[摘要] 目的 鑒定圓錐角膜(KC)發(fā)病過(guò)程中的差異表達(dá)基因(DEGs),探討KC潛在發(fā)病機(jī)制。
方法 分別收集5對(duì)KC與正常角膜捐獻(xiàn)者的角膜組織,通過(guò)mRNA表達(dá)譜芯片篩選DEGs;借助KEGG通路富集分析明確其生物學(xué)功能;通過(guò)RT-qPCR驗(yàn)證候選DEGs的表達(dá)水平。
結(jié)果 共篩選出1 885個(gè)DEGs,其功能與TGF-β信號(hào)通路、ErbB信號(hào)通路、鞘磷脂信號(hào)通路、谷氨酸能突觸等有關(guān)。RT-qPCR驗(yàn)證顯示,絲氨酸/蘇氨酸激酶25(STK25)、?;o酶A結(jié)合結(jié)構(gòu)域蛋白4(ACBD4)、鋅指蛋白基因ZBTB38、組織蛋白酶B(CTSB)、3-羥基-3-甲基戊二酰輔酶A還原酶(HMGCR)、血小板凝血酶敏感蛋白的解聚蛋白樣金屬蛋白酶6(ADAMTS6)、DLG相關(guān)蛋白1(DLGAP1)等候選基因的表達(dá)水平與芯片結(jié)果一致。
結(jié)論 明確了KC差異基因表達(dá)譜,為后續(xù)KC發(fā)病機(jī)制的深入研究提供了基礎(chǔ)數(shù)據(jù)。
[關(guān)鍵詞] 圓錐角膜;寡核苷酸序列分析;計(jì)算生物學(xué)
[中圖分類(lèi)號(hào)] R772.23
[文獻(xiàn)標(biāo)志碼] A
[文章編號(hào)] 2096-5532(2023)02-0221-05
doi:10.11712/jms.2096-5532.2023.59.005
[開(kāi)放科學(xué)(資源服務(wù))標(biāo)識(shí)碼(OSID)]
圓錐角膜(KC)是一種常見(jiàn)的退行性角膜疾病,其特征是角膜中央和旁中央?yún)^(qū)基質(zhì)變薄,角膜曲率增加,通常伴有不規(guī)則散光、高度近視等。全世界范圍內(nèi),KC的患病率為5‰~25‰,尤其好發(fā)于青少年。既往研究表明,遺傳和環(huán)境因素是決定KC發(fā)生和發(fā)展的關(guān)鍵要素。系列證據(jù)表明,KC的發(fā)病機(jī)制主要包括膠原纖維排列紊亂、膠原片擴(kuò)張和增寬、基質(zhì)層分裂成多束膠原纖維,最終導(dǎo)致基質(zhì)層變薄。但KC的發(fā)病機(jī)制在分子層面上尚未完全明確。mRNA表達(dá)譜芯片作為一種高通量基因表達(dá)分析平臺(tái),廣泛應(yīng)用于分子診斷、基因表達(dá)譜分析等領(lǐng)域。本研究以KC病人及正常角膜捐獻(xiàn)者的角膜組織為研究對(duì)象,利用人mRNA表達(dá)譜芯片鑒定KC中差異表達(dá)基因(DEGs),并結(jié)合生物信息學(xué)分析初步揭示其生物學(xué)功能,為后續(xù)KC發(fā)病機(jī)制研究提供依據(jù)。
1 材料與方法
1.1 標(biāo)本收集
KC樣本來(lái)自山東第一醫(yī)科大學(xué)附屬眼科醫(yī)院收治的5例角膜移植術(shù)病人術(shù)后組織,其中男4例,女1例,年齡14~21歲,平均(16.0±2.9)歲;其診斷基于病史以及裂隙燈顯微鏡和角膜地形圖等檢查結(jié)果。對(duì)照樣本(CON)為5例健康角膜捐獻(xiàn)者的角膜環(huán),男4例,女1例,年齡15~21歲,平均(18.2±2.4)歲。兩組樣本的性別、年齡差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(Pgt;0.05)。5對(duì)樣本用于mRNA表達(dá)譜芯片檢測(cè)。本研究由山東第一醫(yī)科大學(xué)附屬眼科醫(yī)院倫理委員會(huì)批準(zhǔn)和監(jiān)督,并根據(jù)赫爾辛基宣言的原則進(jìn)行操作。所有參與者均簽署知情同意書(shū)。
1.2 總RNA的提取
將收集的角膜樣本采用Trizol法提取RNA,按照試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行操作,并將純化的RNA保存于-80 ℃冰箱備用。
1.3 DEGs的鑒定
利用上??党缮锟萍脊咎峁┑膍RNA表達(dá)譜芯片(8×60 K,Arraystar)進(jìn)行表達(dá)譜分析。首先將RNA樣品擴(kuò)增并轉(zhuǎn)錄成熒光cDNAs,然后將cDNAs與人mRNA微陣列4.0雜交。清洗和固定后,用安捷倫掃描儀G2505C系統(tǒng)對(duì)陣列進(jìn)行掃描。最后使用GeneSpring GX Version 12.1軟件對(duì)所獲得的原始數(shù)據(jù)進(jìn)行分位數(shù)歸一化和進(jìn)一步的數(shù)據(jù)處理,并對(duì)KC與CON的數(shù)據(jù)集進(jìn)行分層聚類(lèi)分析與火山圖可視化分析。以基因表達(dá)差異倍數(shù)≥2以及統(tǒng)計(jì)學(xué)處理結(jié)果顯示Plt;0.05作為標(biāo)準(zhǔn)鑒定DEGs。
1.4 KEGG通路富集分析
通過(guò)DAVID6.8數(shù)據(jù)庫(kù)(https://david.ncifGcrf.gov/),以Plt;0.05、差異倍數(shù)≥2為界值,對(duì)DEGs進(jìn)行KEGG通路富集分析。
1.5 實(shí)時(shí)熒光定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(RT-qPCR)驗(yàn)證DEGs
根據(jù)試劑盒的說(shuō)明書(shū),將提取的總RNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA,進(jìn)行RT-qPCR檢測(cè)。以靶基因濃度/GAPDH濃度作為靶基因校正相對(duì)水平。候選靶基因的引物名稱(chēng)及其序列見(jiàn)表1。
1.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析
使用Graph Pad Prism 7.00軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。計(jì)量資料結(jié)果以±s形式表示,組間比較采用t檢驗(yàn)。應(yīng)用Fisher精確檢驗(yàn)鑒定KEGG通路富集分析顯著富集的途徑。以Plt;0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2 結(jié) 果
2.1 KC組織DEGs的聚類(lèi)分析以及火山圖可視化分析
本文分層聚類(lèi)分析結(jié)果表明,KC組與CON組樣本出現(xiàn)明顯聚類(lèi)現(xiàn)象,存在明顯的基因富集(圖1A)。火山圖可視化結(jié)果表明,共鑒定出1 885個(gè)DEGs,其中1 071個(gè)上調(diào)基因(6.19%),814個(gè)下調(diào)基因(4.71%);15 412個(gè)基因無(wú)顯著變化(89.1%)(圖1B)。表明KC角膜組織發(fā)生明顯的基因表達(dá)差異。
2.2 KC組織DEGs的KEGG通路富集分析
KEGG通路富集分析結(jié)果顯示,下調(diào)基因主要參與松弛素信號(hào)通路、鞘磷脂信號(hào)通路、長(zhǎng)壽調(diào)控通路、谷氨酸能突觸等信號(hào)通路(圖2A);而上調(diào)基因主要富集在TGF-β信號(hào)通路、ErbB信號(hào)通路、軸突導(dǎo)向、FcγR介導(dǎo)的吞噬等信號(hào)通路(圖2B)。
2.3 候選DEGs的RT-qPCR水平驗(yàn)證
針對(duì)15個(gè)候選差異基因進(jìn)行的RT-qPCR水平驗(yàn)證結(jié)果顯示,與CON組比較,KC組STK25、ACBD4、CRBN、ZBTB38、CTSB、ABHD16A、SAR1B等基因的表達(dá)水平明顯增加,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=2.821~8.945,Plt;0.05);而HMGCR、ADAMTS6、SRPX2、DLGAP1等基因的表達(dá)水平則明顯降低,差異有顯著統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=2.802~7.838,Plt;0.05)。見(jiàn)表2。
A:DEGs的分層聚類(lèi)分析圖,紅色條碼代表表達(dá)上調(diào)基因,藍(lán)色條碼代表表達(dá)下調(diào)基因;B:DEGs的火山圖,藍(lán)點(diǎn)代表下調(diào)基因,紅點(diǎn)代表上調(diào)基因。橫坐標(biāo)為表達(dá)差異倍數(shù)log2(Fold Change),縱坐標(biāo)為-log10(P value)。
3 討 論
作為一種常見(jiàn)的好發(fā)于青春期的擴(kuò)張性角膜疾病,KC會(huì)導(dǎo)致視力嚴(yán)重降低。大量證據(jù)表明,遺傳與環(huán)境因素均在KC的發(fā)病中起關(guān)鍵作用,但目前對(duì)KC的確切病理機(jī)制仍不明確。本研究通過(guò)mRNA表達(dá)譜芯片數(shù)據(jù)分析,建立了KC角膜差異基因表達(dá)譜,并且這些DEGs在功能上與TGF-β信號(hào)通路、ErbB信號(hào)通路、鞘磷脂信號(hào)通路以及谷氨酸能突觸等信號(hào)通路有關(guān)。這些結(jié)果為后續(xù)探討KC的發(fā)病機(jī)制研究提供了有價(jià)值的線(xiàn)索。
研究表明,TGF-β信號(hào)通路、鞘磷脂信號(hào)通路、Hedgehog信號(hào)通路等信號(hào)通路失調(diào)參與KC的發(fā)病。本文通過(guò)KEGG通路富集分析發(fā)現(xiàn),TGF-β信號(hào)通路以及鞘磷脂信號(hào)通路等在KC角膜DEGs中顯著富集,進(jìn)一步表明本研究數(shù)據(jù)的可靠性。此外,本研究還在KC角膜DEGs中富集到了松弛素信號(hào)通路、ErbB信號(hào)通路以及FcγR介導(dǎo)的吞噬等尚未報(bào)道的信號(hào)通路。相關(guān)研究顯示,松弛素信號(hào)通路、Erb信號(hào)通路以及FcγR介導(dǎo)的吞噬等信號(hào)通路在角膜發(fā)育、損傷修復(fù)等方面發(fā)揮重要的作用。這提示本文新鑒定的信號(hào)通路可能在KC發(fā)病過(guò)程中發(fā)揮重要的調(diào)節(jié)作用,但需實(shí)驗(yàn)證據(jù)支持。
角膜是神經(jīng)纖維非常豐富的組織,但神經(jīng)在KC發(fā)病機(jī)制中的作用尚不明確。有研究通過(guò)共聚焦顯微鏡研究發(fā)現(xiàn),KC病人的角膜神經(jīng)在形態(tài)上發(fā)生明顯變化,主要表現(xiàn)為神經(jīng)纖維變短、基底神經(jīng)叢纏繞過(guò)程增強(qiáng)、基底神經(jīng)叢密度下降。在功能上,KC病人的角膜神經(jīng)支配與神經(jīng)敏感度較正常角膜顯著下降。但目前有關(guān)KC病人角膜神經(jīng)的形態(tài)與功能改變的分子機(jī)制尚不清楚。本研究顯示,KC組織部分DEGs在功能上與谷氨酸能突觸、神經(jīng)軸突導(dǎo)向等信號(hào)通路密切關(guān)聯(lián),這在分子層面上支持KC病人的角膜神經(jīng)功能異常,但需后續(xù)實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證。
相關(guān)研究顯示,細(xì)胞外基質(zhì)降解、細(xì)胞凋亡與自噬等是KC的重要病理機(jī)制。作為一種常見(jiàn)的溶酶體半胱氨酸肽酶,CTSB在調(diào)控細(xì)胞外基質(zhì)降解、細(xì)胞凋亡等方面發(fā)揮重要作用。KC組織中CTSB的表達(dá)上調(diào)提示其可能通過(guò)上述機(jī)制參與KC的發(fā)病過(guò)程。HMGCR是膽固醇合成途徑的關(guān)鍵限速酶,其表達(dá)水平與施尼德結(jié)晶狀角膜營(yíng)養(yǎng)不良發(fā)生有關(guān),提示其可能通過(guò)影響膽固醇合成參與KC的發(fā)病過(guò)程。另外還有研究結(jié)果顯示,ABHD16A和SAR1B基因與脂質(zhì)穩(wěn)態(tài)調(diào)節(jié)等密切相關(guān)。而本文研究結(jié)果顯示,KC組織中的ABHD16A和SAR1B表達(dá)上調(diào),推測(cè)上述兩種基因可能通過(guò)調(diào)控脂質(zhì)代謝途徑影響KC的發(fā)病過(guò)程。此外,ADAMTS可以調(diào)節(jié)基質(zhì)降解、生理和病理組織重塑、細(xì)胞侵襲和轉(zhuǎn)移,而KC的病理過(guò)程與基質(zhì)降解密切相關(guān),ADAMTS6表達(dá)水平上調(diào)提示其可能通過(guò)調(diào)控基質(zhì)降解過(guò)程參與KC的發(fā)病。
KABZA等通過(guò)轉(zhuǎn)錄組研究發(fā)現(xiàn),KC組織中存在異常的TGF-β信號(hào)通路。本研究結(jié)果顯示,TGF-β信號(hào)通路在KC組織的上調(diào)DEGs中顯著富集,并且TGF-β表達(dá)水平下降。TGF-β信號(hào)是參與調(diào)節(jié)細(xì)胞外基質(zhì)(ECM)分泌和組裝的關(guān)鍵信號(hào)通路之一,與纖維化密切相關(guān)。而TGF-β主要作用是抗纖維化,并且可以刺激KC基質(zhì)細(xì)胞(HKC)生成正常的ECM,促進(jìn)正常ECM合成。推測(cè)TGF-β信號(hào)通路的失調(diào)可能與KC組織ECM的改變有關(guān)。
綜上所述,本文通過(guò)人mRNA表達(dá)譜芯片檢測(cè)明確了KC差異基因表達(dá)譜,在功能上DEGs與TGF-β信號(hào)通路、ErbB信號(hào)通路、鞘磷脂信號(hào)通路、谷氨酸能突觸等有關(guān)。本文結(jié)果可為后續(xù)KC的診斷與機(jī)制研究等提供參考。
[參考文獻(xiàn)]
MAS TUR V, MACGREGOR C, JAYASWAL R, et al. A review of keratoconus: diagnosis, pathophysiology, and gene-tics." Survey of Ophthalmology, 2017,62(6):770-783.
WOJCIK K A, BLASIAK J, SZAFLIK J, et al. Role of biochemical factors in the pathogenesis of keratoconus." Acta Biochimica Polonica, 2014,61(1):55-62.
GORDON-SHAAG A, MILLODOT M, SHNEOR E, et al. The genetic and environmental factors for keratoconus." BioMed Research International, 2015, 2015:795738.
WOJAKOWSKA A, PIETROWSKA M, WIDLAK P, et al. Metabolomic signature discriminates normal human Cornea from keratoconus-a pilot GC/MS study." Molecules (Basel, Switzerland), 2020,25(12): E2933.
KHALED M L, HELWA I, DREWRY M, et al. Molecular and histopathological changes associated with keratoconus." BioMed Research International, 2017, 2017:7803029.
KHALED M L, BYKHOVSKAYA Y, YABLONSKI S E R,et al. Differential expression of coding and long noncoding RNAs in keratoconus-affected corneas." Investigative Oph-thalmology amp; Visual Science, 2018,59(7):2717-2728.
HAN S H, CHOE J. Diverse molecular functions of m6A mRNA modification in cancer." Experimental amp; Molecular Medicine, 2020,52(5):738-749.
SHARIF R, BAK-NIELSEN S, HJORTDAL J, et al. Pathogenesis of Keratoconus: the intriguing therapeutic potential of Prolactin-inducible protein." Progress in Retinal and Eye Research, 2018,67:150-167.
ENGLER C, CHAKRAVARTI S, DOYLE J, et al. Transforming growth factor-β signaling pathway activation in Keratoconus." American Journal of Ophthalmology, 2011,151(5):752-759.e2.
LYON D, MCKAY T B, SARKAR-NAG A, et al. Human keratoconus cell contractility is mediated by transforming growth factor-beta isoforms." Journal of Functional Biomaterials, 2015,6(2):422-438.
QI H, PRIYADARSINI S, NICHOLAS S E, et al. Analysis of sphingolipids in human corneal fibroblasts from normal and keratoconus patients." Journal of Lipid Research, 2017,58(4):636-648.
YOU J J, CORLEY S M, WEN L, et al. RNA-Seq analysis and comparison of corneal epithelium in keratoconus and myopia patients." Scientific Reports, 2018,8(1):389.
HAMPEL U, CHINNERY H R, GARREIS F, et al. Ocular phenotype of relaxin gene knockout (rln-/-) mice." Current Eye Research, 2020,45(10):1211-1221.
HAMPEL U, KLONISCH T, MAKRANTONAKI E, et al. Relaxin 2 is functional at the ocular surface and promotes corneal wound healing." Investigative Ophthalmology amp; Visual Science, 2012,53(12):7780-7790.
XU K P, RIGGS A, DING Y, et al. Role of ErbB2 in corneal epithelial wound healing." Investigative Ophthalmology amp; Visual Science, 2004,45(12):4277-4283.
FLOCKERZI E, DAAS L, SEITZ B. Structural changes in the corneal subbasal nerve plexus in keratoconus." Acta Ophthalmologica, 2020,98(8): e928-e932.
PATEL D V, MCGHEE C N J. Mapping the corneal sub-basal nerve plexus in keratoconus by in vivo laser scanning confocal microscopy." Investigative Ophthalmology amp; Visual Science, 2006,47(4):1348-1351.
NIEDERER R L, PERUMAL D, SHERWIN T, et al. Laser scanning in vivo confocal microscopy reveals reduced innervation and reduction in cell density in all layers of the keratoconic cornea." Investigative Ophthalmology amp; Visual Science, 2008,49(7):2964-2970.
PATEL D V, KU J Y, JOHNSON R, et al. Laser scanning in vivo confocal microscopy and quantitative aesthesiometry reveal decreased corneal innervation and sensation in keratoconus." Eye (London, England), 2009,23(3):586-592.
DAVIDSON A E, HAYES S, HARDCASTLE A J, et al. The pathogenesis of keratoconus." Eye, 2014,28(2):189-195.
NETTESHEIM A, SHIM M S, DIXON A, et al. Cathepsin B localizes in the caveolae and participates in the proteolytic cascade in trabecular meshwork cells. potential new drug target for the treatment of Glaucoma." Journal of Clinical Medicine, 2020,10(1): E78.
SENDLER M, MAERTIN S, JOHN D, et al. Cathepsin B activity initiates apoptosis via digestive protease activation in pancreatic acinar cells and experimental pancreatitis. "The Journal of Biological Chemistry, 2016,291(28):14717-14731.
HANDA S, THAKUR A, RAJNEESH D, et al. Schnyder's crystalline corneal dystrophy." QJM: Monthly Journal of the Association of Physicians, 2020,113(1):66.
JIANG S Y, TANG J J, XIAO X, et al. Schnyder corneal dystrophy-associated UBIAD1 mutations cause corneal cholesterol accumulation by stabilizing HMG-CoA reductase." PLoS Genetics, 2019,15(7): e1008289.
LEMIRE G, ITO Y A, MARSHALL A E, et al. ABHD16A deficiency causes a complicated form of hereditary spastic paraplegia associated with intellectual disability and cerebral ano-malies." American Journal of Human Genetics, 2021,108(10):2017-2023.
LU Y, ZHOU S K, CHEN R, et al. Knockdown of SAR1B suppresses proliferation and induces apoptosis of RKO colorectal cancer cells." Oncology Letters, 2020,20(5):186.
XIE Y X, GOU Q H, XIE K Q, et al. ADAMTS6 suppresses tumor progression via the ERK signaling pathway and serves as a prognostic marker in human breast cancer." Oncotarget, 2016,7(38):61273-61283.
DI MARTINO E, ALI M, INGLEHEARN C F. Matrix me-talloproteinases in keratoconus-Too much of a good thing" Experimental Eye Research, 2019,182:137-143.
KABZA M, KAROLAK J A, RYDZANICZ M, et al. Collagen synthesis disruption and downregulation of core elements of TGF-β, Hippo, and Wnt pathways in keratoconus corneas." European Journal of Human Genetics: EJHG, 2017,25(5):582-590.
MENG X M, NIKOLIC-PATERSON D J, LAN H Y. TGF-β: the master regulator of fibrosis." Nature Reviews Nephrology, 2016,12(6):325-338.
趙桂秋,孟巖,李艷,等. 膠原在圓錐角膜中的表達(dá)." 青島大學(xué)醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào), 2003,39(1):58-61,65.
PRIYADARSINI S, MCKAY T B, SARKER-NAG A, et al. Keratoconus in vitro and the key players of the TGF-β pathway." Molecular Vision, 2015,21:577-588.
(本文編輯 黃建鄉(xiāng))
青島大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版)2023年2期