李艷梅 程俠菊 王燕
摘 要:[目的]探討外泌體包裹的miR-19b對EV71病毒復制的影響,為EV71病毒的miRNA防治藥物的開發(fā)提供參考.[方法]將游離的miR-19b-cy3.5分子和轉染miR-19b-cy3.5的HT29細胞分泌的外泌體分別處理T98G細胞,觀察進入細胞的效率;分別提取未處理的、轉染mimic-n.c.和轉染miR-19b的HT29細胞分泌的外泌體,并給予T98G細胞孵育后,檢測細胞內miR-19b的表達;分別以60 mg/L 轉染mimic-n.c.的HT29細胞分泌的外泌體、60 mg/L 和40 mg/L 轉染miR-19b的HT29細胞分泌的外泌體孵育T98G細胞并感染EV71病毒,檢測病毒RNA載量;將攜帶包裹的miR-19b-cy3.5的HT29細胞來源的外泌體,通過尾靜脈注射小鼠檢測miR-19b在小鼠各個器官中的表達.[結果] miR-19b-cy3.5能夠通過外泌體的形式進入T98G細胞中,而游離的miR-19b-cy3.5無法進入細胞;轉染miR-19b的HT29細胞分泌的外泌體在處理T98G細胞后,胞內miR-19b高表達, 同時,外泌體處理后的T98G細胞中EV71病毒RNA復制量顯著降低;動物實驗中,外泌體包裹的miR-19b能夠在小鼠的腦、肝及肺有效表達.[結論]外泌體包裹的miR-19b能夠有效進入靶細胞中,并且可以抑制靶細胞中EV71病毒的復制;同時,外泌體包裹的miR-19b能夠有效進入小鼠腦、肝以及肺等組織中并表達.
關鍵詞:miR-19b;EV71;外泌體;microRNA
中圖分類號:R392文獻標志碼:A
腸道病毒71型(Enterovirus 71,EV71)病毒屬于A型腸道病毒,是無包膜正向單鏈RNA病毒,衣殼為二面體立體對稱,對中樞神經系統(tǒng)有極高的感染性.EV71主要引起5歲以下兒童手足口?。╤and-foot and mouth disease,HFMD),重癥感染常導致急性腦損傷(Acute brain injury,ABI),臨床癥狀包括腦炎(encephalitis)、無菌性腦膜炎(aseptic meningitis)、急性無力肢體麻痹(acute flaccid paralysis)等,據(jù)統(tǒng)計約0.2%~1% EV71感染的兒童發(fā)展為神經系統(tǒng)綜合征[1] .由于腸道病毒的傳染性強,HFMD經常于夏秋季在幼兒園或小學生發(fā)生小規(guī)模流行[2] .目前在臨床上尚無有效的抗病毒特效藥物,對EV71感染的患者主要以對癥和支持治療為主.
外泌體是由細胞釋放到細胞外基質中的一種雙層膜結構的囊泡,內含的核酸及蛋白質在病毒的持續(xù)性感染及擴散中起到了重要作用.2013年,SHTAM等[3]發(fā)現(xiàn)了細胞囊泡運輸?shù)恼{節(jié)機制,為外泌體作為基因和藥物遞送的載體提供了理論依據(jù),具有重要的臨床意義.相對于脂質體制劑來說,外泌體是天然存在的分泌性信息載體,毒性較低,生物相容性好、具有高通透性和滯留效應、能透過血腦屏障.
miRNA是外泌體中含量最豐富的一種RNA,是一類長度為19~24個核苷酸的非編碼RNA,通過加速mRNA 降解或者抑制mRNA翻譯調控基因表達[4] ,進而參與細胞生長、增殖、凋亡和信號轉導的半蛋白編碼基因的表達[5-6] .有證據(jù)表明,病毒感染可以影響miRNA 的表達,改變miRNA的表達可以抑制或增強抗病毒反應[7] .研究發(fā)現(xiàn)人類免疫缺陷病毒(HIV-1)受體CD4蛋白受miR-221和miR-222的調控[8] , miR-34a是黃病毒復制的有效抑制劑[9],miRNA-221具有增強IFN-I抗丙型肝炎病毒(HCV)的作用[10] .較多證據(jù)表明miRNA與EV71感染復制有關.miR-197的過表達會抑制EV71的復制,而抑制miR-197表達后EV71復制水平將顯著升高[11] .EV71感染細胞分泌的外泌體選擇性地包裝了高水平miR-146a,miR-146a可通過抑制I型干擾素應答功能轉移到受體細胞并促進外泌體EV71 RNA在受體細胞中復制[12] .在EV71感染過程中hsa-miR-17(~92)的表達顯著下調,過表達hsa-miR-17(~92) EV71的復制受到抑制,而抑制內源性hsa-miR-17(~92)促進了EV71復制[13] .microRNA-23b通過下調EV71 VPl蛋白抑制腸病毒71復制[14] .
miR-19b是一個與細胞分化和生長等有關的 miRNA分子,與心肌分化以及腫瘤侵襲遷移等有關[15-16] .有研究報道gga-miR-19b-3p促進新城疫病毒(NDV)誘導的炎癥細胞因子的產生抑制NDV的復制,而抑制內源性miR-19b表達則有相反的效果上調miR-19b可以抑制NDV的復制[17] .還有研究發(fā)現(xiàn)miR-19b是調控人類免疫缺陷病毒(HIV)感染期間CD8+T細胞功能的“磷酸酶和緊張素同源物”,可以直接抑制體外感染HIV的T細胞中的病毒產生[18] .目前,miR-19b是否影響EV71病毒的復制尚未有報道.本研究以期為EV71的以外泌體為載體的miRNA防治藥物的開發(fā)提供新的參考與策略,探討了外泌體包裹的miR-19b對EV71復制的影響.
1 材料與方法
1.1 材料
人結腸癌細胞株HT-29,EV71、人腦膠質瘤細胞T98G以及miR-19b-cy3.5質粒由生物醫(yī)學研究院保存;DMEM、1640培養(yǎng)液、胎牛血清購自Gibco公司;ExoQuickTC 外泌體提取試劑盒(美國SBI);超過濾管(美國 Millipore);Trizol 試劑(北京天漠生物科技有限公司);miRNA 反轉錄試劑盒(廣州銳博科技生物有限公司).
1.2 方法
1.2.1 細胞轉染實驗
HT29細胞接種至24孔板中,待細胞生長至 50%~70%,將細胞分為空白對照組、轉染mimic-n.c.對照組和轉染miR-19b組.轉染方式如下,A管:將20 pmol siRNA溶于25 μL無血清培養(yǎng)基中;B管:將1.5 μL Lipofectamine 3000溶于25 μL 無血清培養(yǎng)基中混勻;將A和B兩管混合,放置5 min,將混合液加入24孔板對應孔中.
1.2.2 外泌體提取
將HT29細胞培養(yǎng)上清以10 000 r/min,4 ℃離心45 min,去除死細胞及細胞碎片,并通過0.22 μm過濾器進行過濾.使用Exoquick-TC(美國System Bioscieonce公司)提取細胞培養(yǎng)上清中的外泌體,將培養(yǎng)基與Exoquick-T試劑混勻,置于4℃冰箱靜置過夜,以1 500 r/min,4 ℃離心30 min,去掉上清,將離心管底部的外泌體沉淀用PBS懸浮.
1.2.3 熒光定量 PCR
將T98G細胞接種至12孔板中,待細胞生長至 70%~80%后分為3組,其中空白對照組加入正常的HT29分泌的外泌體,mimic-n.c.對照組加入轉染mimic-n.c.的HT29分泌的外泌體,處理組加入轉染miR-19b的HT29分泌的外泌體,培養(yǎng)48 h.
將T98G細胞接種至12孔板中,待細胞生長至 70%~80%后分為3組,60 mg/L 轉染mimic-n.c.的HT29分泌的外泌體、40 mg/L 轉染miR-19b的HT29分泌的外泌體以及60 mg/L 轉染miR-19b的HT29分泌的外泌體分別與MOI=2的EV71混勻共培養(yǎng)T98G細胞48 h.
收集以上6組細胞,使用Trizol法(InvitrogenTM TRIzol)提取細胞總RNA,使用逆轉錄試劑盒(First Strand cDNA Synthesis)分別將總RNA分別逆轉錄成對應的cDNA,再利用熒光定量 PCR (Quantitative real time polymerase chain reaction,qRT-PCR)技術以GAPDH為內參基因,檢測EV71病毒RNA以及miR-19b的表達量.反應程序設置為95 ℃,10 min,95 ℃,15 s,60 ℃,1 min,共計40個循環(huán).引物序列如下:
EV71 viral RNA:
Forward: 5′-GCTCTATAGGAGATAGTGTGAGTAGGG-3′
Reverse: 5′-ATGACTGCTCACCTGCGTGTT-3′
miR-19b:
Forward: 5′-CCTGTCGCCCAATCAAA-3′
Reverse:5′-CAACCTGTGTAGAAAGGGGTT-3′
GAPDH:
Forward: 5′-TGCACCACCAACTGCTTAGC-3′
Reverse: 5′ -GGCATGGACTGTGGTCATGAG-3′
1.2.4 外源性外泌體包裹的miR-19b-cy3.5在小鼠體的分布
尾靜脈注射BALB/c小鼠轉染miR-19b-cy3.5的HT29細胞分泌的外泌體,對照組注射PBS.48 h后取腦、肺、肝組織置于4%多聚甲醛固定8 h;冷凍切片機切片5 μm,室溫放置30 min;PBS洗3次,每次5 min;免疫組化筆畫圈,2% BSA室溫封閉1 h;一抗4℃孵育過夜;PBS洗3次,每次5 min;二抗室溫避光孵育1 h,PBS洗3次,每次5 min;DAPI染色,PBS洗3次,每次5 min;滴加防淬滅劑,封片,在激光共聚焦顯微鏡下觀察miR-19b-cy3.5的表達情況.
1.2.5 細胞的固定及免疫熒光
在培養(yǎng)板中培養(yǎng)好細胞后,吸除培養(yǎng)基,使用PBS輕洗細胞2次,然后加入4%多聚甲醛(PBS配制)固定15 min;除去多聚甲醛,PBS輕洗細胞3次,每次5 min.用0.5%Triton X-100室溫通透20 min,除去Triton X-100,使用PBS輕洗細胞3次,每次5 min;用3% H2O2孵育15 min,除去H2O2,PBS輕洗細胞3次,每次5 min;用10%的與二抗同源的血清封閉30 min;滴加足夠量適宜濃度的一抗,4 ℃孵育過夜,除去一抗,使用PBS輕洗細胞3次,每次5 min;滴加足夠量適宜濃度的二抗,室溫避光孵育60 min,除去二抗,使用PBS輕洗細胞3次,每次5 min;用0.5 mg/L? DAPI避光孵育5 min,PBS輕洗細胞3次,每次5 min,將爬片輕輕勾起,用小鑷子取出,用吸水紙吸干爬片上的液體,封片液封片,用激光共聚焦采集圖像.
1.3 統(tǒng)計學處理
采用 SPSS 17.0 統(tǒng)計軟件進行分析,上述實驗均重復3次,組間差異比較采用t檢驗.P<0.05表示差異有統(tǒng)計學意義.
2 結 果
2.1 外泌體攜帶包裹的miR-19b可以有效地形式進入靶細胞
將miR-19b-cy3.5分子轉染HT29細胞,提取分泌的外泌體并加入T98G細胞中,外泌體包裹的miR-19b-cy3.5可以有效進入T98G細胞,而游離的miR-19b-cy3.5分子無法進入T98G細胞(圖1(a)).另外,我們在T98G細胞中過表達外泌體的分子標志物CD63,發(fā)現(xiàn)miR-19b與CD63發(fā)生共定位,這說明miR-19b隨外泌體一同進入T98G細胞(圖1(b)).
2.2 外泌體包裹的miR-19b在靶細胞中可有效抑制EV71病毒復制
T98G細胞分別與未處理的HT29細胞、轉染mimic-n.c.的HT29細胞以及轉染miR-19b的HT29細胞分泌的外泌體共孵育,48 h后檢測發(fā)現(xiàn),與轉染miR-19b的HT29細胞分泌的外泌體共孵育的T98G細胞中的miR-19b表達顯著增加(圖2(A)).另外,轉染miR-19b的HT-29細胞分泌的外泌體,使其攜帶miR-19b后并處理T98G細胞(40 mg/L),T98G胞內的病毒RNA復制載量顯著低于轉染mimic-n.c.的HT29細胞分泌的外泌體處理組,同時,60 mg/L的攜帶miR-19b外泌體處理T98G細胞后,其病毒RNA復制載量顯著低于40 mg/L外泌體處理組,說明外泌體攜帶的miR-19b在抑制靶細胞中病毒復制過程中顯示出劑量依賴性(圖2(B)).
2.3 外泌體攜帶包裹的miR-19b在小鼠組織內的分布
小鼠尾靜脈分別注射轉染miR-19b-cy3.5的HT29細胞分泌的外泌體,對照組給予 PBS處理,48h后共聚焦分析組織切片,結果顯示,外泌體攜帶的miR-19b-cy3.5能夠有效進入小鼠腦、肝以及肺并表達(圖3).
3 結 論
外泌體是細胞分泌的一種胞外囊泡,直徑為30~150 nm,由包括T細胞、上皮細胞、少突膠質細胞等多種細胞分泌,廣泛分布于血液、唾液、腦脊液等生物體液中[19-20] .研究證實,外泌體中含有DNA,miRNA,4次跨膜蛋白超家族(CD9,CD63,CD81,CD82)以及與病毒感染復制有關的分子等[5,20-22] ,是細胞間信號傳遞和信息交流的重要方式,可參與機體免疫應答、抗原提呈、細胞遷移、細胞分化、腫瘤侵襲等[23] .近年來,一些研究表明外泌體中還包含有STING蛋白,miR-H5,miR-H3和miR-H6等miRNA參與病毒的復制和傳播[24] .HIV感染后通過DC信號將病毒粒子與外泌體一起釋放并增強了病毒的感染能力[25-26] .丙型肝炎病毒(HCV)的RNA可在感染細胞的外泌體中檢測到,并可以作為感染顆粒發(fā)揮作用[27-28] .不同病原體感染不同細胞產生的外泌體具有不同的表面分子,可作為后期藥物及疫苗研發(fā)的重要靶點.
miR-19b是 miR-17-92 基因簇中重要的致癌成員之一,可能與血小板聚集和活化密切相關,在非小細胞肺癌、前列腺癌等多種腫瘤中高表達,能夠調控腫瘤細胞的侵襲和遷移能力 [15,29-31] ,也參與NDV和HIV病毒的感染與復制[17-18] .miR-19b與EV71的感染復制是否有關系還沒有相關研究.本研究利用不同質量濃度的外泌體包裹的miR-19b處理EV71感染的T98G細胞,通過檢測病毒RNA的表達量,發(fā)現(xiàn)miR-19b可以濃度依賴性抑制EV71在T98G細胞內的復制.
miR-19b可以抑制EV71的具體機制還不清楚,有待于進一步研究.據(jù)目前報道,miR-221可以通過靶向IFN/JAK/STAT通路中的抑制因子SOCS1和SOCS3增強IFN的抗HCV作用[10] ;miR-34家族成員通過加強干擾素調節(jié)因子3 (IRF3)磷酸化和核易位發(fā)揮抗黃病毒作用[9] ;EV71感染細胞分泌的外泌體選擇性地包裝高水平的miR-146a,可以通過抑制I型干擾素反應,功能上轉移到并促進外泌體EV71 RNA在受體細胞中復制[12] ;DNA甲基化也可能是hsa-miR-17 92調控EV71病毒感染的一種新機制[13] ;miR-23b和miR-23b的上調可通過靶向EV71 3 UTR保守序列直接抑制EV71的復制[14] .由此可見,miRNA可以通過多種途徑參與病毒感染與復制.
目前在臨床上對EV71感染的患者主要以對癥和支持治療為主,外泌體包裹的miR-19b在體內是否也可以如進入T98G細胞順利在機體組織中表達?本實驗將外泌體包裹的miR-19-cy3.5尾靜脈注射BALB/c小鼠后,冷凍切片觀察發(fā)現(xiàn)小鼠腦、肝以及肺組織均可檢測到miR-19b-cy3.5.
綜上,外泌體包裹的miR-19b可以濃度依賴性抑制EV71在T98G細胞內的復制,也可以在體內的腦、肝及肺組織在表達;這為EV71的以外泌體為載體的miRNA防治藥物的開發(fā)提供了理論依據(jù).我們將會對外泌體包裹的miR-19b可以抑制EV71復制的具體機制做進一步的研究.
參 考 文 獻
[1] ?KLEIN M H.EV71 vaccines:a first step towards multivalent hand,foot and mouth disease vaccines[J].Expert Review of Vaccines,2015,14(3):337-340.
[2]OOI M H,WONG S C,LEWTHWAITE P,et al.Clinical features,diagnosis,and management of Enterovirus 71[J].The Lancet Neurology,2010,9(11):1097-1105.
[3]SHTAM T A,KOVALEV R A,VARFOLOMEEVA E Y,et al.Exosomes are natural carriers of exogenous siRNA to human cells in vitro[J].Cell Communication and Signaling,2013,11:88.
[4]秦建平,陶娟,李迎迎,等.血清miR-25、miR-223和miR-373作為食管鱗癌生物標志物的評價[J].河南師范大學學報(自然科學版),2017,45(1):65-70.
QIN J P,TAO J,LI Y Y,et al.Predictive value of serum miR-25,miR-223,and miR-373 as promising biomarkers in esophageal squamous cell carcinoma[J].Journal of Henan Normal University (Natural Science Edition),2017,45(1):65-70.
[5]VALADI H,EKSTRM K,BOSSIOS A,et al.Exosome-mediated transfer of mRNAs and microRNAs is a novel mechanism of genetic exchange between cells[J].Nature Cell Biology,2007,9(6):654-659.
[6]BARTEL D P.microRNAs:genomics,biogenesis,mechanism,and function[J].Cell,2004,116(2):281-297.
[7]TROBAUGH D W,KLIMSTRA W B.microRNA regulation of RNA virus replication and pathogenesis[J].Trends in Molecular Medicine,2017,23(1):80-93.
[8]LODGE R,BARBOSA J A F,LOMBARD-VADNAIS F,et al.Host microRNAs-221 and-222 inhibit HIV-1 entry in macrophages by targeting the CD4 viral receptor[J].Cell Reports,2017,21(1):141-153.
[9]SMITH J L,JENG S,MCWEENEY S K,et al.A microRNA screen identifies the Wnt signaling pathway as a regulator of the interferon response during Flavivirus infection[J].Journal of Virology,2017,91(8):e02388-e02316.
[10]XU G,YANG F,DING C L,et al.miR-221 accentuates IFN's anti-HCV effect by downregulating SOCS1 and SOCS3[J].Virology,2014,462/463:343-350.
[11]TANG W F,HUANG R T,CHIEN K Y,et al.Host microRNA miR-197 plays a negative regulatory role in the Enterovirus 71 infectious cycle by targeting the RAN protein[J].American Journal of Translational Research,2016,90(3):1424-1438.
[12]FU Y,ZHANG L,ZHANG F,et al.Exosome-mediated miR-146a transfer suppresses type I interferon response and facilitates EV71 infection[J].PLoS Pathogens,2017,13(9):e1006611.
[13]FU Y,ZHANG L,ZHANG R,et al.Enterovirus 71 suppresses miR-17-92 cluster through up-regulating methylation of the miRNA promoter[J].Frontiers in Microbiology,2019,10:625.
[14]WEN B P,DAI H J,YANG Y H,et al.microRNA-23b inhibits Enterovirus 71 replication through downregulation of EV71 VPl protein[J].Intervirology,2013,56(3):195-200.
[15]LAI Y J,HE S,MA L M,et al.HOTAIR functions as a competing endogenous RNA to regulate PTEN expression by inhibiting miR-19 in cardiac hypertrophy[J].Molecular and Cellular Biochemistry,2017,432(1/2):179-187.
[16]LIU D T,YAO H R,LI Y Y,et al.microRNA-19b promotes the migration and invasion of ovarian cancer cells by inhibiting the PTEN/AKT signaling pathway[J].Oncology Letters,2018,16(1):559-565.
[17]CHEN Y,LIU W,XU H X,et al.Gga-miR-19b-3p inhibits Newcastle disease virus replication by suppressing inflammatory response via targeting RNF11 and ZMYND11[J].Frontiers in Microbiology,2019,10:2006.
[18]YIN L B,SONG C B,ZHENG J F,et al.Elevated expression of miR-19b enhances CD8+ T cell function by targeting PTEN in HIV infected long term non-progressors with sustained viral suppression[J].Front Immunol,2018,9:3140.
[19]BLANCHARD N,LANKAR D,F(xiàn)AURE F,et al.TCR activation of human T cells induces the production of exosomes bearing the TCR/CD3/ζ complex[J].The Journal of Immunology,2002,168(7):3235-3241.
[20]VLASSOV A V,MAGDALENO S,SETTERQUIST R,et al.Exosomes:Current knowledge of their composition,biological functions,and diagnostic and therapeutic potentials[J].Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-General Subjects,2012,1820(7):940-948.
[21]PEINADO H,ALEKOVIC' M,LAVOTSHKIN S,et al.Melanoma exosomes educate bone marrow progenitor cells toward a prometastatic phenotype through MET[J].Nature Medicine,2012,18(6):883-891.
[22]余國營,韓棕遠,王棋文.細胞外囊泡來源的miRNA的生物學功能及臨床應用[J].河南師范大學學報(自然科學版),2021,49(4):98-105.
YU G Y,HAN Z Y,WANG Q W.The biological function and clinical application of miRNA derived from extracellular vesicles[J].Journal of Henan Normal University (Natural Science Edition),2021,49(4):98-105.
[23]YOSHIZAKI T,KONDO S,WAKISAKA N,et al.Pathogenic role of Epstein-Barr virus latent membrane protein-1 in the development of nasopharyngeal carcinoma[J].Cancer Letters,2013,337(1):1-7.
[24]KALAMVOKI M,DESCHAMPS T.Extracellular vesicles during Herpes simplex virus type 1 infection:an inquire[J].Virology Journal,2016,13:63.
[25]PIGUET V,STEINMAN R M.The interaction of HIV with dendritic cells:outcomes and pathways[J].Trends in Immunology,2007,28(11):503-510.
[26]WILEY R D,GUMMULURU S.Immature dendritic cell-derived exosomes can mediate HIV-1 trans infection[J].PNAS,2006,103(3):738-743.
[27]LONGATTI A,BOYD B,CHISARI F V.Virion-independent transfer of replication-competent hepatitis C virus RNA between permissive cells[J].Journal of Virology,2015,89(5):2956-2961.
[28]RAMAKRISHNAIAH V,THUMANN C,F(xiàn)OFANA I,et al.Exosome-mediated transmission of hepatitis C virus between human hepatoma Huh7.5 cells[J].PNAS,2013,110(32):13109-13113.
[29]OSIP′YANTS A I,KNYAZEV E N,GALATENKO A V,et al.Changes in the level of circulating hsa-miR-297 and hsa-miR-19b-3p miRNA are associated with generalization of prostate cancer[J].Bulletin of Experimental Biology and Medicine,2017,162(3):379-382.
[30]BAUMGARTNER U,BERGER F,HASHEMI GHEINANI A,et al.miR-19b enhances proliferation and apoptosis resistance via the EGFR signaling pathway by targeting PP2A and BIM in non-small cell lung cancer[J].Molecules cancer,2018,17(1):44.
[31]WILLEIT P,ZAMPETAKI A,DUDEK K,et al.Circulating microRNAs as novel biomarkers for platelet activation[J].Circulation Research,2013,112(4):595-600.
Exosome mediated miR-19b effect on the replication of EV71
Li Yanmei1, Cheng Xiaju1, Wang Yan2
(1. Institute of Biology and Medical Sciences, Soochow University, Suzhou 215123, China; 2. Suzhou Municipal Hospital, Suzhou 215008, China)
Abstract: [Objective]The paper aims to examine exosome mediated miR-19b effect on the replication of Enterovirus 71 in T98G cells. [Methods]T98G cells were treated with miR-19b molec μles and exosomes secreted by miR-19b-cy3.5 transfected HT29 cells to determine their entry mode. T98G cells were respectively treated with exosomes secreted by normal HT29 cells, mimic-n.c. transfected HT29 cells and miR-19b transfected HT29 cells to detect miR-19b expression. 60 mg/L? exosomes secreted by mimic-n.c. transfected HT29 cells, 60 mg/L? and 40 mg/L? exosomes secreted by miR-19b transfected HT29 cells were respectively co-c μltured with EV71 to detect the expression of viral RNA. [Results]The expression of miR-19b in mice was detected by intravenous injection of exosomes secreted by miR-19b-cy3.5 transfected HT29 cells. miR-19b mediated by exosomes co μld enter T98G cells. miR-19b was highly expressed in T98G cells treated with exosomes secreted by miR-19b transfected HT29 cells. The virus RNA significantly decreased in T98G cells treated with the exosomes secreted by miR-19b transfected HT29 cells. [Conclusion]miR-19b mediated by exosomes was expressed in the brain, liver and lungs of mice. exosomes mediated miR-19b was highly expressed in T98G cells, and concentration dependent inhibition of EV71 replication. It is expressed in mice brain, liver and lung.
Keywords: miR-19b; EV71; exosomes; microRNA
[責任編校 劉洋 楊浦]
收稿日期:2022-01-06;修回日期:2022-04-23.
基金項目:國家自然科學基金(81902913);江蘇高校優(yōu)勢學科建設工程資助項目(PAPD).
作者簡介:李艷梅(1984-),女,山西呂梁人,蘇州大學助理研究員,研究方向為生物顯微技術與感染免疫,E-mail:yanmeili1031@163.com.
通信作者:王燕,E-mail:wooyan@yeah.net.