種子大小相關(guān)研究將為大豆種子大小調(diào)控網(wǎng)絡(luò)的構(gòu)建提供有效的參考。
大豆種子大小相關(guān)研究表明,通過QTL定位、關(guān)聯(lián)分析、生信分析、同源克隆等方式可成功克隆多個大豆種子大小調(diào)控基因[37-38],但結(jié)合這些研究來看,也存在一些不足,例如基因功能驗證方面表型不夠明確,許多研究缺少直接的大豆突變體表型或者過表達材料表型,這可能與大豆轉(zhuǎn)基因效率偏低有關(guān),后續(xù)大豆轉(zhuǎn)基因技術(shù)的提升將加速大豆基因功能驗證。目前來看,直接以大豆種子大小突變體為材料來定位大豆種子大小調(diào)控基因的相關(guān)研究并不多見,多以模式植物苜蓿中相關(guān)突變體為材料發(fā)掘基因,再同源克隆大豆同源基因,這可能歸因于大豆復(fù)雜的基因組。約14萬年前大豆基因組復(fù)制事件導(dǎo)致大豆基因組結(jié)構(gòu)復(fù)雜,使用常規(guī)技術(shù)研究大豆基因功能難度較大,但是直接以大豆突變體為材料來研究大豆種子大小會更有說服力。
大粒大豆具有更好的市場競爭力,然而許多大粒變異材料常擁有多個不利農(nóng)藝性狀,如發(fā)芽率低、產(chǎn)量低等,使得發(fā)現(xiàn)的大豆粒重調(diào)控基因較難在育種中加以應(yīng)用。發(fā)掘出好的基因單倍型,使得粒重增加而其他農(nóng)藝性狀變化在能接受的范圍,這樣的工作具有良好的育種利用前景。
參考文獻:
[1]Li Xin, Liu Wei, Zhuang Lili, et al. BIGGER ORGANS and ELEPHANT EAR-LIKE LEAF1 control organ size and floral organ internal asymmetry in pea[J].Journal of Experimental Botany,2019,70(1):179-191.
[2]Li Na, Xu Ran, Li Yunhai. Molecular networks of seed size control in plants[J].Annual Reviews,2019,70(1):435-463.
[3]Disch Sabine, Anastasiou Elena, Sharma Vajay K, et al. The E3 ubiquitin ligase BIG BROTHER controls arabidopsis organsize in a dosage-dependent manner[J].Current Biology,2006,16(3):272-279.
[4]Li Yunhai, Zheng Leiying, Corke Fiona, et al. Control of final seed and organ size by the DA1 gene family in Arabidopsisthaliana[J].Genes & Development,2008,22(10):1331-1336.
[5]Best Sonja M. The many faces of the flavivirus NS5 protein in antagonism of type I interferon signaling[J].
Journal of Virology,2017,91(3):e01970-16.
[6]Fujisawa Y, Kato T, Ohki S, et al. Suppression of the heterotrimeric G protein causes abnormal morphology,
including dwarfism,in rice[J].Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,1999,96(13):7575-7580.
[7]Ullah H, Chen JG, Young JC, et al. Modulation of cell proliferation by heterotrimeric G protein in
Arabidopsis[J].Science,2001,292(5524):2066-2069.
[8]Mizukami Y, Fischer RL. Plant organ size control:AINTEGUMENTA regulates growth and cell numbers during
organogenesis[J].Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2000,
97(2):942-947.
[9]Liu Jing, Hua Wei, Hu Ziyong, et al. Natural variation in ARF18 gene simultaneously affects seed weight and silique length in polyploid rapeseed[J].Proceedings of the National Academy of Sciences of the United
States of America,2015,112(37):E5123-32.
[10]Bent AF. Plant mitogen-activated protein kinase cascades: Negative regulatory roles turn out positive[J].
Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2001,98(3):784-786.
[11]López-Bucio JS, Dubrovsky JG, Raya-González J, et al. Arabidopsis thaliana mitogen-activated protein
kinase 6 is involved in seed formation and modulation of primary and lateral root development[J].
Journal of Experimental Botany,2014,65(1):169-183.
[12]Hu Jiang, Wang Yuexing, Fang Yunxia, et al. A rare allele of GS2 enhances grain size and grain yield in rice[J].Molecular Plant,2015,8(10):1455-1465.
[13]Liang Gang, He Hua, Li Yang, et al. Molecular mechanism of microRNA396 mediating pistil development in Arabidopsis[J].Plant Physiol,2014,164(1):249-258.
[14]Yang Weibing, Gao Mingjun, Yin Xin, et al. Control of rice embryo development,shoot apical meristem
maintenance,and grain yield by a novel cytochrome p450[J].Molecular Plant,2013,6(6):1945-1960.
[15]劉成,張雅軒,陳先連,等.野生大豆染色體片段代換系群體中與百粒重關(guān)聯(lián)的野生片段及其候選基因[J].作物學報,2022,48(8):1884-1893.
[16]Edwards C J, Hartwig E E. Effect of seed size upon rate of germination in soybeans[J].Agronomy Journal,1971,63(3):429-450.
[17]Li Na, Li Yunhai. Signaling pathways of seed size control in plants[J].Current Opinion in Plant Biology,
2016,33:23-32.
[18]Garcia Damien, Gerald Jonathan N Fitz, Frédéric Berger. Maternal control of integument cell elongation
and zygotic control of endosperm growth are coordinated to determine seed size in Arabidopsis[J].The Plant Cell,2005,17(1):52-60.
[19]付艷華,程硯喜,項淑華,等.大豆不同生育階段與品質(zhì)育種關(guān)系的研究[J].吉林農(nóng)業(yè)科學,1998(3):16-17.
[20]Sankaran Renuka P, Huguet Thierry, Grusak Michael A. Identification of QTL affecting seed mineral
concentrations and content in the model legume Medicago truncatula[J].Theoretical & Applied Genetics,
2009,119(2):241-253.
[21]Yan L, Li Y H, Yang C Y,et al. Identification and validation of an over-dominant QTL controlling soybean
seed weight using populations derived from Glycine max×Glycine soja[J].Plant Breeding,2014,133(5):632-637.
[22]郭潔,張繼雨,陳峰娜,等.控制大豆油分含量和百粒重的QTL定位[J].基因組學與應(yīng)用生物學,2017,36(7):2983-2988.
[23]Yang Zhe, Xin Dawei, Liu Chunyan, et al. Identification of QTLs for seed and pod traits in soybean and analysis for additive effects and epistatic effects of QTLs among multiple e nvironments[J].Molecular
Genetics and Genomics,2013,288(12):651-667.
[24]Kato Shin, Sayama Takashi, Fujii K, et al. A major and stable QTL associated with seed weight in soybean
across multiple environments and genetic backgrounds[J].Theor Appl Genet,2014,127(6):1365-1374.
[25]Li J, Zhao J, Li Y, et al. Identification of a novel seed size associated locus SW9-1 in soybean[J].The Crop Journal,2019,7(4):548-559.
[26]Hsiao Chin-Fu, Chiu Yen-Feng, Chiang Fu-Tien, et al. Genome-wide linkage analysis of lipids in nondiabetic
Chinese and Japanese from the SAPPHIRe family study[J].American Journal of Hypertension,2006,19(12):
1270-1277.
[27]Wang Xiaobo, Li Yinhui, Zhang Haowei, et al. Evolution and association analysis of GmCYP78A10 gene with seed size/weight and pod number in soybean[J].Molecular Biology Reports,2015,42(2):489-496.
[28]Lu Xiang, Li Qing-Tian, Xiong Qing, et al. The transcriptomic signature of developing soybean seeds reveals the genetic basis of seed trait adaptation during domestication[J].The Plant Journal,2016,86(6):530-544.
[29]Du Juan, Wang Shoudong, He Cunman, et al. Identification of regulatory networks and hub genes controlling
soybean seed set and size using RNA sequencing analysis[J].Journal of Experimental Botany,2017,68(8):
1955-1972.
[30]Gu Yongzhe, Li Wei, Jiang Hongwei, et al. Differential expression of a WRKY gene between wild and
cultivated soybeans correlates to seed size[J].Journal of Experimental Botany,2017,68(11):2717-2729.
[31]Zhao Baotian, Dai Aihua, Wei Haichao, et al. Arabidopsis KLU homologue GmCYP78A72 regulates seed size in soybean[J].Plant Molecular Biology,2016,90(1-2):33-47.
[32]Yu Liangliang, Liu Yumin, Zeng Shuang, et al. Expression of a novel PSK-encoding gene from soybean
improves seed growth and yield in transgenic plants[J].Planta,2019,249(4):1239-1250.
[33]Ge Liangfa, Yu Jianbin, Wang Hongliang, et al. Increasing seed size and quality by manipulating BIG SEEDS1 in legume species[J].Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2016,113(44):12414-12419.
[34]Yin Pengcheng, Ma Qingxia, Wang Hui, et al. SMALL LEAFAND BUSHY1 controls organ size and lateral branching by modulating the stability of BIG SEEDS1 in Medicago truncatula[J].The New Phytologist,2020,226(5):1399-1412.
[35]M. A. Bailey M. A. R. Mian. Molecular markers associated with seed weight in two soybean populations[J].Theoretical and Applied Genetics,1996,93(7):1011-1016.
[36]孫丹丹,李曉凱,王鳳茹.植物種子大小調(diào)控信號通路研究進展[J].分子植物育種,2021,19(3):1031-1037.
[37]黃莉,陳玉寧,羅懷勇,等.花生種子大小相關(guān)性狀QTL 定位研究進展[J].作物學報,2022,48(2):280-291.
[38]王明曉,黃懷玲,趙傳志,等.豆科植物種子大小性狀相關(guān)基因及其研究進展[J].基因組學與應(yīng)用生物學,2021,40(Suppl 4):3694-3703.
基金項目:淮安市農(nóng)業(yè)科學研究院科研發(fā)展基金(HABL202226);國家青年自然科學基金(32201729)。
作者簡介:余希文(1994—),男,漢族,湖北荊州人,碩士,研究實習員,研究方向為大豆遺傳育種。
王亞琪(1988—),女,漢族,河南洛陽人,博士,助理研究員,研究方向為大豆分子育種。
趙志鑫(1995—),女,漢族,山西呂梁人,碩士,研究實習員,研究方向為大豆遺傳育種。
傅蒙蒙(1988—),男,漢族,安徽亳州人,博士,助理研究員,研究方向為大豆種質(zhì)資源生態(tài)。
李曙光(1982—),男,漢族,河南周口人,博士,助理研究員,研究方向為大豆遺傳育種。
楊加銀(1963—),男,漢族,江蘇興化人,博士,研究員,研究方向為大豆遺傳育種。
通信作者:徐海風(1977—),男,漢族,江蘇淮安人,碩士,副研究員,研究方向為大豆遺傳育種。