鄺敏,嚴(yán)玉晶,林嘉明,汪梅,黃醒鵬,李玲,張正(廣東一方制藥有限公司/廣東省中藥配方顆粒企業(yè)重點(diǎn)試驗(yàn)室,廣東 佛山 528244)
丹參為唇形科植物丹參Salvia miltiorrhizaBge.的干燥根和根莖,性微寒,味苦,具有活血祛瘀、通經(jīng)止痛、清心除煩、涼血消癰的功效。臨床上常用于胸痹心痛、膠腹脅痛、癥痕積聚、熱痹疼痛、心煩不眠、月經(jīng)不調(diào)、痛經(jīng)經(jīng)閉、瘡瘍腫痛[1]。丹參含有二萜類、三萜類、酚酸類、黃酮類及生物堿類等化合物,其中脂溶性二萜類與水溶性酚酸類化合物是丹參的主要活性成分[2]?,F(xiàn)代研究表明,酚酸類化合物具有抗腫瘤、抗氧化、抗高血壓、抗動(dòng)脈粥樣硬化、保護(hù)心肌細(xì)胞和抗胃潰瘍等藥理作用[3-8]。
丹參配方顆粒是在中醫(yī)藥理論指導(dǎo)下,用符合藥典標(biāo)準(zhǔn)的丹參飲片經(jīng)現(xiàn)代工業(yè)水提、分離、濃縮、干燥、制粒而成的中藥產(chǎn)品;其性味、歸經(jīng)、功效與丹參飲片一致,不含糖、防腐劑和其他賦形劑。用其代替丹參飲片供臨床配方使用,既保持了丹參飲片的藥性藥效,又具有免煎煮、易于調(diào)劑、方便服用等優(yōu)點(diǎn)。中藥有效成分復(fù)雜多樣,單一指標(biāo)成分評(píng)價(jià)難以準(zhǔn)確反映中藥內(nèi)在質(zhì)量,具有一定的局限性。而多指標(biāo)質(zhì)量評(píng)價(jià)模式需要的對(duì)照品種類繁多,且部分對(duì)照品存在難分離、造價(jià)高、穩(wěn)定性差等問(wèn)題。王智民等[9]提出的一測(cè)多評(píng)(quantitative analysis of multicomponents by single-marker,QAMS)法是利用一種相對(duì)易得、廉價(jià)的對(duì)照品作為內(nèi)參物,同時(shí)實(shí)現(xiàn)多個(gè)同類型化合物含量測(cè)定的多指標(biāo)質(zhì)量控制方法。該方法克服了對(duì)照品緊缺、檢測(cè)成本高等困難,適合中藥多指標(biāo)質(zhì)量評(píng)價(jià)檢測(cè)。丹參配方顆粒作為中藥新劑型在現(xiàn)代臨床被廣泛使用,但目前針對(duì)丹參配方顆粒整體質(zhì)量控制的研究較少。因此,本試驗(yàn)采用QASM法同時(shí)測(cè)定丹參配方顆粒中丹參素、原兒茶醛、咖啡酸、丹酚酸E、迷迭香酸、紫草酸和丹酚酸B的含量,以期為提高丹參配方顆粒整體質(zhì)量控制提供參考。
Waters Arc型高效液相色譜儀(美國(guó)Waters公司);Agilent 1290型高效液相色譜儀(美國(guó)Agilent公司);XP26型百萬(wàn)分之一天平、ME204E型萬(wàn)分之一天平(瑞士METTLER TOLEDO公司);Milli-Q Direct型超純水系統(tǒng)(德國(guó)Merck公司);KQ-500DE型數(shù)控超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司)。
對(duì)照品原兒茶醛(批號(hào):110810-201909,純度:99.6%)、咖啡酸(批號(hào):110885-201703,純度:99.7%)、迷迭香酸(批號(hào):111871-202007,純度:98.1%)、丹酚酸B(批號(hào):111562-201917,純度:96.6%)(中國(guó)食品藥品檢定研究院);丹參素(批號(hào):DSTDD001501,純度:98.79%,成都樂(lè)美天醫(yī)藥科技有限公司);紫草酸(批號(hào):wkq21031202,純度:99.31%,四川省維克奇生物科技有限公司);丹酚酸E(批號(hào):040169-202203,純度:97.75%,上海鴻永生物科技有限公司)。甲醇、乙腈為色譜純(德國(guó)Merck股份有限公司);磷酸為色譜純(天津市科密歐化學(xué)試劑有限公司);水為超純水;其他試劑均為分析純。12批丹參配方顆粒(編號(hào):DS-1~DS-12)均由廣東一方制藥有限公司制備。
色譜柱:Waters Xselect HSS T3(250 mm×4.6 mm,5 μm);流動(dòng)相:乙腈(A)-0.05%磷酸溶液(B),梯度洗脫(0~15 min,10%~20%A;15~40 min,20%~25%A;40~50 min,25%~30%A;50~51 min,30%~10%A;51~56 min,10%A);流速:1.2 mL·min-1;柱溫:25℃;檢測(cè)波長(zhǎng):286 nm;進(jìn)樣量:10 μL。
分別取丹參素、原兒茶醛、咖啡酸、丹酚酸E、迷迭香酸、紫草酸、丹酚酸B對(duì)照品適量,精密稱定,加80%甲醇制成質(zhì)量濃度分別為50.699、10.558、2.161、11.300、19.777、20.100、108.540 μg·mL-1的混合對(duì)照品溶液。
取丹參配方顆粒適量,研細(xì),取約0.2 g,精密稱定,置具塞錐形瓶中,精密加入80%甲醇100 mL,稱重,超聲處理(功率140 W,頻率42 kHz)30 min,取出,放冷,再稱重,用80%甲醇補(bǔ)足減失的重量,搖勻,取續(xù)濾液,即得。
2.4.1 專屬性試驗(yàn) 分別精密吸取空白溶劑、混合對(duì)照品溶液及供試品溶液(編號(hào)DS-2),按“2.1”項(xiàng)下色譜條件進(jìn)樣測(cè)定,結(jié)果見(jiàn)圖1??梢?jiàn),供試品溶液色譜在與對(duì)照品溶液色譜相應(yīng)的保留時(shí)間處具有相同的色譜峰,且空白溶劑無(wú)干擾,表明該方法專屬性良好。
圖1 專屬性試驗(yàn)HPLC色譜圖Fig 1 HPLC chromatogram of specific test
2.4.2 線性關(guān)系考察 分別精密吸取“2.2”項(xiàng)下混合對(duì)照品溶液0.5、1.0、3.0、5.0、8.0、10 mL,置10 mL量瓶中,加80%甲醇稀釋至刻度,搖勻,制成系列質(zhì)量濃度的混合對(duì)照品溶液。按“2.1”項(xiàng)下色譜條件進(jìn)樣測(cè)定,記錄色譜圖,以對(duì)照品溶液質(zhì)量濃度(μg·mL-1)為橫坐標(biāo)(X),以峰面積為縱坐標(biāo)(Y),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,結(jié)果見(jiàn)表1??芍?個(gè)成分在相應(yīng)質(zhì)量濃度范圍內(nèi)與峰面積呈良好的線性關(guān)系。
表1 7個(gè)成分的線性關(guān)系考察結(jié)果Tab 1 Linearity of 7 components
2.4.3 精密度考察 分別精密吸取混合對(duì)照品溶液(丹參素、原兒茶醛、咖啡酸、丹酚酸E、迷迭香酸、紫草酸、丹酚酸B質(zhì)量濃度分別為50.325、10.933、2.089、12.132、20.014、20.256、110.587 μg·mL-1)1.0、5.0、10 mL,置10 mL量瓶中,加80%甲醇稀釋至刻度,搖勻,制成低、中、高濃度的混合對(duì)照品溶液。按“2.1”項(xiàng)下色譜條件分別連續(xù)進(jìn)樣6次,計(jì)算色譜峰峰面積RSD,測(cè)定日內(nèi)精密度;分別連續(xù)進(jìn)樣6次,連續(xù)測(cè)定3 d,計(jì)算色譜峰峰面積RSD,測(cè)定日間精密度;結(jié)果7個(gè)成分低、中、高質(zhì)量濃度日內(nèi)精密度RSD在0.38%~2.1%,日間精密度RSD在1.2%~3.7%,表明方法日內(nèi)精密度良好。
2.4.4 穩(wěn)定性試驗(yàn) 取丹參配方顆粒(編號(hào)DS-2),精密稱定,按“2.3”項(xiàng)下方法制備供試品溶液,分別在0、4、8、12、24、48 h進(jìn)樣測(cè)定,計(jì)算得丹參素、原兒茶醛、咖啡酸、丹酚酸E、迷迭香酸、紫草酸、丹酚酸B峰面積的RSD分別為0.43%、0.52%、1.3%、0.80%、1.2%、1.1%、0.28%,表明供試品溶液在48 h內(nèi)穩(wěn)定性良好。
2.4.5 重復(fù)性試驗(yàn) 取丹參配方顆粒(編號(hào)DS-2),精密稱定,平行6份,按“2.3”項(xiàng)下方法制備供試品溶液,進(jìn)樣測(cè)定。計(jì)算得丹參素、原兒茶醛、咖啡酸、丹酚酸E、迷迭香酸、紫草酸、丹酚酸B含量的RSD分別為1.5%、0.92%、2.3%、0.59%、2.3%、1.5%、0.60%,表明方法重復(fù)性良好。
2.4.6 加樣回收試驗(yàn) 取已知含有量的丹參配方顆粒(編號(hào)DS-2)適量,精密稱取9份,每份約0.1 g,置具塞錐形瓶中,分為3組,每組分別精密加入相當(dāng)于含有量50%、100%、150%的混合對(duì)照品溶液,按“2.3”項(xiàng)下方法制備供試品溶液,進(jìn)樣測(cè)定,計(jì)算得到丹參素、原兒茶醛、咖啡酸、丹酚酸E、迷迭香酸、紫草酸、丹酚酸B的平均加樣回收率均在97.50%~105.59%,RSD均小于5.0%,表明該方法準(zhǔn)確度良好。
2.5.1 相對(duì)校正因子(f)的確定 取“2.2”項(xiàng)下混合對(duì)照品溶液0.5、1.0、3.0、5.0、8.0、10 mL,置10 mL量瓶中,加80%甲醇稀釋至刻度,搖勻,進(jìn)樣測(cè)定,以原兒茶醛作為內(nèi)參物,計(jì)算丹參素、咖啡酸、丹酚酸E、迷迭香酸、紫草酸、丹酚酸B的相對(duì)校正因子。公式為fs/i=fs/fi=(As/Cs)/(Ai/Ci)=(As×Ci)/(Ai×Cs),式中As為內(nèi)參物峰面積,Cs為內(nèi)參物濃度,Ai為某待測(cè)成分峰面積,Ci為某待測(cè)成分濃度[10]。計(jì)算得相對(duì)校正因子,結(jié)果見(jiàn)表2。
表2 6個(gè)成分的相對(duì)校正因子(n=6)Tab 2 Relative correction factors of 6 components (n=6)
2.5.2 不同測(cè)定儀器及色譜柱對(duì)相對(duì)校正因子的影響 以原兒茶醛為內(nèi)參物,考察其他6個(gè)成分在不同高效液相色譜儀Waters Arc型、Agilent 1290型,以及不同色譜柱Waters Xselect HSS T3(250 mm×4.6 mm,5 μm)、Waters Xbridge C18(250 mm×4.6 mm,5 μm)、Athena C18-WP(250 mm×4.6 mm,5 μm)下的相對(duì)校正因子,結(jié)果見(jiàn)表3,各成分的相對(duì)校正因子RSD均小于3.0%,表明不同色譜系統(tǒng)和色譜柱對(duì)各成分相對(duì)校正因子無(wú)顯著影響。
表3 不同色譜儀和色譜柱對(duì)相對(duì)校正因子的影響(n=3)Tab 3 Influence of instrument and column on relative correction factors (n=3)
2.5.3 不同流速對(duì)相對(duì)校正因子的影響 以原兒茶醛為內(nèi)參物,考察其他6個(gè)成分在不同流速(0.8、1.0、1.2、1.5 mL·min-1)下的相對(duì)校正因子,結(jié)果見(jiàn)表4,各成分的相對(duì)校正因子RSD均小于3.0%,表明不同流速對(duì)各成分相對(duì)校正因子無(wú)顯著影響。
表4 不同流速對(duì)相對(duì)校正因子的影響(n=3)Tab 4 Influence of flow rate on relative correction factors (n=3)
2.5.4 不同柱溫對(duì)相對(duì)校正因子的影響 以原兒茶醛為內(nèi)參物,考察其他6個(gè)成分在不同柱溫(25、30、35、40℃)下的相對(duì)校正因子,結(jié)果見(jiàn)表5,各成分的相對(duì)校正因子RSD均小于3.0%,表明不同柱溫對(duì)各成分相對(duì)校正因子無(wú)顯著影響。
表5 不同柱溫對(duì)相對(duì)校正因子的影響(n=3)Tab 5 Influence of column temperature on relative correction factors (n=3)
2.5.5 不同進(jìn)樣體積對(duì)相對(duì)校正因子的影響 以原兒茶醛為內(nèi)參物,考察其他6個(gè)成分在不同進(jìn)樣體積(5、8、10、12、15 μL)下的相對(duì)校正因子,結(jié)果見(jiàn)表6,各成分的相對(duì)校正因子RSD均小于5.0%,表明不同流速對(duì)各成分相對(duì)校正因子無(wú)顯著影響。
表6 不同進(jìn)樣體積對(duì)相對(duì)校正因子的影響(n=3)Tab 6 Influence of injection volume velocity on relative correction factors (n=3)
采用不同色譜儀及色譜柱測(cè)定時(shí),待測(cè)成分的保留時(shí)間會(huì)有所波動(dòng),目前在QAMS研究中常用的色譜峰定位方法有相對(duì)保留值法、保留時(shí)間差法、時(shí)間校正法、對(duì)照提取物法等。本試驗(yàn)采用相對(duì)保留值法,計(jì)算公式為ti/s=ti/ts[11-14]。以原兒茶醛為內(nèi)參物,考察其他6個(gè)成分在不同高效液相色譜儀(Waters Arc型、Agilent 1290型)及不同色譜柱[Waters Xselect HSS T3(250 mm×4.6 mm,5 μm)、Waters Xbridge C18(250 mm×4.6 mm,5 μm)、Athena C18-WP(250 mm×4.6 mm,5 μm)]下的相對(duì)保留值,結(jié)果見(jiàn)表7,各成分相對(duì)保留值的RSD<3.0%,表明不同色譜系統(tǒng)和色譜柱對(duì)各成分相對(duì)保留值無(wú)顯著影響。
表7 不同色譜儀和色譜柱對(duì)相對(duì)保留值的影響(n=3)Tab 7 Influence of instrument and column on relative retention time (n=3)
取12批丹參配方顆粒適量(DS-1~DS-12),精密稱定,按“2.3”項(xiàng)下方法制備供試品溶液,按“2.1”項(xiàng)下色譜條件進(jìn)樣測(cè)定,分別采用QAMS和ESM法測(cè)定各成分含量,利用SPSS 26.0軟件對(duì)兩組結(jié)果進(jìn)行Pearson相關(guān)系數(shù)(r)分析,結(jié)果見(jiàn)表8。兩種方法之間的r均為1.000,兩種方法計(jì)算的含量具有高相關(guān)性(P>0.05)。使用QAMS和ESM法測(cè)定丹參配方顆粒中丹參素、咖啡酸、丹酚酸E、迷迭香酸、紫草酸、丹酚酸B的含量,計(jì)算兩種測(cè)定方法下的相對(duì)誤差(RAD),RAD(%)=[(QAMS計(jì)算值-ESM實(shí)測(cè)值)/外標(biāo)法實(shí)測(cè)值]×100%[15],結(jié)果顯示丹參素、咖啡酸、丹酚酸E、迷迭香酸、紫草酸、丹酚酸B的相對(duì)誤差范圍分別為0.43%~0.53%、0.00%~3.70%、0.00%~0.34%、1.71%~2.01%、2.53%~2.93%、1.69%~1.73%,說(shuō)明建立的丹參配方顆粒QAMS準(zhǔn)確可行。
表8 6個(gè)成分的含量測(cè)定結(jié)果(n=3,%)Tab 8 Content determination of 6 components (n=3,%)
本研究對(duì)供試品溶液的提取方式(超聲法、回流法)、提取溶劑(水、30%甲醇、50%甲醇、80%甲醇、甲醇)、提取時(shí)間(20、30、40 min)進(jìn)行考察。結(jié)果表明,本研究供試品制備方法操作簡(jiǎn)便,且供試品溶液色譜峰峰面積、分離度均較好。
本研究比較了甲醇、乙腈兩種有機(jī)溶劑和不同濃度的磷酸、甲酸、醋酸組合的流動(dòng)相體系,發(fā)現(xiàn)使用乙腈作為有機(jī)相較甲醇洗脫能力強(qiáng),峰分離度好,使用磷酸作為水相時(shí)色譜圖基線更平穩(wěn),噪音小。乙腈-0.05%磷酸洗脫時(shí)目標(biāo)峰與相鄰雜質(zhì)峰分離度均大于1.5,峰形良好,故采用該流動(dòng)相系統(tǒng)。采用PDA檢測(cè)器在210~400 nm內(nèi)對(duì)供試品溶液進(jìn)行掃描,得到3D色譜圖,發(fā)現(xiàn)在286 nm時(shí)各組分的響應(yīng)值較強(qiáng),各待測(cè)成分色譜峰純度角均小于純度閾值,各色譜峰無(wú)雜質(zhì)干擾,因此選擇286 nm作為檢測(cè)波長(zhǎng)。
原兒茶醛相較于其他丹參酚酸類成分化學(xué)性質(zhì)穩(wěn)定,對(duì)照品價(jià)廉易得,且使用HPLC法測(cè)定時(shí)響應(yīng)值高[16],因此本次研究選擇原兒茶醛為內(nèi)參物,保證所建立方法穩(wěn)定可靠,同時(shí)達(dá)到降本增效的目的。
本研究建立QAMS法同時(shí)測(cè)定丹參中7個(gè)酚酸類成分,所選用的內(nèi)參物原兒茶醛化學(xué)性質(zhì)穩(wěn)定、來(lái)源充足,供試品溶液制備方法簡(jiǎn)便,可用于快速定量制劑中的各指標(biāo)成分,全面反映丹參配方顆粒的內(nèi)在質(zhì)量。各色譜峰分離度好,通過(guò)方法學(xué)驗(yàn)證、相對(duì)校正因子確認(rèn)、耐用性考察、色譜峰的定位等過(guò)程驗(yàn)證,證明建立的方法科學(xué)可靠,穩(wěn)定性良好,可為丹參配方顆粒的整體質(zhì)量控制和質(zhì)量評(píng)價(jià)提供參考。