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    半夏水溶性成分抗氧化活性譜效關(guān)系研究

    2023-06-07 06:40:18張雪麗楊長福李瑋楊菁劉杰英楊濤林昶貴州中醫(yī)藥大學(xué)貴陽550025貴州中醫(yī)藥大學(xué)林下中藥材研究中心貴陽550025
    中南藥學(xué) 2023年5期
    關(guān)鍵詞:水提液蒸餾水關(guān)聯(lián)度

    張雪麗,楊長福,李瑋,楊菁,劉杰英,楊濤,林昶,2*(. 貴州中醫(yī)藥大學(xué),貴陽 550025;2. 貴州中醫(yī)藥大學(xué) 林下中藥材研究中心,貴陽 550025)

    半夏為天南星科植物半夏Pinellia ternata(Thunb.)Breit.的干燥塊莖[1],主要化學(xué)成分為生物堿類、有機(jī)酸類、多糖、黃酮類、揮發(fā)油、半夏蛋白、氨基酸以及微量元素等[2-3],具有鎮(zhèn)咳祛痰、鎮(zhèn)吐、抗早孕、抗?jié)?、抗腫瘤、降血脂、抗動脈粥樣硬化等藥理作用[4-5]。此外,半夏還具有抗氧化活性,研究發(fā)現(xiàn)其與心血管疾病、動脈粥樣硬化[6]、腫瘤及炎癥[7]等的發(fā)生密切相關(guān)。在半夏抗氧化能力研究中,有學(xué)者發(fā)現(xiàn)以 DPPH 和羥基自由基(·OH)為抗氧化指標(biāo),半夏多糖均有清除效果,且對DPPH的清除能力大于·OH[8];半夏生物堿同樣具有抗氧化能力[9],分別以DPPH自由基、超氧陰離子自由基(O2-·)、·OH進(jìn)行研究,其清除率呈減小趨勢,對DPPH自由基的清除能力最大。此外半夏中β-谷甾醇、半夏水提液[10]、醇提液[11]同樣具有抗氧化能力,但半夏水提液及醇提液中抗氧化活性成分的物質(zhì)基礎(chǔ)及半夏中其他成分是否具有抗氧化活性,目前尚未見相關(guān)研究報道。本文通過灰色關(guān)聯(lián)度及偏最小二乘回歸分析研究半夏HPLC指紋圖譜與抗氧化活性的譜效關(guān)系,初步篩選出與抗氧化活性相關(guān)的色譜峰,可為進(jìn)一步揭示半夏水提液抗氧化活性成分提供參考。

    1 材料

    1.1 儀器

    UltiMate3000高效液相色譜儀、1530型酶標(biāo)儀[賽默飛世爾科技(中國)有限公司],LCLX-L408型臺式低速離心機(jī)(上海力辰邦西儀器科技有限公司),AUW220D型分析天平(蘇州島津儀器有限公司),SHZ-Ⅲ循環(huán)水式真空泵(上海亞榮生化儀器廠),YQ-1000A超聲波清洗儀(上海易凈超聲波儀器有限公司),WP-UP-WF-20微量分析型超純水機(jī)(四川沃特爾水處理設(shè)備有限公司)。

    1.2 試藥

    對照品鳥苷(純度:93.6%,批號:111977-201501)、腺苷(純度:99.7%,批號:110879-201703)、尿苷(純度:99.5%,批號:110887-201803)、腺嘌呤(純度:99.4%,批號:110886-201102)、尿嘧啶(純度:99.6%,批號:100469-201302)(中國食品藥品檢定研究院);對照品β-胸苷(純度:98.0%,批號:C100897-211107,貴州迪大科技有限責(zé)任公司);三羥甲基氨基甲烷(Tris,批號:C13383711)、硝基四氮唑藍(lán)(NBT,批號:C13692681)(上海麥克林生化科技有限公司);吩嗪硫酸甲酯(PMS,批號:H2131077)、還原性輔酶Ⅰ二鈉鹽(β-NADH,批號:L2115726)、2,4,6-三(2-吡啶基)三嗪(TPTZ,批號:T819085)、2,2'-聯(lián)氨-雙(3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸)二胺鹽(ABTS,批號A109612)(美國阿拉丁工業(yè)公司);乙腈、甲醇為色譜純;水為超純水;其他試劑均為分析純。

    市售的不同批次半夏藥材均由貴州中醫(yī)藥大學(xué)魏升華教授鑒定為天南星科植物半夏Pinellia ternata(Thunb.)Breit.的干燥塊莖,詳見表1。

    表1 半夏樣品產(chǎn)地信息Tab 1 Origin information for Pinelliae Rhizoma sample

    2 方法與結(jié)果

    2.1 半夏HPLC指紋圖譜研究

    2.1.1 供試品溶液的制備 取半夏粉末(過四號篩)2.0 g,精密稱定,置于錐形瓶中,精密加入20 mL蒸餾水,稱重,超聲60 min(500 W,50 Hz),冷卻后,補(bǔ)重,4000 r·min-1離心5 min,取上清液過0.45 μm微孔濾膜,即可。

    2.1.2 對照品溶液的制備 取尿嘧啶、尿苷、腺嘌呤、鳥苷、β-胸苷、腺苷對照品適量,精密稱定,以蒸餾水溶解后定容至10 mL,再分別取1 mL以蒸餾水定容至10 mL,配制成含有19.4 μg·mL-1尿嘧啶、12.2 μg·mL-1尿苷、11.1 μg·mL-1腺嘌呤、12.1 μg·mL-1鳥苷、10.7 μg·mL-1β-胸苷、11.6 μg·mL-1腺苷的混合對照品溶液,過0.45 μm的微孔濾膜,備用。

    2.1.3 色譜條件 色譜柱:Welch Ultimate AQC18(250 mm×4.6 mm,5 μm),流動相:乙腈(A)-水(B),梯度洗脫(0~10 min,1%A,10~25 min,1%~2%A,25~45 min,2%~15%A,45~50 min,15%~20%A,50~60 min,20%~10%A);柱溫30℃;檢測波長260 nm;流速0.8 mL·min-1;進(jìn)樣量10 μL。

    2.2 方法學(xué)考察

    2.2.1 精密度試驗(yàn) 取供試品溶液,連續(xù)進(jìn)樣6次,將5號尿苷色譜峰定為參照峰(S)。計(jì)算得到各共有峰相對保留時間、相對峰面積的RSD值均<3%,表明儀器精密度良好。

    2.2.2 重復(fù)性試驗(yàn) 取同一批次半夏粉末(S12)2.0 g,精密稱定,按“2.1.1”項(xiàng)下方法平行制備6份供試品溶液,進(jìn)樣分析,計(jì)算得到各共有峰相對保留時間、相對峰面積的RSD均<3%,表明該法重復(fù)性良好。

    2.2.3 穩(wěn)定性試驗(yàn) 取半夏供試品溶液,分別于0、2、4、6、8、12 h進(jìn)樣測定,計(jì)算得到各共有峰相對保留時間、相對峰面積的RSD均<3%,表明供試品溶液在12 h內(nèi)穩(wěn)定性良好。

    2.3 HPLC指紋圖譜的建立

    分別取30批次的半夏粉末2.0 g,精密稱定,按“2.1.1”項(xiàng)下方法制備供試品溶液,按“2.1.3”項(xiàng)下色譜條件進(jìn)樣測定,記錄色譜圖,導(dǎo)入中藥色譜指紋圖譜相似度評價軟件(2012版)[12],以S5樣品色譜圖為參照指紋圖譜,確定了15個共有峰,建立半夏HPLC共有模式生成對照圖譜,結(jié)果見圖1、2。30批半夏指紋圖譜相似度在0.749~0.989,其中除S24、S25兩個產(chǎn)地外,其他產(chǎn)地相似度均大于0.850,相似度結(jié)果見表2。通過混合對照品溶液HPLC色譜峰對比,指認(rèn)了其中6個成分,分別是3號峰尿嘧啶、5號峰尿苷、6號峰腺嘌呤、7號峰鳥苷、9號峰β-胸苷、11號峰腺苷,見圖3。

    圖1 半夏的對照指紋圖譜(R)及指紋圖譜Fig 1 Control fingerprint(R)and fingerprint of Pinelliae Rhizoma

    圖2 半夏HPLC對照指紋圖譜Fig 2 Control fingerprint of Pinelliae Rhizoma

    圖3 混合對照品HPLC色譜圖Fig 3 HPLC chromatogram of mixed reference substance

    表2 30批半夏指紋圖譜相似度分析結(jié)果Tab 2 Fingerprint similarity of 30 batches of Pinelliae Rhizoma

    2.4 體外抗氧化活性測定

    2.4.1 ABTS自由基清除率 參考文獻(xiàn)方法[13],并稍作修改,制備ABTS儲備液,臨用時以蒸餾水稀釋,即得ABTS工作液。另取“2.1.1”項(xiàng)下供試品溶液31.3、62.5、125、250、500、1000 μL于2 mL量瓶中,用蒸餾水定容至刻度線,即得不同濃度半夏水提液,分別設(shè)置空白組(蒸餾水20 μL+ABTS工作液180 μL,測定吸光度記為A0),樣品組(半夏水提液20 μL+ABTS工作液180 μL,測定吸光度記為A1),對照組(半夏水提液20 μL+蒸餾水180 μL,置于96孔板中混勻,避光室溫下靜置5 min,酶標(biāo)儀中振蕩1 min,測定吸光度記為A2),重復(fù)3次,每次3個復(fù)孔。按公式(1)計(jì)算不同濃度樣品液清除率,導(dǎo)入SPSS 26.0計(jì)算不同產(chǎn)地樣品IC50值(以生藥濃度計(jì)算),結(jié)果見表3。

    表3 30批半夏體外抗氧化活性測定結(jié)果Tab 3 In vitro antioxidant activity of 30 batches of Pinelliae Rhizoma

    2.4.2 O2-·清除率 參考文獻(xiàn)方法[14-15],以16 mmol·L-1的Tris-HCl緩沖液分別配制150 μmol·L-1NBT、234 μmol·L-1NADH和30 μmol·L-1PMS溶液,置于4℃冰箱保存?zhèn)溆?。另取?.4.1”項(xiàng)下稀釋的不同濃度的半夏水提液,分別設(shè)置空白組(蒸餾水10 μL+100 μL NBT溶液+100 μL NADH溶液+100 μL PMS溶液,測定吸光度記為A0),樣品組(半夏水提液代替空白組中蒸餾水,測定吸光度記為A1),對照組(半夏水提液10 μL+300 μL Tris-HCl緩沖液,于96孔板中混勻,室溫下反應(yīng)5 min,測定吸光度記為A2),重復(fù)3次,每次3個復(fù)孔。按公式(1)計(jì)算清除率,導(dǎo)入SPSS 26.0計(jì)算不同產(chǎn)地樣品IC50值(以生藥濃度計(jì)算),結(jié)果見表3。

    2.4.3 總抗氧化能力(FRAP)法 參考文獻(xiàn)方法[16],制備FRAP工作液。分別設(shè)置空白組(蒸餾水20 μL+FRAP工作液180 μL,測定吸光度記為A0),樣品組[半夏水提液代替空白組中蒸餾水,于96孔板中混勻,酶標(biāo)儀(37℃)下靜置10 min,測定吸光度記為A1]。另參考文獻(xiàn)方法[17],配制濃度分別為0.10、0.20、0.40、0.60、0.80以及1.00 mmol·L-1的FeSO4溶液,同上測定A值,以FeSO4濃度為橫坐標(biāo),(A1-A0)為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。分別計(jì)算半夏水提液總抗氧化能力(FeSO4值)。重復(fù)3次,每次3個復(fù)孔,結(jié)果見表3。

    2.5 譜效關(guān)系研究

    2.5.1 灰色關(guān)聯(lián)度分析 由灰色系統(tǒng)理論,分別以“2.4”項(xiàng)下3種方法測得半夏抗氧化活性為參考序列,30批供試品半夏藥材的共有峰峰面積為比較序列,參考文獻(xiàn)方法[16]對數(shù)據(jù)進(jìn)行處理,結(jié)果見表4,ABTS法測定的抗氧化活性與各峰關(guān)聯(lián)度排名為色譜峰1>5>11>14>10>12>7>2>4>9>6>15>3>8>13,關(guān)聯(lián)度均大于0.75;FRAP法測定的抗氧化活性與各峰關(guān)聯(lián)度排名為色譜峰6>7>9>15>14>4>5>1>13>12>8>10>2>11>3,關(guān)聯(lián)度均大于0.80;O2-·法測定的抗氧化活性與各峰關(guān)聯(lián)度排名為色譜峰5>6>7>14>1>12>9>3>8>11>4>15>2>10>13,關(guān)聯(lián)度均大于0.75,峰5、6、7、14在兩個抗氧化指標(biāo)中關(guān)聯(lián)度居于前五位,其與抗氧化活性關(guān)聯(lián)性最強(qiáng)。

    表4 抗氧化活性與各峰之間關(guān)聯(lián)度Tab 4 Correlation between antioxidant activity and chromatographic peaks

    2.5.2 偏最小二乘回歸分析 參考文獻(xiàn)方法[17-18],利用 SIMCA 14.1 軟件,以30批半夏水提物的ABTS、O2-·清除率的IC50、FeSO4值為因變量x,共有峰峰面積為自變量y,運(yùn)用偏最小二乘回歸分析,計(jì)算標(biāo)準(zhǔn)化回歸系數(shù)和VIP值,評價半夏水提物與抗氧化活性之間的關(guān)聯(lián)。結(jié)果以ABTS為指標(biāo),與之成正相關(guān)的峰,貢獻(xiàn)程度由大到小為峰14、5、4、12;與之成負(fù)相關(guān)的峰,貢獻(xiàn)程度由大到小為峰6、8、3、10、11、15、2、7、1、13、9。以FRAP為指標(biāo),與之成正相關(guān)的峰,貢獻(xiàn)程度由大到小為峰1、13、8、2、6、14、12、10、4;與之成負(fù)相關(guān)的峰,貢獻(xiàn)程度由大到小為峰5、11、9、3、15、7。以·為指標(biāo),與之成正相關(guān)的峰,貢獻(xiàn)程度由大到小為峰10、3、7、2、14、5、9;與之成負(fù)相關(guān)的峰,貢獻(xiàn)程度由大到小為峰4、1、13、12、15、11、6、8(見圖4)。VIP值被稱為變量投影重要性指標(biāo)[19],在統(tǒng)計(jì)分析中用其表示x對y的解釋能力,當(dāng)VIP值(>1)越大,其相對解釋能力則越強(qiáng),以ABTS為指標(biāo),VIP>1的峰由大到小為峰5、14、6、7、8;以FRAP為指標(biāo),VIP>1的峰由大到小為峰5、11、6、13、15;以O(shè)2-·為指標(biāo),VIP>1的峰由大到小為峰11、7、1、4、10、2、13,以上3個指標(biāo)中VIP>1的峰5、6、7、11均出現(xiàn)兩次(不同指標(biāo)中排名前五),峰14雖然只出現(xiàn)一次,但其偏回歸系數(shù)在ABTS中正相關(guān)程度最高,且結(jié)合灰色關(guān)聯(lián)度法的分析結(jié)果,得到與半夏抗氧化活性相關(guān)聯(lián)性最密切的幾個峰為5(尿苷)、6(腺嘌呤)、7(鳥苷)、11(腺苷)、14號峰(見圖5)。

    圖4 半夏提取物各共有峰與抗氧化指標(biāo)間偏回歸系數(shù)Fig 4 Partial regression coefficient between common peaks of Pinelliae Rhizoma extract and antioxidant indexes

    圖5 半夏提取物各共有峰與抗氧化指標(biāo)間VIP值Fig 5 VIP value between common peaks of Pinelliae Rhizoma extract and antioxidant indexes

    3 討論

    本研究前期建立指紋圖譜時,考察了不同的流動相(乙腈-0.1%磷酸水、乙腈-水、甲醇-水)對樣品的洗脫效果,結(jié)果乙腈-水為流動相時,基線較平穩(wěn),分離效果較好;對210、260、310 nm 3個波長進(jìn)行考察,在260 nm波長下,色譜圖的整體效果較好,大多數(shù)成分均有吸收,色譜峰較多,因此選擇了檢測波長為260 nm;考察流速分別為0.6、0.8、1.0 mL·min-1時色譜峰分離度,結(jié)果流速在0.8 mL·min-1時色譜峰的峰形及分離效果均較好,故選擇了流速為0.8 mL·min-1。此外對提取條件進(jìn)行了考察,分別考察了不同提取方法(超聲及回流法),不同提取溶劑(蒸餾水、5%甲醇、10%甲醇),不同提取時間(30、60、90 min)及不同料液比(1∶5、1∶10、1∶15),結(jié)果以文中提取條件最佳。

    體外抗氧化的研究方法較多,諸如化學(xué)分析法及細(xì)胞抗氧化活性法等[20],在化學(xué)分析法中又分為基于還原能力測定的鐵離子還原能力(FRAP),銅離子還原能力及普魯士藍(lán)法,基于自由基清除能力測定的ABTS法[12]、DPPH法[13]、·OH法及O2-·等[20]方法,其中FRAP法在天然植物的抗氧化能力研究中應(yīng)用較多,但局限于測定結(jié)果僅能表明抗氧化劑的還原能力,在體外抗氧化研究中往往與自由基清除能力的測定方法結(jié)合應(yīng)用,更好地說明測定成分的抗氧化能力,本研究發(fā)現(xiàn)半夏水提物中含有多糖類成分,以DPPH法進(jìn)行測定,會產(chǎn)生白色絮狀沉淀,干擾實(shí)驗(yàn)結(jié)果,因此選擇ABTS法結(jié)合O2-·及FRAP法為指標(biāo)進(jìn)行體外抗氧化研究。中藥指紋圖譜因其影響因素多、圖譜復(fù)雜等特點(diǎn),分析時通常需要闡明其不同成分之間的互作關(guān)系,灰色關(guān)聯(lián)度法在一定程度上能較為客觀地體現(xiàn)各變量間的相互影響[21];而偏最小二乘回歸分析在多元統(tǒng)計(jì)分析的基礎(chǔ)上還能建立兩變量間的回歸模型,從而進(jìn)行變量關(guān)系的預(yù)測分析[22],本文綜合灰色關(guān)聯(lián)度法與偏最小二乘回歸分析,分析得到半夏HPLC指紋圖譜中與抗氧化活性關(guān)聯(lián)性最強(qiáng)的幾個峰為5(尿苷)、6(腺嘌呤)、7(鳥苷)、11(腺苷)、14號峰。體外抗氧化的研究報道中尿苷[23]、鳥苷、腺苷[24]均具有抗氧化作用,王惠等[25]在蟬花抑菌抗氧化譜效關(guān)系的研究中篩選出與抗氧化密切相關(guān)的成分中同樣含有鳥苷、腺苷。李兵[26]的研究提示一定劑量的蛹蟲草腺苷可通過調(diào)節(jié)小鼠腎臟抗氧化酶的活力,從而減輕腎臟氧化應(yīng)激所造成的損傷。文中并未指認(rèn)出14號峰,后續(xù)可通過液質(zhì)聯(lián)用等手段繼續(xù)研究。

    研究報道半夏可以降低動脈粥樣硬化內(nèi)膜增生大鼠的血脂水平[27],具有抗動脈粥樣硬化作用,但其作用機(jī)制尚未完全清楚。有學(xué)者以氧化應(yīng)激為切入點(diǎn),研究發(fā)現(xiàn)血管內(nèi)氧自由基及其產(chǎn)物的增加與動脈粥樣硬化密切相關(guān),其中被氧化的低密度脂蛋白會干擾血管合成釋放一氧化氮(NO),使正常的血管舒縮功能受到影響,還能參與調(diào)控相關(guān)因子的表達(dá),從而影響血管內(nèi)皮功能及機(jī)體凝血功能,促進(jìn)動脈粥樣硬化[28],而抗氧化劑可以防止低密度脂蛋白氧化[29],減輕機(jī)體氧化應(yīng)激。本研究中尿苷、鳥苷、腺苷等核苷類成分可在體外發(fā)揮抗氧化作用,體內(nèi)研究表明腺苷A2B受體在機(jī)體內(nèi)也可以參與調(diào)節(jié)血管氧自由基[30],但該核苷類成分是否為半夏機(jī)體內(nèi)抗氧化的物質(zhì)基礎(chǔ),能否減輕機(jī)體氧化損傷還有待進(jìn)一步研究。

    綜上,本文對半夏HPLC指紋圖譜與抗氧化活性的譜效關(guān)系進(jìn)行初步研究,其水溶性成分抗氧化活性為多成分協(xié)同發(fā)揮作用,為半夏體外抗氧化活性物質(zhì)基礎(chǔ)研究提供參考。

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