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    鮰魚骨膠原多肽-鈣螯合物的制備及結(jié)構(gòu)表征與穩(wěn)定性研究

    2023-02-03 06:37:14熊含露張露李金林李小鋒梅強(qiáng)根馬天新涂宗財(cái)
    食品與發(fā)酵工業(yè) 2023年1期
    關(guān)鍵詞:骨膠原螯合物魚骨

    熊含露,張露,李金林,李小鋒,梅強(qiáng)根,馬天新,涂宗財(cái),2*

    1(國(guó)家淡水魚加工技術(shù)研發(fā)專業(yè)中心和江西省淡水魚高值化利用工程技術(shù)研究中心(江西師范大學(xué)),江西 南昌,330022)2(食品科學(xué)與技術(shù)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室(南昌大學(xué)),江西 南昌,330047)

    鮰魚(Leiocassislongirostris)俗稱肥王魚、淮王魚等,是我國(guó)重要的淡水養(yǎng)殖水產(chǎn)品之一,2020年的產(chǎn)量為30.85萬t[1]。鮰魚肉嫩且味美,富含蛋白質(zhì)和脂肪,被譽(yù)為淡水魚中的食用上品。鮰魚最美味之處在于軟邊的腹部,常被加工成凍魚片,但會(huì)產(chǎn)生約40%~55%的副產(chǎn)物,如魚骨、魚皮、魚鱗等[2]。其中,鮰魚骨含有豐富的蛋白質(zhì)、不飽和脂肪酸、礦物質(zhì)元素等營(yíng)養(yǎng)成分,鈣磷比接近2∶1,易被人體吸收,是一種優(yōu)良的補(bǔ)鈣食物資源[3]。但鮰魚骨質(zhì)構(gòu)堅(jiān)硬,不便利用,目前主要被加工成動(dòng)物飼料,造成資源浪費(fèi)。

    鈣是人體中必需的礦物質(zhì)營(yíng)養(yǎng)素,對(duì)維持人體正常的新陳代謝和酸堿平衡起著重要的作用。約99%的鈣以羥基磷灰石的形式存在于骨骼、牙齒中。缺鈣則易導(dǎo)致骨質(zhì)疏松、佝僂病等疾病,且多發(fā)生在中老年和兒童群體中[4]。根據(jù)《中國(guó)居民膳食營(yíng)養(yǎng)素參考攝入量(2013版)》顯示,中國(guó)成年居民每日的鈣推薦攝入量在800~1 000 mg,而人們實(shí)際每日攝入鈣量低于400 mg[5],因此,補(bǔ)鈣至關(guān)重要。目前,市場(chǎng)上常見的補(bǔ)鈣制劑有無機(jī)鈣、有機(jī)酸鈣、有機(jī)鈣等,但部分產(chǎn)品存在吸收率低、補(bǔ)鈣效果差等問題,無法滿足當(dāng)代群體對(duì)補(bǔ)鈣的需求[6-7]。研究表明,肽-鈣螯合物具有溶解性好、易吸收、生物利用率高且無毒副作用等優(yōu)點(diǎn),逐漸成為人們一種理想選擇的補(bǔ)鈣劑[8]。如ZHANG等[9]研究證明,肽-鈣螯合物可提高腸道的鈣生物利用率,從而改善大鼠的骨質(zhì)疏松問題。因此,基于低值鮰魚骨制備蛋白水解物,開發(fā)新型鈣制劑,不僅可以豐富鈣制劑的種類,還能提高魚骨資源利用率,降低環(huán)境污染,促進(jìn)漁業(yè)產(chǎn)品的經(jīng)濟(jì)效益。

    本文以鮰魚骨為原料,以鈣結(jié)合能力為指標(biāo),采用單因素試驗(yàn)優(yōu)化制備膠原多肽的酶解工藝,采用Sephadex G-25進(jìn)行分離純化,篩選出與鈣結(jié)合活性較好的膠原多肽組分。制備膠原多肽-鈣螯合物,通過傅里葉紅外光譜、掃描電鏡、能譜分析技術(shù)探究鮰魚骨膠原多肽螯合前后的形態(tài)結(jié)構(gòu)變化,最后對(duì)膠原多肽-鈣螯合物的熱穩(wěn)定性、酸堿穩(wěn)定性、體外模擬消化穩(wěn)定性進(jìn)行評(píng)價(jià),為其生物利用率提供理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與儀器

    1.1.1 材料與試劑

    冷凍鮰魚脊骨,由安徽富煌三珍公司提供。

    S1063S鈣含量顯色檢測(cè)試劑盒,上海碧云天生物技術(shù)有限公司;堿性蛋白酶(200 000 U/g)、胃蛋白酶(250 U/mg)、胰蛋白酶(250 U/mg),北京索萊寶科技有限公司;細(xì)胞色素C(12 384 Da),阿拉丁試劑(上海)有限公司;抑肽酶(6 511.51 Da)、L-氧化型谷胱甘肽(612.63 Da)、羥脯氨酸(131.13 Da),上海源葉生物科技有限公司;CaCl2,西隴科學(xué)股份有限公司;三氟乙酸(trifluoroacetic acid,TFA)、乙腈(acetonitrile,ACN),賽默飛世爾科技有限公司。

    1.1.2 儀器與設(shè)備

    S—3400 N掃描電子顯微鏡,日本Hitachi公司;Spectrum One傅立葉變換紅外光譜儀,美國(guó)Perkin Elmer公司;EASY-nLC 1000型超高效液相,賽默飛世爾科技(中國(guó))有限公司;Synergy H1酶標(biāo)儀,美國(guó)Bio Tek公司;HH-6型數(shù)顯恒溫水浴鍋,國(guó)華電器有限公司;5430R型冷凍離心機(jī),德國(guó)Eppendorf公司;FiveEasy Plus臺(tái)式pH計(jì),梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司;SR-AON-50型冷凍干燥機(jī),上海舍巖儀器有限公司。

    1.2 實(shí)驗(yàn)方法

    1.2.1 鮰魚骨的預(yù)處理

    將冷凍鮰魚骨沸水蒸煮5 min,去除魚骨表面殘留的魚肉和膜性組織。按照1∶6(g∶mL)的料液比向魚骨中加入0.3 mol/L NaOH溶液脫脂,1 h后換液搖勻,靜置浸泡1 h后用蒸餾水反復(fù)沖洗魚骨至中性,瀝干水分,于60 ℃烘箱中烘干,粉碎備用。

    1.2.2 鮰魚骨的酶解提取工藝

    堿性蛋白酶由多種不同的蛋白酶組成,對(duì)膠原蛋白的水解程度較高,一定程度上有助于產(chǎn)生更多的生物活性肽和活性位點(diǎn)[10],因此本文采用堿性蛋白酶水解鮰魚骨粉制備鮰魚骨膠原多肽。以鈣結(jié)合能力為評(píng)價(jià)指標(biāo)進(jìn)行單因素試驗(yàn)設(shè)計(jì),通過固定其他因素,依次研究料液比(1∶20、1∶13、1∶10、1∶8、1∶6,g∶mL)、酶添加量(1%、2%、3%、4%、5%,質(zhì)量分?jǐn)?shù))、pH(8.0、8.5、9、9.5、10)、酶解時(shí)間(1、2、3、4、5 h)、酶解溫度(30、40、50、60、70 ℃)對(duì)水解物鈣結(jié)合能力的影響。

    1.2.3 鮰魚骨膠多肽的分子質(zhì)量分布

    采用高效體積排阻色譜法測(cè)定最優(yōu)條件下酶解的鮰魚骨膠原多肽的分子質(zhì)量分布[11-12]。2 mg/mL的鮰魚骨膠原多肽溶液過0.22 μm水系濾膜后進(jìn)行上樣分析。測(cè)定條件:色譜柱,Waters XBridge Protein BEH 125? SEC(3.5 μm,7.8 mm×300 mm);流動(dòng)相:V(ACN)∶V(0.1%TFA溶液)=40∶60;紫外檢測(cè)220 nm;流速0.4 mL/min;柱溫30 ℃;進(jìn)樣量10 μL。以細(xì)胞色素C(12 384 Da)、抑肽酶(6 511.51 Da)、L-氧化型谷胱甘肽(612.63 Da)和羥脯氨酸(131.13 Da)為標(biāo)準(zhǔn)品繪制相對(duì)分子質(zhì)量校正曲線,利用校正曲線方程計(jì)算酶解液的分子質(zhì)量分布情況。

    1.2.4 Sephadex G-25分離純化

    參照李軍等[13]的方法略作修改。將溶脹好的Sephadex G-25填料裝入玻璃層析柱(1.6 cm×80 cm)中,超純水平衡2~3個(gè)柱體積,膠原多肽溶液過0.22 μm水系濾膜后上樣分析。洗脫條件:洗脫液為超純水,流速0.4 mL/min,檢測(cè)波長(zhǎng)220 nm,每5 min收集1管。多次制備后合并相同組分,凍干。

    1.2.5 膠原多肽鈣結(jié)合能力分析

    稱取0.5 g鮰魚骨膠原多肽及其最優(yōu)組分和0.25 g CaCl2溶于20 mL蒸餾水中,40 ℃水浴1 h。冷卻至室溫后用8倍體積的無水乙醇沉淀4 h,離心取沉淀凍干得到肽-鈣螯合物。最后采用鈣含量顯色檢測(cè)試劑盒測(cè)定鮰魚骨膠原多肽-鈣螯合物的鈣含量,鈣含量可直接反應(yīng)膠原多肽的鈣結(jié)合能力[14]。

    1.2.6 鮰魚骨膠原多肽-鈣螯合物的結(jié)構(gòu)表征

    1.2.6.1 傅里葉紅外光譜測(cè)定

    將1.2.5小節(jié)中確定的鈣螯合能力最強(qiáng)肽組分及其鈣螯合物與干燥的KBr于瑪瑙研缽中混合,充分研磨后壓片,采用傅里葉變換紅外光譜儀在500~4 000 cm-1掃描[15]。

    1.2.6.2 掃描電鏡及能譜分析

    參照張玲[16]的方法將1.2.5小節(jié)中確定的鈣螯合能力最強(qiáng)肽組分及其鈣螯合物分別固定在導(dǎo)電膠帶上,噴金鍍膜,放入掃描電鏡施加電壓獲取微觀結(jié)構(gòu)圖像,并對(duì)其進(jìn)行能譜分析。

    1.2.7 鮰魚骨膠原多肽-鈣螯合物的穩(wěn)定性評(píng)價(jià)

    1.2.7.1 熱穩(wěn)定性分析

    配制5 mg/mL的鮰魚骨膠原多肽-鈣螯合物溶液,分別放置于25(控制組)、50、60、70、80 ℃條件下恒溫水浴1 h,冷卻至室溫后用無水乙醇沉淀,離心凍干,測(cè)定其鈣結(jié)合能力。以控制組的鈣保留率為100%,計(jì)算不同溫度下鮰魚骨膠原多肽-鈣螯合物的鈣保留率。

    1.2.7.2 酸堿穩(wěn)定性分析

    配制5 mg/mL的鮰魚骨膠原多肽-鈣螯合物溶液,以原液為控制組,其余組分別調(diào)pH為2、4、6、8、9,37 ℃水浴2 h,冷卻至室溫后用無水乙醇沉淀,離心凍干,評(píng)價(jià)樣品的鈣結(jié)合能力。以控制組的鈣保留率為100%,計(jì)算不同pH條件下鮰魚骨膠原多肽-鈣螯合物的鈣保留率。

    1.2.7.3 體外模擬消化穩(wěn)定性

    用0.01 mol/L HCl溶液(pH 2.0)配制質(zhì)量濃度為5 mg/mL的鮰魚骨膠原多肽-鈣螯合物,按照1∶50的酶底物質(zhì)量比添加胃蛋白酶模擬胃消化環(huán)境,37 ℃水浴酶解1 h后,用1 mol/L NaOH溶液調(diào)節(jié)pH至7.5,再按照1∶25的酶底物質(zhì)量比加入胰蛋白酶模擬腸消化環(huán)境,37 ℃水浴酶解2 h后,沸水浴加熱滅酶10 min終止酶解。最后冷卻至室溫,并用無水乙醇沉淀,離心凍干,測(cè)定其鈣結(jié)合能力。以未消化的鮰魚骨膠原多肽-鈣螯合物(控制組)的鈣保留率為100%,計(jì)算模擬消化過程中鮰魚骨膠原多肽-鈣螯合物的鈣保留率。

    1.3 數(shù)據(jù)處理

    所有試驗(yàn)重復(fù)3次,實(shí)驗(yàn)結(jié)果以平均值±標(biāo)準(zhǔn)偏差表示,采用Origin 8.6軟件作圖,用SPSS 22.0軟件中的單因素方差分析(ANOVA)評(píng)價(jià)數(shù)據(jù)間的顯著性差異,P<0.05認(rèn)定具有顯著性差異。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 鮰魚骨膠原蛋白多肽酶解單因素試驗(yàn)

    堿性蛋白酶酶解鮰魚骨制備膠原多肽的單因素試驗(yàn)結(jié)果如圖1所示。由圖1-a中可知,鈣結(jié)合能力隨料液比的增加整體呈先上升后下降的趨勢(shì),這是因?yàn)榈孜餄舛葧?huì)影響酶解液的分子擴(kuò)散性,其底物濃度太低,酶與底物不易接近,在料液比為1∶13(g∶mL)時(shí),鈣結(jié)合能力最高,達(dá)到22.95 mmol/L(P<0.05)。由圖1-b可知,堿性蛋白酶的添加量在1%~4%,鈣結(jié)合能力基本呈上升的趨勢(shì),最大值達(dá)到28.47 mmol/L(P<0.05)。繼續(xù)增加酶添加量時(shí),鈣結(jié)合能力反而下降。這是因?yàn)閴A性蛋白酶的酶添加量增加,其水解能力增強(qiáng),當(dāng)繼續(xù)增加酶量,此時(shí)的鈣結(jié)合能力幾乎沒有發(fā)生改變,說明酶與底物達(dá)到飽和,因此確定最佳酶添加量為4%。由圖1-c可知,鈣結(jié)合能力隨著pH的增加整體上呈下降的趨勢(shì),當(dāng)pH為8.0時(shí),鈣結(jié)合能力最高達(dá)到27.68 mmol/L(P<0.05),這是因?yàn)楫?dāng)pH較低時(shí),H+與Ca2+競(jìng)爭(zhēng)供電基團(tuán),并促進(jìn)肽-鈣螯合物中Ca2+的解離,而pH過高時(shí),溶液中的OH-會(huì)與Ca2+形成Ca(OH)2沉淀物,導(dǎo)致肽鈣結(jié)合能力下降[17-18]。同時(shí),當(dāng)酶解pH值為8.0時(shí),正好為堿性蛋白酶的最適pH,此時(shí)的酶解活性最高[13]。

    a-料液比;b-酶添加量;c-pH值;d-酶解時(shí)間;e-酶解溫度圖1 酶解條件對(duì)鈣結(jié)合能力的影響Fig.1 Effects of enzymatic hydrolysis conditions on calcium binding capacity

    由圖1-d可知,隨著酶解時(shí)間的延長(zhǎng),鈣結(jié)合能力呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì),當(dāng)酶解時(shí)間為2 h時(shí),鈣結(jié)合活性達(dá)到最大值27.56 mmol/L(P<0.05)。這是因?yàn)楫?dāng)酶解反應(yīng)開始時(shí),堿性蛋白酶與魚骨底物激烈反應(yīng),膠原多肽含量增加,其鈣結(jié)合能力也隨之增加,但隨著酶解時(shí)間的延長(zhǎng),膠原多肽也會(huì)被過度水解成氨基酸,使與鈣結(jié)合的膠原多肽含量降低。由圖1-e可知,鈣結(jié)合能力隨著酶解溫度增加呈先上升后下降的趨勢(shì),在酶解溫度為40 ℃時(shí),其鈣結(jié)合能力達(dá)到最大值27.48 mmol/L(P<0.05)。其原因在于隨著溫度的逐漸增加,堿性蛋白酶活性增強(qiáng),但過高的溫度會(huì)導(dǎo)致堿性蛋白酶酶活力下降甚至失活,影響膠原多肽與鈣的結(jié)合能力。綜上所述,由單因素試驗(yàn)可確定堿性蛋白酶制備鮰魚膠原多肽的最佳酶解工藝:料液比1∶13(g∶mL),酶添加量4%,pH 8.0,酶解時(shí)間2 h,酶解溫度40 ℃,此時(shí)制備的鮰魚膠原多肽與鈣結(jié)合能力為29.37 mmol/L。

    2.2 鮰魚骨膠原蛋白肽的分子質(zhì)量分布分析

    鮰魚骨膠原多肽分子質(zhì)量分布情況如圖2-a所示,混合標(biāo)準(zhǔn)品分離效果良好。依據(jù)標(biāo)準(zhǔn)品與保留時(shí)間的關(guān)系,以相對(duì)分子質(zhì)量的對(duì)數(shù)(lgMw)對(duì)保留時(shí)間(t)作線性回歸得到相對(duì)分子質(zhì)量校正曲線,如圖2-b所示,其相對(duì)分子質(zhì)量校正曲線方程:lg(Mw)=-0.188 1t+6.642 1,R2=0.996 6,表明相對(duì)分子質(zhì)量的對(duì)數(shù)與保留時(shí)間(t)具有良好的線性關(guān)系,可根據(jù)相對(duì)分子質(zhì)量校正曲線方程和鮰魚骨膠原多肽的出峰時(shí)間,計(jì)算出鮰魚骨膠原多肽粉末各組分的分子質(zhì)量分布情況。

    a-標(biāo)準(zhǔn)品的體積排阻色譜圖;b-相對(duì)分子質(zhì)量校正曲線;c-鮰魚骨膠原多肽分子質(zhì)量范圍圖2 標(biāo)準(zhǔn)品的體積排阻色譜圖、相對(duì)分子質(zhì)量校正曲線和鮰魚骨膠原多肽分子質(zhì)量分布Fig.2 Size exclusion chromatogram, relative molecular mass calibration curve and molecular mass distribution of catfish bone collagen polypeptide注:相對(duì)含量的數(shù)據(jù)來源于高效液相色譜分析結(jié)果

    鮰魚骨膠原多肽的高效體積排阻色譜圖如圖2-c所示,圖中主要出現(xiàn)4個(gè)峰,表明鮰魚骨膠原多肽由4種不同分子質(zhì)量膠原多肽所組成。通過相對(duì)分子質(zhì)量校正曲線方程和鮰魚骨膠原多肽的出峰時(shí)間計(jì)算,分子質(zhì)量分布如2-c所示,鮰魚骨膠原多肽的分布范圍廣,大小不一,且分子質(zhì)量范圍為195~1 967 Da的膠原多肽相對(duì)含量最高,約占鮰魚骨膠原多肽整體的77.73%。因此,采用Sephadex G-25分子層析將其進(jìn)行分離純化,并分析各個(gè)組分對(duì)鈣結(jié)合活性的影響。

    2.3 鮰魚骨膠原多肽Sephadex G-25分離純化分析

    凝膠過濾層析可根據(jù)樣品的分子質(zhì)量大小對(duì)樣品進(jìn)行分離,分子質(zhì)量大的樣品不能進(jìn)入凝膠顆粒,先被洗脫下來,分子質(zhì)量小的樣品后被洗脫出來[19]。鮰魚骨膠原多肽經(jīng)Sephadex G-25分離純化的圖譜如圖3-a所示,鮰魚骨膠原多肽按照分子質(zhì)量大小被分離成3個(gè)不同組分,依次命名為F1、F2、F3。3個(gè)組分的鈣結(jié)合能力如圖3-b所示,F(xiàn)1、F2、F3組分與鈣的結(jié)合能力分別為1.78、5.43、6.69 mmol/L,其中F3組分顯示出最高的鈣結(jié)合能力,這與低分子質(zhì)量的多肽更容易與金屬離子結(jié)合相符合[20]。

    a-Sephadex G-25凝膠過濾層析色譜圖;b-肽-鈣結(jié)合能力圖3 鮰魚骨膠原多肽的Sephadex G-25凝膠過濾層析色譜圖和各個(gè)組分的鈣結(jié)合能力Fig.3 Sephadex G-25 gel filtration chromatography of catfish bone collagen polypeptide-calcium chelate and calcium binding capacity of different components注:不同小寫字母表示顯著性差異(P<0.05)(下同)

    2.4 鮰魚骨膠原多肽-鈣螯合物結(jié)構(gòu)表征分析

    2.4.1 傅里葉紅外光譜

    圖4 F3和肽-鈣螯合物的紅外光譜圖Fig.4 Infrared spectra of F3 and peptide-calcium chelate

    2.4.2 掃描電鏡及能譜分析

    F3組分及其肽-鈣螯合物的掃描電鏡如圖5-a和圖5-b所示,F(xiàn)3組分表面呈現(xiàn)光滑的平面,其表面還存在由于快速冷凍干燥而形成的裂紋。與Ca2+螯合后,其表面變?yōu)榇植?、疏松、多孔的形狀,且多個(gè)球狀連接一起,這是由于膠原多肽和Ca2+發(fā)生配位結(jié)合,Ca2+的嵌入和膠原多肽對(duì)Ca2+的截留共同作用的結(jié)果。為了更詳細(xì)了解F3組分及其肽-鈣螯合物中內(nèi)部元素分布情況,采用能譜進(jìn)行分析,結(jié)果如圖5-c和圖5-d所示。F3組分及其肽-鈣螯合物都能檢測(cè)到鈣元素,同時(shí)還共同含有N、C、O、Na、Cl等元素。但肽-鈣螯合物中鈣元素的信號(hào)強(qiáng)度要明顯強(qiáng)于F3組分,說明肽-鈣螯合物中的鈣含量要明顯高于F3組分。通過掃描電鏡和能圖分析可知,F(xiàn)3組分與Ca2+發(fā)生了螯合作用,形成了新的物質(zhì)。

    a-F3掃描電鏡圖;b-肽-鈣螯合物掃描電鏡圖;c-F3能譜圖;d-肽-鈣螯合物能譜圖圖5 F3及肽-鈣螯合物的掃描電鏡及能譜分析Fig.5 Scanning electron microscopy and energy spectrum analysis of F3 and its peptide-calcium chelate

    2.5 鮰魚骨膠原多肽鈣螯合物穩(wěn)定性評(píng)價(jià)

    2.5.1 熱穩(wěn)定性

    熱處理是食品加工的常用手段,因此本研究以鈣保留率為評(píng)價(jià)指標(biāo),考察了不同熱處理溫度對(duì)鮰魚骨膠原多肽-鈣螯合物穩(wěn)定性的影響。如圖6-a所示,隨著熱處理溫度的升高(50~80 ℃),鮰魚骨膠原多肽-鈣螯合物的鈣保留率先保持穩(wěn)定,后緩慢降低,但鈣保留率仍在95.91%以上,且無顯著性差異(P>0.05),說明鮰魚骨膠原多肽-鈣螯合物具有一定的熱穩(wěn)定性。這可能是因?yàn)镃a2+與鮰魚骨膠原多肽通過配位鍵相互作用將形成有序、緊密的結(jié)構(gòu),使其空間結(jié)構(gòu)更加穩(wěn)定[23]。

    a-溫度與鈣保留率關(guān)系;b-pH與鈣保留率關(guān)系;c-消化穩(wěn)定性圖6 鮰魚骨膠原多肽-鈣螯合物溫度、pH和消化穩(wěn)定性關(guān)系分析Fig.6 Calcium retention rate of catfish bone collagen polypeptide-calcium chelate at different temperatures, different acid-base environment, different digestion methods

    2.5.2 酸堿穩(wěn)定性

    鮰魚骨膠原多肽-鈣螯合物的酸堿穩(wěn)定性如圖6-b所示,隨著pH值(2.0~9.0)的增加,鮰魚骨膠原多肽-鈣螯合物的鈣保留率呈現(xiàn)出先增加后下降的趨勢(shì),但鈣保留率均在77.52%以上。與控制組相比,鮰魚骨膠原多肽-鈣螯合物在強(qiáng)酸性環(huán)境下的鈣保留率下降較快,這是由于高H+濃度可與Ca2+競(jìng)爭(zhēng)活性基團(tuán),導(dǎo)致鮰魚骨膠原多肽-鈣螯合物的鈣結(jié)合能力下降[18]。而在堿性環(huán)境下,鮰魚骨膠原多肽-鈣螯合物的鈣保留率略有下降,這是因?yàn)閴A性環(huán)境下的OH-與Ca2+結(jié)合發(fā)生少量的沉淀所致,但有研究表明金屬肽鈣復(fù)合物一旦形成穩(wěn)定結(jié)構(gòu),其解離需要克服較大的活化能[24],所以在弱堿性條件下(pH 8.0)的鈣保留率下降趨勢(shì)不明顯。

    2.5.3 體外消化穩(wěn)定性

    膳食營(yíng)養(yǎng)素的吸收利用需要經(jīng)過胃腸道的消化吸收,其吸收利用率會(huì)受到pH及各種消化酶的影響。因此,需要評(píng)價(jià)鮰魚骨膠原多肽-鈣螯合物在胃腸道模擬消化過程中的穩(wěn)定性,其結(jié)果如圖6-c所示。經(jīng)過胃蛋白酶消化后,鮰魚骨膠原多肽-鈣螯合物的鈣保留率下降到82.25%,這是因?yàn)槟M胃消化環(huán)境的pH為2.0,其高濃度的H+與Ca2+發(fā)生競(jìng)爭(zhēng),與圖6-b的強(qiáng)酸環(huán)境下導(dǎo)致鈣保留率下降的結(jié)果相一致。加入胰蛋白酶再次消化后,鮰魚骨膠原多肽-鈣螯合物的鈣保留率再次下降,其值為73.84%,這可能是胃消化階段的強(qiáng)酸環(huán)境和胰蛋白酶可能對(duì)鮰魚骨膠原多肽存在一定的降解作用,導(dǎo)致其鈣螯合能力降低[25]。但總體來說,其鈣保留率均在70%以上,表明鮰魚骨膠原多肽-鈣螯合物對(duì)胃蛋白酶、胰蛋白酶消化和胃腸道pH環(huán)境不敏感,能較好地保持結(jié)構(gòu)不被破壞,促進(jìn)人體對(duì)鈣的吸收。

    3 結(jié)論

    本文以鮰魚骨為原料,經(jīng)堿性蛋白酶水解后與CaCl2螯合制備鮰魚骨膠原多肽-鈣螯合物。采用鈣結(jié)合能力為評(píng)價(jià)指標(biāo),通過單因素試驗(yàn)得到鮰魚骨膠原多肽的最佳酶解工藝為:料液比1∶13(g∶mL),酶添加量4%,pH 8.0,酶解時(shí)間2 h,酶解溫度40 ℃,此時(shí)制備的鮰魚骨膠原多肽與鈣結(jié)合能力達(dá)到29.37 mmol/L。HPLC分析發(fā)現(xiàn),鮰魚骨膠原多肽的分子質(zhì)量主要集中在195~1 967 Da,其相對(duì)含量約占鮰魚骨膠原多肽整體的77.73%。利用Sephadex G-25分離純化得到3個(gè)組分,其中F3組分的鈣結(jié)合活性最佳。紅外光譜、掃描電鏡和能譜結(jié)果顯示,鮰魚骨膠原多肽的氨基、羧基和酰胺鍵是Ca2+的結(jié)合位點(diǎn),與Ca2+螯合之后,其光滑的平面變?yōu)榇植?、疏松、多孔的形狀,鈣含量明顯增加,都表明有新物質(zhì)的產(chǎn)生。熱穩(wěn)定性和酸堿穩(wěn)定性分析表明,鮰魚骨膠原多肽-鈣螯合物具有一定的耐熱性、耐弱堿性,但在強(qiáng)酸環(huán)境下不穩(wěn)定。消化穩(wěn)定性分析發(fā)現(xiàn),鮰魚骨膠原多肽-鈣螯合物可在胃腸道的環(huán)境中保持穩(wěn)定,其鈣保留率在70%以上,具有促進(jìn)人體鈣吸收的潛力。

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