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    Herkinorin預(yù)處理減輕缺血性卒中模型大鼠腦損傷

    2023-03-04 13:33:34宋婉晴李俊發(fā)
    關(guān)鍵詞:半影腦組織預(yù)處理

    宋婉晴,李俊發(fā),崔 旭*

    1.首都醫(yī)科大學(xué)附屬北京同仁醫(yī)院 麻醉科,北京 100730;2.首都醫(yī)科大學(xué) 神經(jīng)生物學(xué)系,北京 100069

    腦缺血/低氧損傷是缺血性卒中常見的病理生理過程,發(fā)病率、致死致殘率高, 目前臨床上仍缺乏有效的治療方法[1]。缺血/低氧預(yù)處理(ischemic-hypoxia preconditioning,I/HPC)是指在短時間內(nèi)給予機體亞致死性缺血/低氧刺激后,可顯著提高機體對繼發(fā)嚴(yán)重缺血/低氧事件耐受性的方法。

    I/HPC可以用藥物預(yù)處理促進內(nèi)源性物質(zhì)釋放或作用于信號通路來模擬。Herkinorin作為半合成阿片受體激動劑,可通過調(diào)節(jié)短暫性大腦中動脈阻塞(transient middle cerebral artery occlusion,tMCAO)致缺血性卒中小鼠腦皮層半影區(qū)內(nèi)蛋白激酶C(protein kinase C,PKC)膜轉(zhuǎn)位水平,來發(fā)揮腦保護作用[2-3]。早期研究顯示,Herkinorin通過抑制NF-κB/NOD樣受體蛋白3(NOD-like receptor protein 3,NLRP3)通路,減輕氧-糖剝奪(oxygen-glucose deprivation,OGD)神經(jīng)元缺血損傷[4]。本研究擬在大鼠tMCAO模型上,進一步探討Herkinorin對NLRP3的調(diào)節(jié)作用及其可能機制。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 實驗動物:SPF級SD大鼠,體質(zhì)量 200~220 g,雌雄各半 [南京大學(xué)動物模式中心提供,動物合格證號:SCXK(蘇)2015-0001]。

    1.1.2 實驗試劑:Herkinorin、TTC染液(Sigma-Aldrich公司);蛋白抽提試劑盒(Sangon公司);PVDF膜(0.45 μm,Millipore公司);TUNEL染色試劑盒、細(xì)胞凋亡試劑盒(南京凱基生物科技發(fā)展有限公司);GAPDH抗體、IL-1β抗體、NLRP3抗體、p-p65抗體和p65抗體(Abcam公司);β-抑制蛋白2(β-arrestin2)抗體、IκBα抗體、phos-IκBα抗體、Na-K ATPase抗體和caspase-1抗體(CST公司)。

    1.2 方法

    1.2.1 大鼠的分組及處理:采用隨機數(shù)字表法,將大鼠分為假手術(shù)組(sham)、模型組(tMCAO)、Herkinorin組(Herkinorin),每組6只。模型(tMCAO)組及Herkinorin組大鼠進行造模處理-左側(cè)大腦中動脈阻塞2 h后再灌注24 h。Herkinorin組大鼠造模前腹腔給藥Herkinorin(10 mg/kg)1周,每天1次,缺血過程中給藥1次,sham組及tMCAO組給予等體積1% DMSO。再灌注24 h后,對所有大鼠進行神經(jīng)功能評分、TTC染色、TUNEL染色、Western blot檢測和免疫共沉淀(co-immunoprecipitation,Co-IP)。

    1.2.2 神經(jīng)功能評分:評分標(biāo)準(zhǔn):0分-神經(jīng)功能正常;1分-輕度神經(jīng)功能缺損:提尾時,動物的左前肢屈曲;2分-中度神經(jīng)功能缺損:將動物置于光滑平面上行走,行走時向左側(cè)轉(zhuǎn)圈;3分-中度神經(jīng)缺損:靜止?fàn)顟B(tài)下,向左側(cè)傾斜;4分-意識減退,肢體無自發(fā)活動;5分-對刺激無應(yīng)答或死亡。

    1.2.3 TTC染色檢測腦梗死百分比及腦水腫率:取大鼠全腦視交叉及其前后各2 mm處的腦組織,置于含有2% TTC的磷酸緩沖溶液中,37 ℃避光溫孵10 min后取出腦片,用數(shù)碼相機拍照,通過Image pro-plus 6.0計算梗死百分比如下:梗死百分比(%)=蒼白區(qū)質(zhì)量/(蒼白區(qū)質(zhì)量+非蒼白區(qū)質(zhì)量)×100%。將染色后的腦組織置于105 ℃烘箱烘干,24 h后稱重(干重)。腦水腫率計算公式如下:腦組織含水量(%)=(1-腦組織干重/腦組織濕重)×100%;腦水腫率(%)=[各組腦組織含水量(%)-sham組腦組織含水量(%)]/sham組腦組織含水量(%)×100%。

    1.2.4 TUNEL染色檢測細(xì)胞凋亡:取缺血半影區(qū)腦組織制成石蠟切片,置于電熱恒溫干燥箱中,60 ℃烘烤3 h,用TUNEL試劑盒檢測細(xì)胞凋亡,按照說明書標(biāo)記后用蘇木精復(fù)染,用相差顯微鏡隨機選擇一個視野使用400×倍視野下拍照,細(xì)胞凋亡率(%)=TUNEL陽性細(xì)胞數(shù)/總細(xì)胞數(shù)×100%。

    1.2.5 Western blot檢測蛋白質(zhì)表達: 取缺血半影區(qū)腦組織,制備全細(xì)胞蛋白質(zhì)樣品、定量、電泳和轉(zhuǎn)膜后,分別加入一抗和二抗,用ECL發(fā)光顯色。將PVDF膜放入數(shù)碼凝膠圖像分析儀進行曝光,所得圖片采用Image J 件進行掃描。以GAPDH為內(nèi)參蛋白,計算IκBα、p65、p-p65、pro-IL-1β、IL-1β、pro-caspase1、caspase1 p20、NLRP3的表達水平。

    1.2.6 免疫共沉淀(co-immunoprecipitation,Co-IP)檢測IκBα與β-arrestin2結(jié)合:取缺血半影區(qū)腦組織,Co-IP檢測IκBα與β-arrestin2結(jié)合水平。

    1.3 統(tǒng)計學(xué)分析

    2 結(jié)果

    2.1 Herkinorin預(yù)處理改善缺血性卒中鼠神經(jīng)功能評分

    與sham組相比, tMCAO組大鼠神經(jīng)功能評分顯著增加(P<0.01);而與tMCAO組相比,Herkinorin組大鼠神經(jīng)功能評分明顯下降(P<0.01)(圖1D)。

    2.2 Herkinorin預(yù)處理降低缺血性卒中鼠腦梗死百分比和腦水腫率

    與sham組相比,tMCAO組大鼠腦梗死百分比與腦水腫率增加(P<0.01);與tMCAO組相比,Herkinorin組大鼠腦梗死百分比與腦水腫率下降(P<0.01)(圖1A~C)。

    2.3 Herkinorin預(yù)處理降低缺血性卒中鼠腦細(xì)胞凋亡水平

    與sham組相比,tMCAO組大鼠腦組織缺血半影區(qū)中的細(xì)胞凋亡水平增加(P<0.01);與tMCAO組相比,Herkinorin組大鼠腦組織缺血半影區(qū)中的細(xì)胞凋亡水平下降(P<0.01)(圖1E~F)。

    A.TTC staining; B.brain infarct area percentage; C.cerebral edema rate; D neurological scores; E, F.TUNEL staining; *P<0.05 compared with sham group;#P<0.05 compared with tMCAO group

    2.4 Herkinorin預(yù)處理對缺血性卒中鼠腦半影區(qū)內(nèi)IκBα、p65、p-p65、pro-IL-1β、IL-1β、pro-caspase1、caspase1 p20和NLRP3蛋白水平的影響

    與sham組相比,tMCAO組大鼠腦組織缺血半影區(qū)內(nèi)IκBα和p65蛋白水平下降(P<0.01,圖2A~C);p-p65(圖2A,D)、IL-1β(圖2A,E~F)、caspase1 p20(圖2A,G~H)和NLRP3(圖2A,I)蛋白水平增加(P<0.01)。與tMCAO組相比,Herkinorin組大鼠腦組織缺血半影區(qū)內(nèi)IκBα和p65蛋白水平增加(P<0.01,圖2A~C);p-p65(圖2A,D)、IL-1β(圖2A,E~F)、caspase1 p20(圖2A,G~H)和NLRP3(圖2A,I)蛋白水平下降(P<0.01)。

    2.5 Herkinorin預(yù)處理提高缺血性卒中鼠腦半影區(qū)內(nèi)IκBα與β-arrestin2的結(jié)合水平

    與sham組相比,tMCAO組大鼠腦缺血半影區(qū)內(nèi)IκBα與β-arrestin2結(jié)合水平下降(P<0.01);但與tMCAO組相比,Herkinorin預(yù)處理可提高鼠腦缺血半影區(qū)內(nèi)IκBα與β-arrestin2的結(jié)合水平(P<0.01)(圖2J)。

    A, B.expression of IκBα; A, C.expression of p65; A, D.expression of p-p65; A, E.expression of pro-IL-1β; A, F.expression of IL-1β; A, G.expression of pro-caspase1; A, H.expression of caspase1 p20; A, I.expression of NLRP3; J.interaction of IκBα and β-arrestin2

    3 討論

    Herkinorin是以salvinorin A為模板合成的阿片受體激動劑,其與β-arrestins親和力低,在激動阿片受體的同時較少募集β-arrestins,不導(dǎo)致受體內(nèi)化,這一特性使Herkinorin既具備傳統(tǒng)阿片類藥物的治療作用,又大大減少了藥物耐受、便秘、呼吸抑制等不良反應(yīng)[2]。

    NLRP3異常活化關(guān)系到多種疾病的發(fā)生發(fā)展。NLRP3的激活與卒中后神經(jīng)細(xì)胞死亡及行為缺陷密切相關(guān),抑制NLRP3激活可減輕神經(jīng)元缺血/再灌注損傷[5-7]。

    NF-κB通常以p50-p65異二聚體的形式與其抑制性蛋白IκBα結(jié)合而呈非活化狀態(tài),其通過復(fù)雜的分子調(diào)節(jié)機制參與機體的慢性炎性反應(yīng)[8]。研究顯示, 楊梅花青素通過TLR4/NF-κB信號通路抑制NLRP3激活,從而減輕腦缺血/再灌注損傷[9];環(huán)境刺激通過抑制NF-κB信號通路降低NLRP1/NLRP3活性,從而減輕腦缺血/再灌注損傷[10]。

    前期研究發(fā)現(xiàn)Herkinorin降低大鼠OGD神經(jīng)元中caspase-1、IL-1β的活化程度及NLRP3的表達水平,而μ阿片受體(μ opioid receptor,MOR)抑制劑β-funaltrexamine可以逆轉(zhuǎn)此作用。Herkinorin可明顯抑制NF-κB通路的活化,降低p65的磷酸化水平,上調(diào)IκBα的表達,而MOR基因敲除后Herkinorin上述能力消失。這說明Herkinorin可能通過MOR途徑降低OGD神經(jīng)元中p65磷酸化水平,抑制NF-κB/NLRP3通路表達。而本研究在tMCAO大鼠中進一步驗證了此作用機制。

    阿片受體是G蛋白偶聯(lián)受體(G protein-coupled receptors,GPCRs)。GPCRs激活后,細(xì)胞外信號通過兩個信號通路傳遞到細(xì)胞內(nèi):G蛋白通路和β-arrestins通路。在G蛋白通路中, GPCRs活化后募集β-arrestins,β-arrestins促進GPCRs和G蛋白解偶聯(lián)及受體內(nèi)化,阻止下游效應(yīng)因子激活,介導(dǎo)受體脫敏;在β-arrestins通路中,β-arrestins與Src、Raf-I、Akt、ERKl/2、JNK3、Mdm2和IκBα等信號分子形成復(fù)合物,調(diào)控MAPK、P53、NF-κB信號通路[11-12]。前期研究發(fā)現(xiàn),Herkinorin處理大鼠OGD神經(jīng)元后,IκBα與β-arrestin2結(jié)合量增加,IκBα泛素化水平降低。而β-arrestin2基因敲除后,Herkinorin抑制NF-κB通路活化,降低p65磷酸化水平,上調(diào)IκBα表達,降低 IκBα泛素化的能力消失。這說明Herkinorin抑制NF-κB通路活化可能是通過增加β-arrestin2與IκBα結(jié)合、降低IκBα泛素化實現(xiàn)的。本研究也發(fā)現(xiàn), Herkinorin可增加IκBα與β-arrestin2的結(jié)合,穩(wěn)定IκBα并抑制NF-κB激活,這表明IκBα與β-arrestin2在Herkinorin對tMCAO大鼠的神經(jīng)保護機制中發(fā)揮了重要作用。

    綜上所述,Herkinorin可能通過抑制NF-κB/NLRP3通路減輕tMCAO大鼠腦缺血/再灌注損傷,這可能是通過增加IκBα與β-arrestin2結(jié)合實現(xiàn)的。

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