張 浩,李紹純,劉 昂,劉彥岑,段玉瑩
(青島理工大學(xué)土木工程學(xué)院,山東青島 266033)
在海洋和污水等富含微生物的環(huán)境中,混凝土結(jié)構(gòu)不僅會受到常規(guī)的物理和化學(xué)因素破壞,還會遭受嚴重的微生物腐蝕破壞[1]。微生物容易在混凝土表面附著、生長,造成污損。此外,微生物代謝產(chǎn)生的生物酸會分解混凝土中的水化產(chǎn)物,生成膨脹性的石膏和鈣礬石,從而導(dǎo)致混凝土表層損傷、脫落,甚至引起開裂和鋼筋銹蝕,對混凝土結(jié)構(gòu)的穩(wěn)定性造成極大的威脅[2]。
為了應(yīng)對混凝土微生物腐蝕,當今主流的保護措施包括表面涂層保護、生物滅殺技術(shù)以及混凝土改性處理,其中表面涂層保護是最簡單有效的方法之一[3]。硅烷是一種新型的混凝土涂層材料,可以在混凝土表面形成滲透性防護涂層,通過其低表面能和高疏水性的特點來抑制微生物附著[4]。此外,硅烷涂層具有較強的抗化學(xué)侵蝕能力,能夠在惡劣的海洋環(huán)境中長期使用。
為了提高涂層對微生物腐蝕的防護效果,可以采用在涂層中添加殺菌劑的方法,將涂層保護與生物滅殺技術(shù)聯(lián)合使用。氧化亞銅(Cu2O)作為一種經(jīng)典的殺菌材料,具有高效、廉價、廣譜的優(yōu)點[5]。然而,Cu2O作為涂層殺菌劑時容易出現(xiàn)團聚、沉淀等問題,導(dǎo)致其抑菌能力減弱,防污作用失效。為了克服這些問題,可以采用氧化石墨烯(GO)作為載體與Cu2O結(jié)合,以提高Cu2O的分散性和穩(wěn)定性,從而更好地發(fā)揮出Cu2O的抗菌性能和防污效果[6]。
本研究采用異丁基三乙氧基硅烷(IBTS)作為疏水涂層,分別以納米Cu2O和氧化石墨烯/氧化亞銅復(fù)合物(GO/Cu2O)作為抑菌劑,研制出復(fù)合型硅烷防污涂層。通過芽孢桿菌菌液浸漬試驗?zāi)M微生物對砂漿的附著,研究復(fù)合涂層的防污效果和砂漿表面生物膜的生長規(guī)律,以期為我國混凝土微生物腐蝕防護工作提供參考與幫助。
1.1.1 Cu2O、GO/Cu2O的制備
以硫酸銅作為銅源,聚乙二醇2000(PEG 2000)作為表面活性劑,抗壞血酸作為還原劑,采用化學(xué)沉淀法制備Cu2O和GO/Cu2O。在制備Cu2O時,首先將PEG 2000加入硫酸銅溶液中,充分攪拌,然后加入氫氧化鈉和抗壞血酸,在50 ℃水浴條件下磁力攪拌2 h。反應(yīng)完成后,通過過濾、洗滌、干燥,得到淡黃色的Cu2O微粒。在制備GO/Cu2O時,先將GO分散液與硫酸銅溶液混合,超聲30 min,后續(xù)步驟與Cu2O的制備步驟相同,最后得到黑褐色的GO/Cu2O微粒。
1.1.2 乳液的制備
以IBTS作為硅烷單體,司盤80(Span 80)和平平加O(PPG O)作為乳化劑,PEG 2000作為分散劑,采用溶膠-凝膠法制備硅烷乳液。本試驗共制備3種乳液,包括IBTS硅烷乳液(S)、Cu2O/IBTS硅烷乳液(CS)、GO/Cu2O/IBTS硅烷乳液(CGS)。乳液的合成過程如圖1所示,首先用均質(zhì)機分別制備出水相(去離子水、PPG O)和油相(IBTS、Span 80、PEG 2000)。然后,在三口燒瓶中將水相逐滴加入的油相中,恒溫恒速攪拌5 h后得到S。在制備CS和CGS時,分別以Cu2O和GO/Cu2O作為外加劑加入水相中,其余步驟與S的制備過程相同。
1.1.3 試塊的制備
制備砂漿試塊所用水泥為P·O 42.5硅酸鹽水泥,細集料為ISO標準砂,配比為m(水泥)∶m(砂)∶m(水)=1∶3∶0.5,模具尺寸為40 mm×40 mm×160 mm。試塊制備成型后,置于標準養(yǎng)護室中養(yǎng)護28 d(溫度為21 ℃、相對濕度大于95 %)。養(yǎng)護完成后將試塊切割為40 mm×40 mm×5 mm的薄片,并將表面打磨平整,最后涂覆涂層。
1.1.4 細菌的培養(yǎng)
微生物菌種為大洋芽孢桿菌、類芽孢桿菌混合菌種。采用LB培養(yǎng)基(胰蛋白胨10.0 g/L、酵母浸粉5.0 g/L、氯化鈉10.0 g/L),pH為7.2±0.2。將菌種放入恒溫搖床培養(yǎng)箱中培養(yǎng)(溫度30 ℃,搖晃速度150 r/min)。
1.2.1 Cu2O、GO/Cu2O、硅烷復(fù)合乳液的表征
Cu2O、GO/Cu2O的結(jié)構(gòu)和組成使用D8 Advance型X射線衍射儀(XRD)測定;微粒的形貌使用JEM-1200EX型透射電子顯微鏡(TEM)測定;GO/Cu2O的熱重分析(TGA)使用TG209F3型熱重分析儀測定;硅烷乳液的官能團種類(FTIR)使用TENSOR型紅外光譜儀測定;涂層的接觸角使用SL150型靜態(tài)接觸角測量儀測定,選擇試塊的不同位置測量3次,測試結(jié)果取平均值。
1.2.2 生物膜的掃描電鏡(SEM)和激光共聚焦掃描顯微鏡(CLSM)分析
首先將分別涂覆S、CS、CGS、Cu2O分散液(CW)的試塊及空白對照組分別放入250 mL的芽孢桿菌菌液中。將浸漬14 d后的試塊取出,切割成5 mm×5 mm×5 mm的正方體。然后,將試塊進行固化、洗滌、晾干、噴金處理,使用SU8010型掃描電鏡觀察試塊表面微觀形貌。接著,對樣品進行熒光染色,使用FV1200型激光共聚焦掃描顯微鏡對試塊表面的細胞進行成像。在CLSM圖像中,活細胞呈現(xiàn)綠色斑點,死細胞呈現(xiàn)紅色斑點。
1.2.3 試塊表面細菌附著數(shù)量
將涂覆S、CS、CGS、CW的試塊及空白對照組分別放入250 mL的芽孢桿菌菌液中,進行為期1 d、3 d、7 d、14 d、21 d、28 d的菌液浸漬試驗。試塊從菌液中取出后,用磷酸鹽(PBS)緩沖液沖洗3次,然后浸泡在10 mL的PBS緩沖液中,超聲清洗20 min,超聲清洗會使試塊表面附著的細菌脫落到PBS緩沖液中。最后,將PBS緩沖液稀釋,用平板菌落計數(shù)法統(tǒng)計稀釋液中的菌落數(shù)量。
2.1.1 Cu2O、GO/Cu2O表征分析
圖2為GO、Cu2O、GO/Cu2O的XRD譜圖。
圖2 GO、Cu2O、GO/Cu2O的XRD分析Figure 2 XRD analysis of GO,Cu2O and GO/Cu2O
由圖2可見,Cu2O的衍射峰與標準Cu2O譜圖(JCPDS No.05-0667)很好地吻合,并未出現(xiàn)屬于銅或氫氧化銅的峰值,這表明Cu2O純度很高,產(chǎn)物中雜質(zhì)較少。GO/Cu2O與Cu2O的峰值基本相同,這表明Cu2O與GO結(jié)合后晶體結(jié)構(gòu)基本保持原樣。GO在11°處有一個明顯的特征衍射峰,但在GO/Cu2O中,這個特征峰消失了。這是因為在制備GO/Cu2O時,超聲處理會使GO分散和剝離。在剝離過程中GO可能會發(fā)生晶格常數(shù)、晶格結(jié)構(gòu)的變化,剝離后的GO層疊狀態(tài)破壞、層數(shù)減少,這都會導(dǎo)致GO的XRD信號變?nèi)趸蛳В?]。并且,在Cu2O與GO的結(jié)合過程中,Cu2O微粒會向GO薄片之間的層間遷移,阻止了GO薄片的再堆積,使其處于剝離狀態(tài)。處于剝離狀態(tài)的GO具有更大的比表面積,能夠承載更多的Cu2O。
圖3為GO/Cu2O的TGA圖譜。
圖3 GO/Cu2O的TGA分析Figure 3 TGA analysis of GO/Cu2O
由圖3可見,GO/Cu2O的失重率為9.133 %,其在150~300 ℃內(nèi)的質(zhì)量下降速度最快。GO/Cu2O的失重主要是含氧官能團(如羥基、羧基)加熱裂解導(dǎo)致,而這些含氧官能團主要來自其中的GO。這表明在GO/Cu2O的合成過程中,僅有部分GO被抗壞血酸還原,仍能保留大量的含氧官能團。
圖4為Cu2O、GO/Cu2O的TEM圖。
圖4 TEM圖Figure 4 TEM images
由圖4a可見,Cu2O顆粒呈多面體結(jié)構(gòu),粒徑為30~50 nm。由圖4b可見,Cu2O顆粒緊密地附著在GO表面,基本沒有出現(xiàn)團聚。GO薄片呈獨立的單層結(jié)構(gòu),這表明GO已被很好地剝離,這與XRD的分析得出的結(jié)果相一致。
2.1.2 硅烷乳液的表征分析
圖5為硅烷乳液的FTIR分析。
圖5 硅烷乳液的FTIR分析Figure 5 FTIR analysis of silane emulsion
由圖5可見,650 cm-1屬于Cu(I)—O的伸縮振動峰,1 090 cm-1屬于Si—O—C的伸縮振動峰,1 630 cm-1屬于C=O的伸縮振動峰,3 380 cm-1屬于—OH的伸縮振動峰[8-9]。CGS在1 090 cm-1和1 630 cm-1處的峰值強度均高于S和CS,而在3 380 cm-1處的峰值均低于S和CS。這表明,CGS中Si—O—C和C=O的含量最多,而—OH含量最少。根據(jù)GO與硅烷的結(jié)合機理可知,兩者主要是通過GO攜帶的含氧官能團與硅烷分子中的—OH脫水縮合形成共價鍵連接[8]。因此,在CGS中除了硅烷分子自身的Si—O—C外,GO也以Si—O—C的形式與硅烷分子連接,這會導(dǎo)致Si—O—C的數(shù)量增加。同時,CGS中的GO含有大量的含氧官能團,這會導(dǎo)致C=O的數(shù)量增多。乳液中的—OH主要來自于硅烷分子,而在CGS中,GO與硅烷分子進行脫水縮合,會消耗大量的—OH,這會導(dǎo)致—OH的數(shù)量減少。
在CS和CGS的紅外光譜圖中都有屬于Cu(I)—O的峰,這表明了兩種復(fù)合乳液中都存在Cu2O。在CS的合成過程中,硅烷分子可以與Cu2O中的—OH反應(yīng)形成Si—O—Cu,這會導(dǎo)致乳液中Si—O—C含量降低[10]。然而,CS與S的Si—O—C峰值相似,這說明Cu2O中的—OH含量有限,Cu2O與硅烷分子以Si—O—Cu結(jié)合的形式相對較少,主要通過靜電相互作用力和范德華力結(jié)合。相比之下,在CGS中的Cu2O負載在GO表面,通過GO與硅烷分子間接結(jié)合。
生物膜是微生物生存的主要場所。在水泥基材料表面,微生物通過形成生物膜來適應(yīng)環(huán)境變化,維持生長和繁殖[11]。通過觀察砂漿表面生物膜的狀態(tài),可以判斷微生物的污損情況,同時有助于研究涂層的防護效果。圖6為在菌液中浸泡14 d后試塊表面的形貌。
圖6 在菌液中浸泡14 d后試塊表面的形貌Figure 6 Surface morphology images of sample blocks after soaking in bacteria solution for 14 days
由圖6a可見,可以觀察到對照組試塊表面布滿了白色的絮狀物質(zhì),這是由芽孢桿菌附著形成的生物膜。而在圖6b和圖6c中,也能夠觀察到在試塊表面有薄薄的一層生物膜,但是在圖6d和圖6e中,試塊表面上的生物膜并不明顯。這表明,涂覆涂層均能抑制生物膜的生長,從而保護試塊免受微生物污染。在涂層中,具有疏水性能和抑菌性能的CS和CGS保護效果最好。
圖7為試塊表面生物膜的SEM圖,放大倍數(shù)為10K倍。在圖7a對照組中,試塊表面已經(jīng)形成了較為成熟的生物膜,生物膜的表面結(jié)構(gòu)并不是均勻、平整的,而是呈現(xiàn)出層疊狀態(tài),生物膜上還存在有明顯的孔洞,這些孔洞被認為是底物和營養(yǎng)物進入生物膜的通道[12]。在圖7b和圖7c中,試塊表面的生物膜處于生長期,生物膜以絲狀菌為骨架,通過絮狀的胞外聚合物交聯(lián)在一起。在圖7c中,還可以觀察到有菌體裂解的現(xiàn)象,根據(jù)Cu2O的抑菌原理可以得知,這是由于Cu2O引起了生物膜的脂質(zhì)過氧化反應(yīng),從而破壞生物膜的完整性,導(dǎo)致細胞內(nèi)容物的泄露和細胞死亡[13]。而在圖7d和圖7e中,沒有明顯的生物膜結(jié)構(gòu)存在,只能看到一些散落分布的細菌。同時,依然能觀察到IBTS與砂漿構(gòu)建的疏水涂層,這種涂層呈連續(xù)多孔的網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)。
圖7 試塊表面生物膜的SEM圖Figure 7 SEM images of biofilms on the surface of sample blocks
圖8為接觸角示意圖。
圖8 接觸角示意圖Figure 8 Schematic diagrams of contact angles
由圖8b、圖8d和圖8e可見,S、CS和CGS的接觸角分別為104.76°、101.22°、112.76°,這能說明3種硅烷涂層均具有良好的疏水性能。硅烷涂層對細菌附著的影響有以下幾方面:第一,硅烷會與砂漿中的羥基反應(yīng),形成一個由硅氧烷鏈構(gòu)成的疏水層。這種疏水層限制了菌液在砂漿表面的接觸和浸入,從而抑制細菌的定植;第二,根據(jù)巴克斯特模型(Cassie-Baxter模型),涂層中粗糙的網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)會在內(nèi)部形成許多微小的孔隙,這些孔隙可以形成“氣穴”[14]。當涂層表面浸入液體中時,液體會填充這些氣穴,并在液體和涂層表面之間形成一個微小的空氣層。這種空氣層會減少菌液和涂層的接觸面,從而降低微生物的粘附;第三,硅烷涂層的Si—O—Si骨架的表面能較低,這使得與其接觸的生物分子(如蛋白質(zhì)、細胞膜等)難以發(fā)生相互作用。同時,微生物在這種低表面能的表面上的粘附能力也會降低,這意味著微生物不容易在表面上形成聚集體,也不容易沿表面擴散生長[15];第四,硅氧化物表面的化學(xué)性質(zhì)也具有一定的惰性,不容易與生物分子發(fā)生反應(yīng),這也降低了微生物在表面附著的可能性[16]。
圖9為試塊表面生物膜的CLSM圖。由圖9可見,具有疏水性質(zhì)的S、CS、CGS表面細菌較為分散,而親水性質(zhì)的對照組和CW表面細菌較為聚集,并且CW的細菌聚集狀態(tài)較對照組更為明顯。這是因為在Cu2O的影響下,細菌更傾向于生成群落抵御殺菌物質(zhì)的侵害[17]。然而,在CS和CGS中沒有出現(xiàn)明顯的細菌群落,這說明硅烷涂層可以有效限制細菌的聚集,從而增強Cu2O的殺菌效果。
圖9 試塊表面生物膜的CLSM圖Figure 9 CLSM images of biofilms on the surface of sample blocks
圖10為CLSM圖中活細胞和死細胞的粘附面積占比。由圖10可見,在CW中活細胞的數(shù)量是死細胞的1.35倍,而在CS和CGS中,活細胞的數(shù)量分別是死細胞的2.16倍和2.18倍。這表明,在CS和CGS中,涂層不僅殺死了細胞,還使死亡細胞從表面脫離,從而導(dǎo)致活細胞和死細胞的比值升高。在生物膜中,死亡的細胞可以作為生長基質(zhì)為周圍細胞提供養(yǎng)分,從而促進生物膜的生長[18]。然而,死亡后的細胞會失去其原有的生命活力和細胞膜完整性,通常表現(xiàn)出較低的表面張力和粘附能力[19]。在疏水涂層中,這些失去了粘附能力的死亡細胞很容易從表面分離或剝落,因此疏水涂層具有一定的自清潔能力,可以有效減緩生物膜的生成。
圖10 表面活細胞和死細胞的粘附面積占比Figure 10 Percentage of adhesion area between live cells and dead cells on the surface
圖11為砂漿表面細菌生長曲線。
圖11 砂漿表面細菌生長曲線Figure 11 Growth cruves of bacteria on the surface of mortar
由圖11可見,對照組中的細菌數(shù)量在1~14 d內(nèi)呈指數(shù)增長,隨后在14~21 d內(nèi)細菌數(shù)量增長速度放緩,呈對數(shù)增長。到21 d左右時,細菌數(shù)量逐漸趨于穩(wěn)定,砂漿表面細菌達到了動態(tài)平衡狀態(tài)。與對照組相比,涂覆涂層的各組細菌數(shù)量都有不同程度的減少,這表明涂層對細菌附著均具有抑制作用。S和CW對細菌的抑制作用在早期較為顯著,但隨著浸泡時間的增加,抑制作用逐漸減弱。S和CW的防護效果衰減的原因是不同的。對于S而言,隨著表面生物膜的生成,硅烷涂層的疏水性能降低,涂層抑制微生物附著的能力也不再顯著。對于CW而言,涂層中Cu2O的流失導(dǎo)致抑菌性能的減弱。
CS和CGS對微生物附著都具有較好的抑制作用,其中CGS的效果更好。產(chǎn)生這種差異的原因有幾個方面:第一,CGS中的Cu2O負載在GO表面后具有更好的分散性,這限制了Cu2O的團聚,使得Cu2O殺菌效果提高;第二,根據(jù)復(fù)合乳液的FTIR分析可知,CS中的Cu2O主要以范德華力和靜電作用與硅烷分子結(jié)合,而CGS中的Cu2O是在GO表面原位生成,通過電子偶合作用吸附,并以GO為載體與硅烷分子成鍵結(jié)合[20-21]。因此,CGS中Cu2O的穩(wěn)定性更高,表現(xiàn)出更為持久的抑菌效果。另外,CGS比CS的接觸角更大,這是因為添加了GO的硅烷涂層具有更好的疏水性[8]。
圖12為CS、CGS抑菌疏水涂層的作用機理。
圖12 復(fù)合涂層防污機理Figure 12 Antifouling mechanism of the composite coating
由圖12可見,首先,IBTS的疏水效果可以阻止外界中細菌與有機物的附著,從而抑制生物膜的生長。其次,當細菌附著在涂層表面時,涂層中的Cu2O能夠滅殺這些細菌。同時,死亡的細菌在疏水表面上很容易被水流沖走,從而減緩細菌在涂層表面的沉積,使得涂層具備自清潔能力。此外,疏水涂層還可以產(chǎn)生分散效應(yīng),防止細菌的聚集,這可以進一步提升Cu2O的殺菌效果??偟膩碚f,IBTS的疏水效果和Cu2O的殺菌效果相互協(xié)作,能夠更加有效地抑制細菌在涂層表面的附著和生長。
(1) Cu2O與GO結(jié)合后,不僅可以阻止Cu2O的團聚,而且還可以阻止GO薄片的層疊堆積,這會使兩者的比表面積增大,性能提高。
(2) 在CS中,Cu2O主要以靜電相互作用力和范德華力與硅烷分子結(jié)合。在CGS中,Cu2O是通過負載在GO表面,由GO與硅烷分子形成共價鍵,從而間接與硅烷分子結(jié)合,這種結(jié)合形式更為穩(wěn)定。
(3) CS和CGS中的抑菌性和疏水性在微生物防護方面具有協(xié)同效果,兩種復(fù)合涂層的防護效果要好于單一屬性的S和CW。
(4) CGS比CS防護效果更好,這得益于GO提高了CGS的疏水性能,以及GO/Cu2O帶來的更為高效和持久的抑菌性能。