陳威,汪艷,金瓊,黃慧
1.溫州醫(yī)科大學(xué)附屬口腔醫(yī)院 兒童口腔科,浙江 溫州 325000;2.溫州醫(yī)科大學(xué)附屬口腔醫(yī)院 種植科,浙江 溫州 325000;3.上海交通大學(xué)附屬第九人民醫(yī)院 修復(fù)科,上海 200011
本課題組前期體外實(shí)驗(yàn)結(jié)果證實(shí)了antagomir-30d正性調(diào)控大鼠骨髓基質(zhì)干細(xì)胞的成骨分化作用[1],針對這一研究成果,本研究擬建立體內(nèi)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物模型,進(jìn)一步驗(yàn)證miR-30d對成骨調(diào)控的作用。研究假設(shè)由骨生長調(diào)控因子miRNA、種子細(xì)胞骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(bone marrow mesenchymal stem cells, BMSCs)、生物支架材料磷酸鈣骨水泥(calcium phosphate cement, CPC)構(gòu)建的組織工程骨復(fù)合物可以用作理想的骨再生材料。實(shí)驗(yàn)中,我們將復(fù)合物植入到裸鼠皮下,并分別于植入后2周、4周、8周取出植入體。其中,2周的植入體用于抽提RNA進(jìn)行RT-PCR檢測,分析成骨基因堿性磷酸酶(alkaline phosphatase, ALP)、骨鈣素(osteocalcin, OC)和Runt相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子2(Runtrelated transcription factor 2, RUNX2)mRNA水平的表達(dá)情況。植入后4周、8周的植入體取出進(jìn)行苦味酸品紅組織學(xué)染色和組織形態(tài)學(xué)計(jì)量觀察分析新骨生成情況。實(shí)驗(yàn)通過構(gòu)建骨重建調(diào)控因子antagomir-30d/種子細(xì)胞BMSCs/CPC支架材料組織工程骨復(fù)合物用于BALB/c裸鼠皮下異位成骨模型,探討其與新生骨形成之間可能的聯(lián)系,為深入研究miRNAs的功能及體內(nèi)應(yīng)用提供指導(dǎo)。
1.1 材料 8周齡SPF級BALB/c裸鼠15只,雄性,健康。所有動(dòng)物及培養(yǎng)條件均由上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬第九人民醫(yī)院動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心提供,實(shí)驗(yàn)動(dòng)物許可證號:SYXK(滬)2020-0025。多孔支架材料CPC,由上海瑞邦生物材料有限公司提供,孔徑400~500 μm,孔隙率約為72%。成品為圓柱形外觀,直徑5 mm,高2 mm,經(jīng)高溫高壓消毒備用。α-MEM培養(yǎng)基購自美國Invitrogen公司,胎牛血清購自美國Hyclone公司,SYBR?PrimeScript?RT-PCR Kit購自日本Takara公司,Superscript II反轉(zhuǎn)錄試劑盒購自日本Takara公司,RNAse Free Water購自美國Ambion公司,品紅購自上海邁坤化工有限公司,苦味酸購自上海順勃生物工程有限公司。
1.2 大鼠BMSCs的獲取和培養(yǎng)方法 大鼠脫臼處死,置于75%乙醇中浸泡消毒10 min,在無菌條件下取其脛骨和股骨,剔除其周圍附著肌肉,將其兩端干骺端剪除,暴露骨髓腔。10 mL無菌注射器吸取含有肝素(200 U/mL)和10% FBS的α-MEM培養(yǎng)液反復(fù)沖洗骨髓腔至由紅色變?yōu)榘咨?。?xì)胞懸液以 1 800 r/min的轉(zhuǎn)速離心10 min,棄上清液,加入標(biāo)準(zhǔn)培養(yǎng)液10 mL,用滴管輕輕吹散細(xì)胞團(tuán)后接種于10 cm培養(yǎng)皿上。放置于37 ℃,5% CO2,飽和濕度的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。次日首次換液,以后每3 d換液。待鏡下觀察細(xì)胞呈80%匯合時(shí),吸棄培養(yǎng)液,0.25%胰酶和0.02% EDTA消化貼壁細(xì)胞,在1~2 min于鏡下見貼壁細(xì)胞皺縮后,加入適量培養(yǎng)液終止消化,吸取培養(yǎng)液輕吹尚未脫落的細(xì)胞至所有細(xì)胞懸起,然后轉(zhuǎn)移至離心管內(nèi),吹打使之分散均勻。用血細(xì)胞計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù)細(xì)胞數(shù)量。將細(xì)胞懸液以1 000 r/min 的轉(zhuǎn)速離心5 min,棄上清液,加入α-MEM培養(yǎng)液,調(diào)整細(xì)胞濃度為1×105/mL,輕輕吹打使細(xì)胞分散均勻,接種于數(shù)個(gè)10 cm培養(yǎng)皿內(nèi),置于37 ℃,5% CO2,飽和濕度條件培養(yǎng)箱中培養(yǎng),每3 d換液,倒置顯微鏡下觀察細(xì)胞生長情況和形態(tài)變化。待細(xì)胞80%匯合時(shí)按上述操作進(jìn)行傳代。采用第2或第3代細(xì)胞進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。細(xì)胞行成骨誘導(dǎo)分化時(shí),需采用成骨誘導(dǎo)培養(yǎng)液。
1.3 細(xì)胞處理 采用第2或第3代BMSCs鋪板于6孔板底,每孔的細(xì)胞密度為1×105個(gè)/孔。實(shí)驗(yàn)共分3組:空白對照組、antagomir-30d組、NC組(NC為采用無意義的一段核苷酸,用于antagomir-30d的陰性對照)。鋪板后次日antagomir-30d組與NC組分別加入antagomir-30d與NC使之終濃度為150 nmol/L,空白對照組不做處理。48 h后更換成骨誘導(dǎo)液,每3 d換液,培養(yǎng)至7 d,收集細(xì)胞。
1.4 裸鼠異位成骨分析
1.4 .1 實(shí)驗(yàn)分組:本研究分為3組:CPC+未做轉(zhuǎn)染的BMSCs(空白對照組);CPC+轉(zhuǎn)染150 nmol/L antagomir-30d的BMSCs(antagomir-30d組);CPC+轉(zhuǎn)染150 nmol/L NC的BMSCs(NC組)。
1.4 .2 細(xì)胞支架材料復(fù)合物的體外構(gòu)建:①將直徑為5 mm,高2 mm的圓柱形多孔CPC材料放入EP管中,消毒備用。②處理細(xì)胞,成骨誘導(dǎo)7 d后,0.25% 胰酶和0.02% EDTA消化收集細(xì)胞,制備成細(xì)胞懸液,使其終濃度為1×107個(gè)/mL,然后將各組細(xì)胞(未做轉(zhuǎn)染的BMSCs、轉(zhuǎn)染150 nmol/L antagomir-30d的BMSCs、轉(zhuǎn)染150 nmol/L NC的BMSCs)分別接種于消毒備用的圓柱狀CPC支架材料上,使材料飽和而沒有含細(xì)胞的培養(yǎng)液流出。③將各組細(xì)胞因子支架材料復(fù)合體植入裸鼠皮下(方法見1.4.3)。④剩余細(xì)胞材料復(fù)合體于體外繼續(xù)培養(yǎng)。待體外培養(yǎng)至1、3 d后,收集細(xì)胞材料復(fù)合體于掃描電鏡下觀察超微形態(tài)。將細(xì)胞材料復(fù)合體于預(yù)冷的2.5%戊二醛固定液中固定。固定完成后,不同濃度乙醇中梯度脫水(50%、70%、80%、90%、100%、100%)。各乙醇濃度分別脫水10 min。抽真空,噴金,掃描電鏡觀察細(xì)胞黏附與伸展。
1.4 .3 手術(shù)方法:①SPF級BALB/c裸鼠行乙醚吸入麻醉。取其正中俯臥位,將其背部脊柱兩側(cè)術(shù)區(qū)用75%乙醇消毒。②在裸鼠背部正中兩側(cè),距脊柱約10 mm處,沿脊柱長軸切開,作長約15 mm的長條形切口,鈍性分離至切口下約10 mm。共作3個(gè)切口[2]。③隨機(jī)將antagomir-30d組、空白對照組和NC組細(xì)胞因子支架材料復(fù)合體植入裸鼠背部各切口處。4-0縫線縫合,放回籠內(nèi)飼養(yǎng)。
1.4 .4 術(shù)后動(dòng)物大體觀察:觀察術(shù)后動(dòng)物的精神、飲食情況、傷口有無感染以及有無材料排出等異 常[2]。
1.4 .5 植入物大體觀察:分別于術(shù)后第2、第4、第8周,處死裸鼠5只。取出植入物,并觀察其形態(tài)、色澤及包膜情況。
1.5 RT-PCR TRIzol法抽提細(xì)胞總RNA。依照反轉(zhuǎn)錄試劑盒說明反轉(zhuǎn)錄成cDNA。根據(jù)NCBI網(wǎng)站 GenBank數(shù)據(jù)庫查詢大鼠相關(guān)基因的mRNA序列,應(yīng)用Oligo 6.71軟件進(jìn)行引物設(shè)計(jì)[3]。
1.6 組織學(xué)染色
1.6 .1 硬組織切片的制備:分別于術(shù)后4周、8周取出植入物,經(jīng)過固定,脫水,透明,滲透,包埋后切片處理。
1.6 .2 硬組織切片苦味酸品紅組織學(xué)染色:標(biāo)本超聲去雜質(zhì)30 s,雙蒸水沖洗2 min;將切片置于0.1%甲酸溶液中3 min,流水沖洗2 min;置于20%甲醇中2 h,流水沖洗2 min;將切片置于60 ℃恒溫水浴箱內(nèi),Stevenol藍(lán)染液染色5 min;60 ℃雙蒸水沖洗2 min,并擦干;室溫下,用現(xiàn)配的苦味酸品紅溶液染色,染色8 min;100%乙醇洗滌2次,切片盒中操作。顯微鏡下觀察和拍照。
1.6 .3 組織形態(tài)學(xué)分析:將第4周及第8周的組織學(xué)切片,置于低倍顯微鏡下電腦攝取圖像(Image Pro 6.0 system),包括完整的植入物視野。利用圖像分析軟件統(tǒng)計(jì)新生骨在各植入物區(qū)域所占的面積百分比。
1.7 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理方法 應(yīng)用SPSS18.0統(tǒng)計(jì)軟件處理。正態(tài)分布計(jì)量資料以±s表示,多組比較采用單因素方差分析。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 BMSCs在CPC表面生長的超微形態(tài)觀察 掃描電鏡下觀察可見BMSCs在CPC支架上生長良好,復(fù)合培養(yǎng)l d后,BMSCs細(xì)胞黏附于CPC表面,有的細(xì)胞突觸開始伸展;3 d后,可見細(xì)胞數(shù)量明顯增多,在CPC表面連接成片,相互融合。見圖1。
圖1 掃描電鏡觀察BMSCs在CPC材料上生長情況(×500)
2.2 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物大體觀察 植入手術(shù)后所有實(shí)驗(yàn)裸鼠蘇醒順利,且精神、活動(dòng)、飲食正常。傷口愈合良好,未觀察到有紅腫、感染、開裂及竇道形成,未觀察到植入物排出[2]。整個(gè)實(shí)驗(yàn)期內(nèi),未出現(xiàn)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物死亡(見圖2)。
圖2 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物大體觀察
2.3 植入物大體觀察 植入后至取出的各時(shí)間點(diǎn),植入物周圍有薄層纖維膜樣物質(zhì)覆蓋,外觀保持圓柱形,植入體周圍無積液,無化膿感染現(xiàn)象(見圖3)。
圖3 植入物大體觀察
2.4 植入4周后組織學(xué)觀察 復(fù)合物植入后4周,光學(xué)顯微鏡下觀察顯示,空白對照組和NC組均未見新骨形成,而antagomir-30d組則有少量新骨形成,新生骨緊貼CPC支架材料,主要分布在支架材料的四周,呈花邊狀。見圖4。
圖4 植入4周組織形態(tài)圖
2.5 植入8周后組織學(xué)觀察 植入8周后,光學(xué)顯微鏡下觀察顯示(見圖5),空白對照組和NC組均有明顯新骨形成,而antagomir-30d組新骨形成大大增加,新生骨滲透整個(gè)CPC支架材料。
圖5 植入8周組織形態(tài)圖
2.6 組織形態(tài)學(xué)分析 支架材料復(fù)合物植入4周后,空白對照組和NC組均未見新骨形成,而antagomir-30d組新骨面積百分比為1.28%±0.19%。支架材料復(fù)合物植入8周后,空白對照組新骨面積百分比為2.33%±0.52%,NC組新骨面積百分比為1.82%±0.53%,而antagomir-30d組新骨面積百分比明顯高于空白對照組與NC組(P<0.05),達(dá)到17.79%±1.15%。
2.7 植入2周后RT-PCR結(jié)果 體內(nèi)植入2周后,取出各組植入物,抽提總RNA進(jìn)行RT-PCR實(shí)驗(yàn),結(jié)果表明,各成骨基因ALP、OC、RUNX2的mRNA水平表達(dá)量antagomir-30d組最高,明顯高于NC組及空白對照組(P<0.05),見圖6。
圖6 植入2周后RT-PCR檢測各成骨基因的表達(dá)量
目前,骨移植材料根據(jù)來源大致可分為四類:自體骨、異體骨、異種骨和人工骨。其中,自體骨移植會(huì)增加患者創(chuàng)傷,而且取骨量有限,移植手術(shù)所引起的不良反應(yīng)如疼痛、感染、出血等限制了它的應(yīng)用[4];異體骨和異種骨均存在排異反應(yīng),其中異種骨排異反應(yīng)更為劇烈,而異體骨還存在交叉感染問題。利用骨組織工程構(gòu)建形成的人工骨,可以按需塑形、批量生產(chǎn),提供了修復(fù)大面積骨缺損的可能,目前已經(jīng)成為理想的創(chuàng)傷修復(fù)和功能重建的材料[5]。
近年來,利用骨組織工程技術(shù)治療種植體骨量不足、骨結(jié)合不良、骨缺損等已顯示出卓越的治療前景。具有再生能力的種子細(xì)胞、骨生長因子,以及人工合成的生物支架材料是骨組織工程的三大組成要素[6]。這三大要素可相互組合從而構(gòu)建組織工程骨:種子細(xì)胞/支架材料/生長因子;種子細(xì)胞/支架材料;生長因子/支架材料。
本研究所選用的CPC是一種新型人工骨支架材料,由于材料本身具備良好的生物活性與生物相容性,自1986年開始就受到了較多的關(guān)注[7-9]。細(xì)胞的黏附、增殖等過程與材料的物理結(jié)構(gòu)以及化學(xué)成分相關(guān)[10-11]。本研究中將細(xì)胞材料復(fù)合體于體外培養(yǎng)分別至1、3 d后,掃描電鏡觀察超微形態(tài),結(jié)果顯示,BMSCs在CPC表面伸展良好,融合度高,CPC支架材料顯示了良好的細(xì)胞生物相容性,對細(xì)胞的黏附伸展無明顯不良反應(yīng),可作為良好的細(xì)胞載體。
本研究將BMSCs制成細(xì)胞懸液(轉(zhuǎn)染有miRNA相關(guān)產(chǎn)品的細(xì)胞/未做轉(zhuǎn)染處理的細(xì)胞),并逐滴滴加到CPC支架材料的內(nèi)在孔隙中,直至CPC支架材料飽和而沒有含細(xì)胞的培養(yǎng)液溢出。待BMSCs在CPC支架材料上發(fā)生黏附之后,可以正常地進(jìn)行細(xì)胞遷移、增殖以及成骨活性的表達(dá)。將細(xì)胞/支架材料復(fù)合物盡快植入到動(dòng)物體內(nèi),以保證充分的營養(yǎng)供應(yīng),同時(shí)細(xì)胞代謝產(chǎn)物可以快速排出,最終誘導(dǎo)新骨形成并建立周圍細(xì)胞間的信號傳導(dǎo)[12]。
異位成骨是指發(fā)生在皮下和肌肉內(nèi)等非骨組織內(nèi)的成骨現(xiàn)象。骨組織工程中運(yùn)用最早、最多的異位成骨動(dòng)物模型是裸鼠模型。裸鼠是一種免疫缺陷型動(dòng)物,因其不含胸腺,可以忽略細(xì)胞來源以及載體材料與宿主之間的免疫排斥反應(yīng),常用于構(gòu)建組織工程化骨模型[13]。
復(fù)合物植入裸鼠體內(nèi)2周后,RT-PCR結(jié)果顯示antagomir-30d組ALP、OC及RUNX2成骨基因mRNA水平的相對表達(dá)量均顯著高于空白對照組及NC組,而空白對照組及NC組兩者之間并無明顯差異。這表明對BMSCs轉(zhuǎn)染無意義鏈不會(huì)造成在體內(nèi)細(xì)胞成骨分化活性及骨形成能力的改變;而當(dāng)轉(zhuǎn)染miR-30d的拮抗劑antagomir-30d后,各成骨基因表達(dá)量的顯著上調(diào)意味著antagomir-30d在體內(nèi)可以促進(jìn)BMSCs的成骨分化,進(jìn)而促進(jìn)裸鼠皮下異位成骨,間接證明miR-30d的骨抑制作用。這與前期研究結(jié)果[14]以及本課題組體外實(shí)驗(yàn)[1]結(jié)果一致。
植入4周后取出植入體行硬組織切片及組織形態(tài)學(xué)觀察,組織學(xué)苦味酸品紅染色結(jié)果顯示空白對照組與NC組未見新骨形成,antagomir-30d組可見微量新骨形成,組織形態(tài)學(xué)計(jì)量新骨形成面積為1.28%±0.19%。之前有研究[15]顯示CPC與BMSCs(接種密度為2×107個(gè)/mL)聯(lián)合培養(yǎng)植入裸鼠皮下4周后,其組織學(xué)染色結(jié)果表明可有少量新骨形成,新骨面積百分比為9.10%±5.75%。本次空白對照組(未做轉(zhuǎn)染處理的BMSCs+CPC)未見新骨形成的實(shí)驗(yàn)結(jié)果與文獻(xiàn)報(bào)道有些許差異,這可能與種子細(xì)胞的使用代數(shù)、生長狀態(tài)、初始接種密度、與CPC支架材料的黏附情況等有關(guān)。
8周植入體硬組織切片及組織形態(tài)學(xué)計(jì)量結(jié)果顯示空白對照組和NC組已有明顯新骨形成,而antagomir-30d組新骨形成與4周時(shí)相比大大增加,新生骨滲透整個(gè)CPC支架材料。空白對照組新骨面積百分比為2.33%±0.52%,NC組新骨面積百分比為1.82%±0.53%,二者無顯著性差異,而antagomir-30d組新骨面積百分比明顯高于空白對照組與NC組,達(dá)到17.79%±1.15%。有文獻(xiàn)報(bào)道相似的體內(nèi)異位成骨實(shí)驗(yàn)[16]表明種子細(xì)胞初始接種濃度為5× 107個(gè)/mL時(shí),8周組織學(xué)檢測BMSCs+CPC的實(shí)驗(yàn)組新骨形成明顯,新骨面積百分比較高,可達(dá)約17%。
綜上所述,本研究構(gòu)建的骨生長調(diào)控因子miRNA+種子細(xì)胞BMSCs+生物支架材料CPC的組織工程骨,應(yīng)用于裸鼠體內(nèi)異位成骨模型取得了較為理想的實(shí)驗(yàn)結(jié)果,在體內(nèi)初步驗(yàn)證了miR-30d對骨形成的負(fù)性調(diào)控作用。該動(dòng)物模型的建立將有利于增加對miRNA成骨調(diào)控機(jī)制的理解,并為miRNA的體內(nèi)應(yīng)用提供理論與實(shí)驗(yàn)指導(dǎo)。
溫州醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào)2023年1期