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    瀾滄江真核浮游生物的空間格局及其多樣性

    2023-02-28 08:47:50胡愈炘譚慶軍梅增榮王英才熊少凱
    長江科學(xué)院院報 2023年1期
    關(guān)鍵詞:區(qū)域差異環(huán)境

    胡愈炘,金 磊,劉 威,譚慶軍,梅增榮,胡 圣,王英才,熊少凱,鄧 玥

    (1.生態(tài)環(huán)境部長江流域生態(tài)環(huán)境監(jiān)督管理局 生態(tài)環(huán)境監(jiān)測與科學(xué)研究中心,武漢 430010; 2.華能瀾滄江水電股份有限公司,昆明 650214; 3.云南啟迪實業(yè)發(fā)展有限公司,昆明 650214)

    1 研究背景

    瀾滄江,境外稱為湄公河,是發(fā)源于青海唐古拉山北麓查加日瑪,流經(jīng)中國、緬甸、老撾、泰國、柬埔寨和越南的國際大河,其水資源、水能資源極其豐富,戰(zhàn)略地位重要[1]。瀾滄江在我國境內(nèi)河長2 161 km,流域面積16萬多km2[2]。近年來瀾滄江干流梯級電站的開發(fā)形成了梯級庫群,導(dǎo)致河流水文情勢發(fā)生改變[3],河流生態(tài)連續(xù)性的改變導(dǎo)致生態(tài)環(huán)境改變,對瀾滄江浮游生物的群落組成和空間分布產(chǎn)生了較大影響[4-5]。

    浮游生物是水體中營浮游生活的微小生物,在能量流動和物質(zhì)循環(huán)中起重要作用,其多樣性和群落特征能夠反映生態(tài)環(huán)境優(yōu)劣[6]。浮游生物分為原核和真核兩類,其中原核浮游生物包括細菌、藍藻和放線菌等。程豹等[5]基于16S rRNA高通量測序技術(shù)探究了瀾滄江流域浮游細菌的群落結(jié)構(gòu)特征,發(fā)現(xiàn)自然河道段和水庫段浮游細菌多樣性和驅(qū)動因子存在顯著差異。真核浮游生物主要包括浮游植物和浮游動物,浮游植物的群落結(jié)構(gòu)組成對環(huán)境具較強指示作用[7],浮游動物在水域生態(tài)系統(tǒng)的物質(zhì)轉(zhuǎn)化、能量流動、信息傳遞過程中發(fā)揮著重要作用[8]。目前瀾滄江真核浮游生物群落研究主要集中于浮游植物,例如孫勝浩等[9]研究了瀾滄江硅藻的地理分布模式,結(jié)果發(fā)現(xiàn)硅藻的分布存在顯著的空間差異;朱海濤等[10]利用浮游植物群落結(jié)構(gòu)數(shù)據(jù)對瀾滄江進行水質(zhì)評價,數(shù)據(jù)顯示瀾滄江源區(qū)水生態(tài)狀況整體優(yōu)良;殷大聰?shù)萚11]對瀾滄江源區(qū)浮游植物進行調(diào)查和分析,據(jù)此發(fā)現(xiàn)江源地區(qū)水環(huán)境狀況較好。

    本研究基于18S rRNA宏條形碼技術(shù)研究瀾滄江真核浮游生物多樣性和群落結(jié)構(gòu)變化,該技術(shù)能夠深入挖掘真核浮游生物的多樣性[12],以充分探討空間差異下不同真核浮游生物群落結(jié)構(gòu)與環(huán)境因子的相關(guān)性,以期為瀾滄江生態(tài)環(huán)境保護提供參考依據(jù)。

    2 材料方法

    2.1 研究區(qū)域與樣品采集

    2020年10月在瀾滄江進行樣品采集,共布設(shè)了36個樣點,采樣區(qū)域涵蓋瀾滄江自源區(qū)至下游近2 000 km的范圍,樣點布設(shè)如圖1所示。

    圖1 瀾滄江樣點分布Fig.1 Location of sampling sites in the Lancang River

    對于環(huán)境DNA樣品,采用高壓滅菌處理后的采水器采集1.5 L表層水樣,使用0.2 μm聚碳酸酯濾膜(Whatman)真空抽濾,每次抽濾前使用次氯酸鈉對抽濾裝置進行浸泡消毒,洗凈后進行抽濾。抽濾后將濾膜裝于液氮中運輸至實驗室,使用DNA提取試劑盒(Mobio)提取DNA,在液氮中保存DNA。

    對于水質(zhì)樣品,利用YSI多參數(shù)水質(zhì)測量儀(Xylem)現(xiàn)場測量每個樣點的水溫、pH值、溶解氧(DO)、電導(dǎo)率(EC)等水質(zhì)指標。水體總磷(TP)、總氮(TN)、硝酸鹽(NO3-N)等環(huán)境因子的測定參照《地表水環(huán)境質(zhì)量標準》(GB 3838—2002)。堿度(A)的測定參照《堿度(總堿度、重碳酸鹽和碳酸鹽)的測定》(SL 83—1994)。

    2.2 高通量測序及生物信息學(xué)分析

    采用引物5’-CCAGCASCYGCGGTAATTCC-3’和5’-ACTTTCGTTCTTGATYRA-3’進行18S rRNA V4區(qū)擴增[13]。PCR采用20 μL反應(yīng)體系,包括4 μL的5×FastPfu Buffer(反應(yīng)緩沖液)、2 μL的2.5 mM dNTPs(脫氧核糖核苷三磷酸)、正向和反向引物各0.8、0.4 μL的FastPfu Polymerase(聚合酶)、0.2 μL的BSA(牛血清白蛋白溶液)溶液、10 ng的DNA模板,然后使用ddH2O(雙蒸水)補足至20 μL。反應(yīng)條件為:95 ℃預(yù)變性3 min;95 ℃變性30 s、50 ℃退火30 s、72 ℃延伸45 s(25個循環(huán));最后72 ℃延伸10 min。每個樣品進行3次PCR技術(shù)重復(fù),以無菌水作為陰性對照,陰性對照無可見擴增,將3份產(chǎn)物混合后采用2%瓊脂糖凝膠電泳檢測,使用AxyPrepDNA凝膠回收試劑盒(AXYGEN)切膠回收PCR產(chǎn)物,Tris_HCl洗脫后,再用2%瓊脂糖電泳檢測。使用Miseq建庫試劑盒(TruSeqTM DNA Sample Prep Kit)進行文庫的構(gòu)建,庫檢合格后使用MiSeq PE300平臺(Illumina)進行上機測序。

    測序得到的下機數(shù)據(jù)使用FastQC(http://www.bioinformatics.babraham.ac.uk/projects/fastqc)進行質(zhì)控,使用Cutadapt v1.17軟件去除接頭序列[14],使用USEARCH v11.0.667軟件進行雙端序列拼接[15],基于QIIME軟件在97%的相似水平下進行OTU(Operational Taxonomy Unit)的聚類,通過樸素貝葉斯分類器將OTU序列比對至Silva數(shù)據(jù)庫(Release138 http://www.arb-silva.de)進行OTU注釋[16]。α多樣性、空間差異分析及RDA(Redundancy Analysis)分析等使用R語言中的vegan包計算[17]。

    3 結(jié)果與討論

    3.1 測序結(jié)果

    使用Miseq高通量平臺對36個樣品進行測序,獲得的原始序列數(shù)目為49 955~74 777條,平均為67 693條;各樣品原始序列長度為368~382 bp,平均為376 bp?;?7%的相似度一共獲取了1 269個OTU,涵蓋45門284屬。OTU聚類情況如圖2(a)所示,聚類出的OTU數(shù)目為104~593個,其中L2點位聚類出的OTU數(shù)量最少(104個),L10點位聚類出的OTU數(shù)量最多(593個)。聚類出OTU數(shù)量>400的點位主要位于L6—L14區(qū)域,而OTU數(shù)量<400的點位則在整個瀾滄江均有分布。

    從每個樣本中隨機抽取序列,統(tǒng)計每次隨機抽取序列中包含的OTU數(shù)量(OTU的數(shù)量即種類數(shù),代表著物種豐富度),據(jù)此構(gòu)建稀釋性曲線,結(jié)果如圖2(b)所示。圖2(b)中每一條曲線代表一個樣本,隨著隨機抽取序列數(shù)的增加,每個樣本統(tǒng)計得到的OTU數(shù)量逐漸增加。當隨機抽取序列數(shù)目在40 000條以上時,樣本統(tǒng)計得到的OTU數(shù)量不再顯著增加,意味著更多的數(shù)據(jù)量只會產(chǎn)生少量新的OTU,說明本次測序深度合理[18],能夠覆蓋絕大多數(shù)的多樣性。

    圖2 各樣點OTU注釋結(jié)果Fig.2 OTU annotation results of sampling sites

    3.2 真核浮游生物群落的空間差異分析

    真核浮游生物群落各樣點的空間差異分析見圖3?;讦露鄻有苑治鰹憸娼婧烁∮紊锏目臻g差異,非度量多維尺度分析(non-metric multidimensional scaling,NMDS)結(jié)果如圖3(a)所示,其中每個點代表一個樣本,各點距離越近,差異越小。L1—L10樣本形成一個分組,L11—L23樣本形成一個分組,L24—L36樣本形成一個分組。NMDS平均脅強系數(shù)(Stress)為0.092 7,在0.05和0.1之間,表明結(jié)果可信[19]。L1—L10位于瀾滄江上游,該區(qū)域為自然河道段,平均水溫為4 ℃,平均流速為0.33 m/s;L11—L23位于瀾滄江中游,該區(qū)域處于烏弄龍電站和功果橋電站之間,平均水溫為14 ℃,62.5%的點位顯示平均流速為0.41 m/s,37.5%的點位水面平靜導(dǎo)致流速無法測量;L24—L36位于瀾滄江下游,包括了功果橋電站及以下區(qū)域,平均水溫為20 ℃,現(xiàn)場監(jiān)測結(jié)果顯示下游所有點位均流速過緩,低于檢出下限,其水體流速相對中游明顯更緩;3個區(qū)域在水體自然狀態(tài)上有明顯區(qū)別,較好地體現(xiàn)了真核浮游生物群落在上、中和下游的空間差異。

    圖3 各樣點的空間差異分析Fig.3 Spatial differences of sampling sites

    基于相似性分析(analysis of similarities,ANOSIM)驗證分組結(jié)果的統(tǒng)計顯著性,如圖3(b)所示。其中“組間”代表組間樣品的兩兩差異,其他3組代表各組組內(nèi)兩兩差異的波動范圍。結(jié)果顯示組間差異大于組內(nèi)差異,中游區(qū)域的樣本間異質(zhì)性相對較大??傮w分組R2=0.683>0,P=0.001<0.05,說明不同分組間差異顯著。

    根據(jù)分組信息統(tǒng)計各組得到的OTU種類如圖3(c)所示。上游特有OTU占比14%,共有OTU占比61%;中游特有OTU占比3%,共有OTU占比57%;下游特有OTU占比8%,共有OTU占比64%;上、中、下游共有OTU占比更多而特有OTU占比較少。由此可見,特有物種造成的差異不是瀾滄江上、中、下游分組的根源,因此需進一步開展多樣性和群落組成分析。

    3.3 瀾滄江真核浮游生物群落不同空間的α多樣性

    基于α多樣性分析瀾滄江真核浮游生物群落在上、中、下游的差異。Shannon-Wiener指數(shù)能夠反映生物群落整體的多樣性,Pielou均勻度指數(shù)能夠反映群落組成的均勻程度[20],Chao1指數(shù)能夠反映群落中的豐富度[21],各分組3個指數(shù)的結(jié)果如圖4所示,其中***表示P≤0.001,**表示P≤0.01,NS表示差異不顯著。

    圖4 瀾滄江真核浮游生物群落的α多樣性Fig.4 The α diversity of eukaryotic plankton community in the Lancang River

    上游的Shannon-Wiener指數(shù)和Pielou均勻度指數(shù)均顯著高于中下游,但三者的Chao1指數(shù)無顯著差異,說明3個區(qū)域物種豐富度無顯著差異,但上游浮游生物組成最為均勻,因此具有最高的多樣性;中游和下游的Shannon-Wiener指數(shù)、Pielou均勻度指數(shù)和Chao1指數(shù)均不具顯著差異,說明兩個區(qū)域的浮游生物多樣性狀況類似。由于瀾滄江干流梯級電站的位置主要分布于中下游,電站的開發(fā)改變了河流自然生態(tài)系統(tǒng)狀況,因此不僅可能造成中游和下游兩個區(qū)域浮游生物多樣性的類似,也可能造成中下游浮游生物多樣性與上游多樣性的差異。

    3.4 瀾滄江真核浮游生物群落的空間分布

    為探究真核浮游生物群落在瀾滄江各區(qū)域的空間分布情況,在門的分類學(xué)水平上基于熱圖展示了各類群在各樣點的相對豐度情況,結(jié)果如圖5(a)所示;參照Levins生態(tài)位寬度的概念計算各類群的生態(tài)位寬度[22],結(jié)果如圖5(b)所示。

    圖5 瀾滄江真核浮游生物群落的空間分布Fig.5 Spatial distribution of eukaryotic plankton community in the Lancang River

    隱藻門(Cryptophyta)是瀾滄江真核浮游生物中相對豐度最大的一個門,主要分布于瀾滄江的下游及中游少數(shù)區(qū)域,其生態(tài)位寬度排在所有類群中的前五。這與之前的研究結(jié)果相一致,隱藻能夠廣泛分布的主要原因在于能夠適應(yīng)各種類型的水體而且不存在季節(jié)特異性[23]。

    金藻門(Chrysophyta)和硅藻門(Bacillariophyta)主要分布于瀾滄江的上游,生態(tài)位寬度分別為第七和第五,也屬于分布較為廣泛的類群。其中金藻門多分布于溫度相對較低的水體中[24],而本次調(diào)查中上游的平均水溫為3.7 ℃,中下游的平均水溫為16.4 ℃,因此水溫可能是其分布差異的重要原因之一。硅藻門的分布結(jié)果則與之前的研究結(jié)果相一致[9]。

    纖毛門(Ciliophora)是瀾滄江真核浮游生物中生態(tài)位最寬的一個類群,該類群廣泛分布于瀾滄江的上、中、下游。該類群是微食物網(wǎng)的重要組成部分,廣泛分布于各類水體中,其分布格局由多種環(huán)境因子共同決定[25]。

    3.5 瀾滄江真核浮游生物群落對環(huán)境的響應(yīng)

    使用除趨勢對應(yīng)分析(Detrended Correspondence Analysis,DCA)分析門水平上的浮游生物群落數(shù)據(jù),結(jié)果排序軸長度<3,因此使用線性模型探究瀾滄江真核浮游生物群落對環(huán)境的響應(yīng)。對浮游生物群落數(shù)據(jù)進行Hellinger轉(zhuǎn)換后進行冗余分析(RDA)。根據(jù)方差膨脹系數(shù)衡量環(huán)境因子中的多重共線性,篩選后使用的環(huán)境因子包括:溶解氧(DO)、水溫(Temp)、pH、電導(dǎo)率(EC)、堿度(A)、銨鹽(NH4-N)、總磷(TP)、正磷酸鹽(PO4-P)、總氮(TN)、硝酸鹽氮(NO3-N)和二氧化硅(SiO2),結(jié)果如圖6所示。

    圖6 瀾滄江真核浮游生物群落對環(huán)境的響應(yīng)Fig.6 Response of eukaryotic plankton community to environmental factors in the Lancang River

    RDA所有約束軸的全模型置換檢驗P值為0.001,說明RDA分析結(jié)果可信。分析使用的環(huán)境因子中,水溫(Temp)和堿度(A)的R2最大(分別為0.64和0.52),是對瀾滄江真核浮游生物群落影響較大的環(huán)境因子。水溫是被廣泛認為能夠影響浮游生物分布的重要環(huán)境因子;堿度是指水中所含有的能與氫離子相化合的物種含量,包括重碳酸鹽堿度、碳酸鹽堿度和氫氧化物堿度等,堿度可能會對浮游生物產(chǎn)生毒性[26],或者影響浮游生物對無機營養(yǎng)物質(zhì)的同化[27],從而影響浮游生物的生命活動。

    根據(jù)Mantel Test對環(huán)境因子和不同區(qū)域(上、中、下游)種水平上的真核浮游生物群落組成進行相關(guān)性檢驗,不同區(qū)域受影響較大的環(huán)境因子各有不同,如表1所示。對于上游,銨鹽(R2=0.56,P=0.02)和電導(dǎo)率(R2=0.58,P=0.04)相關(guān)性顯著,根據(jù)R2發(fā)現(xiàn)電導(dǎo)率是對真核浮游生物群落影響較大的環(huán)境因子。對于中游,溶解氧(R2=0.33,P=0.02)、水溫(R2=0.34,P=0.02)和堿度(R2=0.26,P=0.05)相關(guān)性顯著,根據(jù)R2發(fā)現(xiàn)水溫是對真核浮游生物群落影響相對較大的環(huán)境因子;對于下游,水溫(R2=0.59,P=0.00)、電導(dǎo)率(R2=0.60,P=0.00)、堿度(R2=0.27,P=0.04)、銨鹽(R2=0.39,P=0.04)、總磷(R2=0.70,P=0.01)、硝酸鹽氮(R2=0.35,P=0.01)和二氧化硅(R2=0.61,P=0.01)相關(guān)性顯著,根據(jù)R2發(fā)現(xiàn)總磷對真核浮游生物群落影響相對較大。

    表1 基于Mantel Test的真核浮游生物群落組成與環(huán)境因子相關(guān)性Table 1 Correlation between eukaryotic plankton community composition and environmental factors based on Mantel Test

    4 結(jié) 論

    在瀾滄江進行真核浮游生物群落調(diào)查,基于18S rRNA宏條形碼技術(shù)從空間差異、群落組成和環(huán)境響應(yīng)等方面進行了分析,得到以下結(jié)論:

    (1)瀾滄江真核浮游生物群落可以劃分為3個分組,包括:上游(自然河道段)、中游(位于水電站烏弄龍和功果橋之間的區(qū)域)和下游(功果橋電站及以下區(qū)域),不同類型群落的組間差異要大于組內(nèi)差異,且差異顯著。

    (2)上游真核浮游生物群落組成是3個區(qū)域中最為均勻的,金藻門和硅藻門是該區(qū)域分布較為廣泛且相對豐度較高的類群,電導(dǎo)率是對該區(qū)域影響較大的環(huán)境因子;中游和下游的浮游生物多樣性類似,隱藻門是中下游分布較為廣泛且相對豐度較高的類群,對中游和下游影響較大的環(huán)境因子分別是水溫和總磷。

    (3)對于整個瀾滄江而言,水溫和堿度是本次測定的所有環(huán)境因子中對真核浮游生物群落有重要影響的因子,纖毛門是分布最為廣泛且相對豐度較高的類群。

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