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    白術乙醇提取物調節(jié)PPAR-γ信號通路促進小膠質細胞攝取及降解Aβ的作用機制研究 Δ

    2023-01-14 07:20:12初雙吳延嬈吳麗敏崔正浩王潘孫意冉謝治深張振強河南中醫(yī)藥大學中醫(yī)藥科學院鄭州450046河南中醫(yī)藥大學第一附屬醫(yī)院藥學部鄭州45005
    中國藥房 2023年1期
    關鍵詞:螢光膠質空白對照

    初雙 ,吳延嬈 ,吳麗敏 ,崔正浩 ,王潘 ,孫意冉 ,謝治深 ,張振強 (.河南中醫(yī)藥大學中醫(yī)藥科學院,鄭州 450046;.河南中醫(yī)藥大學第一附屬醫(yī)院藥學部,鄭州 45005)

    阿爾茨海默?。ˋlzheimer's disease,AD)是以進行性認知功能障礙為主要特征的神經退行性疾病,腦內β淀粉樣蛋白(amyloid β-protein,Aβ)沉積是AD的主要病理學特征[1—2]。有研究表明,小膠質細胞具有吞噬與降解Aβ的功能,可以通過降解Aβ沉積形成的斑塊,發(fā)揮保護神經的作用,從而改善AD[3]。然而,當小膠質細胞出現(xiàn)功能障礙時,則可增加Aβ沉積,加重AD[4]。因此,促進小膠質細胞攝取和降解異常累積的Aβ是改善AD的有效策略之一[5]。過氧化物酶體增殖物激活受體γ(peroxisome proliferator-activated receptor γ,PPAR-γ)屬于核激素受體超家族,可與PPAR反應元件(PPAR response elements,PPREs)結合,形成一種有效的轉錄因子[6]。PPAR-γ激活后會促進下游基因Abcg1、Sra、Cd36、Lxr、Apoe及Abca1的表達,從而增強小膠質細胞對Aβ的攝取及降解[7]。

    中醫(yī)將AD歸屬于“癡呆”范疇,認為癡呆病位在腦,多為本虛標實之證,以臟腑精氣虧虛、腦失所養(yǎng)為本,痰氣交阻為標。脾主運化,脾失健運則氣血虧虛,腦髓失養(yǎng)而生癡呆;脾喜燥惡濕,脾氣虧虛則運化水液失常,水濕停聚內生痰濕,痰蒙清竅亦生癡呆。脾虛痰濕是早期AD發(fā)生發(fā)展的病機之一,故健脾化痰為治療AD的有效方法之一[8]。中藥白術為菊科蒼術屬植物白術Atractylodes macrocephalaKoidz.的干燥根莖,被譽為“脾臟補氣健脾”第一要藥。本課題組前期研究發(fā)現(xiàn),白術乙醇提取物(ethanol extract fromAtractylodes macrocephala,EEAM)可延緩AD模型秀麗隱桿線蟲CL4176的癱瘓時間,調節(jié)溶酶體自噬,降解淀粉樣蛋白前體蛋白,從而改善AD[9—11]。但是白術乙醇提取物是否可通過PPAR-γ信號通路促進小膠質細胞對Aβ的攝取及降解,尚不明確?;诖耍狙芯恳孕∈笮∧z質細胞BV2為研究對象,從PPAR-γ信號通路出發(fā),探討EEAM促進小膠質細胞對Aβ攝取及降解的作用機制,以期為EEAM治療AD的臨床應用提供實驗依據(jù)。

    1 材料

    1.1 主要儀器

    本研究所用主要儀器有Airtech型超凈臺(蘇州安泰空氣技術有限公司),F(xiàn)orma Series Ⅱ Water Jacket型二氧化碳細胞培養(yǎng)箱、Multiskan GO型全波長酶標儀(美國Thermo Fisher Scientific公司),Axiocam 506 Color型顯微鏡、LSM700型共聚焦熒光顯微鏡(德國Carl Zeiss公司),F(xiàn)LUOstar OPTIMA型多功能酶標儀(德國BMG Labtech公司),Roche LightCycler 96型實時熒光定量聚合酶鏈反應(PCR)儀(美國ABI公司)。

    1.2 主要藥品與試劑

    白術飲片購自安徽亳州藥材市場,經河南中醫(yī)藥大學藥學院付鈺副教授鑒定為菊科植物白術A.macrocephalaKoidz.的干燥根莖。pCMX-Gal-mPPAR-γ及PPRE-J3-TK-Luc質粒由本實驗室構建。兔源PPAR-γ多克隆抗體(批號00105869)購自武漢三鷹生物技術有限公司;山羊抗兔免疫球蛋白G二抗(批號GR3401492-2)購自美國Abcam公司;Aβ1-42、FEEAM-Aβ(批號分別為CPC221027110、T2P1000485)均購自蘇州強耀生物科技有限公司;Hoechst 33342、MEM基礎培養(yǎng)基、DMEM基礎培養(yǎng)基、TriQuick Reagent總RNA提取試劑(批號分別為20190412、20200716、10013031、229009)均購自北京索萊寶科技有限公司;胎牛血清(批號12A089)購自上海依科賽生物制品有限公司;PolyJet轉染試劑(批號61758)購自深圳恩科生物科技有限公司;逆轉錄試劑盒(批號103118190503)購自上海碧云天生物技術有限公司;羅格列酮(批號C10534101,純度98%)購自阿拉丁試劑(上海)有限公司;螢光素酶報告基因檢測試劑盒(批號0000312919)購自美國Promega公司。

    1.3 細胞

    小鼠神經小膠質細胞BV2購自武漢普諾賽生命科技有限公司;人胚胎腎細胞HEK293購自中國科學院細胞庫。

    2 方法

    2.1 EEAM的制備

    參考本課題組前期制備方法[12]操作:稱取白術飲片2 kg,共加入95%乙醇4 L分別浸漬3次,每次1周;合并濾液,減壓濃縮得到EEAM浸膏359 g,得率為17.95%(以生藥量計),置于4 ℃下保存,備用。

    2.2 細胞培養(yǎng)

    將BV2細胞以含有10%胎牛血清、1%青-鏈霉素混合液的MEM完全培養(yǎng)基培養(yǎng),置于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),待細胞密度達到80%左右時,進行后續(xù)實驗。將HEK293細胞以含有10%胎牛血清、1%青-鏈霉素混合液的DMEM完全培養(yǎng)基培養(yǎng),然后同上述條件培養(yǎng)后進行后續(xù)實驗。

    2.3 EEAM對BV2細胞活力的影響

    采用MTT法對細胞活力進行測定。取對數(shù)生長期的BV2細胞接種于96孔板中,培養(yǎng)24 h后,將細胞分為空白對照組和EEAM低、中、高劑量組(0.3、0.4、0.5 mg/mL,劑量參考前期預實驗設置),每組設置6個復孔。各孔加入相應含藥培養(yǎng)基培養(yǎng)24 h后,避光加入5 mg/mL MTT溶液20 μL,繼續(xù)培養(yǎng)4 h;棄去培養(yǎng)基,每孔加入二甲基亞砜150 μL,搖床振搖10 min,采用酶標儀在490 nm處測定各孔光密度(optical density,OD)值,并計算細胞存活率(細胞存活率=給藥組OD值/空白對照組OD值×100%)。

    2.4 EEAM對BV2細胞攝取及降解Aβ的影響

    采用共聚焦皿平行鋪BV2細胞,分為攝取組及降解組,2組細胞再分別設置空白對照組、陽性對照組(1 μmo/L羅格列酮,劑量參考文獻[13]及預實驗結果設置,下同)和EEAM低、中、高劑量組(0.3、0.4、0.5 mg/mL),每組設置3個復孔。培養(yǎng)過夜后,次日分別給予相應藥物處理24 h,每皿加入500 nmol/L FAM-Aβ(帶有紅色熒光標記的Aβ)避光染色4 h;染色結束后,攝取組細胞用Hoechst 33342對細胞核進行染色,經磷酸鹽緩沖液(PBS)清洗后在激光共聚焦熒光顯微鏡下拍照,觀察BV2細胞對Aβ的攝取作用。降解組細胞以500 nmol/L FAM-Aβ避光染色4 h后,更換為MEM完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)6 h,用Hoechst 33342和溶酶體綠色熒光探針分別對細胞核及溶酶體進行染色,經PBS清洗后在激光共聚焦熒光顯微鏡下觀察BV2細胞對Aβ的降解作用。

    2.5 EEAM對HEK293細胞中PPAR-γ螢光素酶轉錄活性的影響

    螢光素酶報告基因是轉錄活性測定的常用工具之一,螢光素酶催化底物產生化學發(fā)光,螢光素酶表達量越高,化學發(fā)光度越強,從而表明目的基因轉錄活性越強[14]。HEK293細胞是人胚胎腎細胞的細胞系,該細胞具有高度的可轉染性,常用作報告基因檢測的工具細胞[15]?;诖?,筆者參考相關文獻[16],采用HEK293細胞探討EEAM對PPAR-γ轉錄活性的影響。取對數(shù)生長的HEK293細胞接種于96孔板中,待細胞密度達到80%左右時,用PolyJet轉染試劑進行轉染;每孔轉染pCMXGal-mPPAR-γ、PPRE-J3-TK-Luc質粒各100 ng,并于轉染6 h后更換為DMEM完全培養(yǎng)基。次日,將轉染后的細胞分為空白對照組、陽性對照組(1 μmol/L羅格列酮)和EEAM低、中、高劑量組(0.3、0.4、0.5 mg/mL),每組設置6個復孔。分別給予相應藥物培養(yǎng)24 h后,采用多功能酶標儀檢測各孔螢光素酶活性。此外,取對數(shù)生長的HEK293細胞按上述方法接種、轉染后,給予高劑量(0.5 mg/mL)EEAM處理后,分別培養(yǎng)6、12、18、24 h時,同上述方法檢測螢光素酶活性。

    2.6 EEAM對BV2細胞中PPAR-γ核移位的影響

    采用免疫熒光法進行實驗。將BV2細胞接種于提前加入細胞爬片的24孔板中,按照“2.4”項下方法分組、培養(yǎng),每組設3個復孔。24 h后加入4%多聚甲醛固定細胞1~2 h,經PBS清洗后,用0.3% Triton-X室溫孵育30 min,以山羊血清封閉2 h,經PBS清洗后,于4 ℃條件下以PPAR-γ一抗(稀釋度為1∶200)孵育過夜,次日加入二抗(稀釋比例為1∶300)室溫避光孵育2 h;加入Hoechst 33342染色30 min,經PBS清洗后,取出爬片,采用顯微鏡觀察熒光情況,并用Image J軟件分析各組細胞中PPAR-γ蛋白的熒光強度及核移位情況。細胞中PPAR-γ蛋白熒光強度增強,則表明PPAR-γ表達水平升高;另外,當在細胞核中檢測到PPAR-γ,也表明其被激活[17]。

    2.7 EEAM對BV2細胞中PPAR-γ下游靶基因表達的影響

    采用qPCR進行實驗。取對數(shù)生長期的BV2細胞接種于6孔板中,培養(yǎng)24 h后,將細胞分為空白對照組、AD模型組和EEAM低、中、高劑量組(0.3、0.4、0.5 mg/mL),每組設置3個復孔。加入相應藥物(空白對照組和模型組加入培養(yǎng)基),除空白對照組外,其余組也加入Aβ1-42(終濃度為5 μmol/L)。培養(yǎng)24 h后,用Trizol法提取細胞總RNA,測定其純度及濃度后,按照逆轉錄試劑盒方法進行逆轉錄得到cDNA。以cDNA為模板進行PCR,以β-actin為內參,采用2-ΔΔCt法計算目的基因的表達水平。PCR引物序列及擴增產物長度見表1。

    表1 PCR引物序列及擴增產物長度

    2.8 統(tǒng)計學方法

    所有數(shù)據(jù)采用GraphPad Prism 6.0軟件進行統(tǒng)計分析,計量資料均以±s表示。多組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用Student'st檢驗。檢驗水準α=0.05。

    3 結果

    3.1 EEAM對BV2細胞活力的影響結果

    EEAM低、中、高劑量組細胞存活率[分別為(103.76±7.58)%、(111.27±6.05)%、(109.54±7.32)%]與空白對照組[(100.00±10.03)%]比較,差異均無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。

    3.2 EEAM對BV2細胞攝取和降解Aβ的影響結果

    Aβ攝取實驗結果顯示,與空白對照組比較,陽性對照組和EEAM中、高劑量組BV2細胞中Aβ熒光強度均顯著升高(P<0.05)。Aβ降解實驗結果顯示,與空白對照組比較,陽性對照組和EEAM中、高劑量組BV2細胞中Aβ熒光強度均顯著降低(P<0.05),陽性對照組及EEAM高劑量組BV2細胞中溶酶體熒光強度顯著升高(P<0.05)。結果見圖1、圖2、表2。

    表2 各組BV2細胞中Aβ攝取和降解熒光強度以及溶酶體熒光強度的檢測結果(±s,n=3)

    表2 各組BV2細胞中Aβ攝取和降解熒光強度以及溶酶體熒光強度的檢測結果(±s,n=3)

    a:與空白對照組比較,P<0.05

    組別空白對照組陽性對照組EEAM低劑量組EEAM中劑量組EEAM高劑量組溶酶體熒光強度1.00±0.17 2.10±0.18a 1.08±0.15 1.35±0.18 2.23±0.11a Aβ攝取熒光強度1.00±0.03 1.46±0.27a 1.00±0.02 1.07±0.01a 1.65±0.06a Aβ降解熒光強度1.00±0.06 0.68±0.17a 1.04±0.05 0.96±0.04a 0.72±0.06a

    圖1 各組BV2細胞攝取Aβ的熒光顯微圖

    圖2 各組BV2細胞降解Aβ的熒光顯微圖

    3.3 EEAM對HEK293細胞中PPAR-γ螢光素酶轉錄活性的影響

    與空白對照組(1.00±0.11)比較,陽性對照組(1.73±0.15)和EEAM各劑量組(分別為1.65±0.21、1.65±0.14、1.77±0.19)HEK293細胞中PPAR-γ螢光素酶轉錄活性顯著升高(P<0.05)。另外,以高劑量EEAM培養(yǎng)6、12、18、24 h后,HEK293細胞中PPAR-γ螢光素酶轉錄活性(分別為1.31±0.22、1.44±0.86、1.51±0.16、1.95±0.28)均顯著升高(P<0.05),且處理24 h后的轉錄活性最強。

    3.4 EEAM對BV2細胞中PPAR-γ核移位的影響結果

    與空白對照組比較,陽性對照組和EEAM各劑量組BV2細胞中和細胞核中PPAR-γ蛋白的熒光強度(低劑量組除外)均顯著升高(P<0.05),結果見表3、圖3。

    圖3 各組BV2細胞中PPAR-γ核移位的熒光顯微圖

    表3 各組BV2細胞中和細胞核中PPAR-γ蛋白熒光強度的測定結果(±s,n=3)

    表3 各組BV2細胞中和細胞核中PPAR-γ蛋白熒光強度的測定結果(±s,n=3)

    a:與空白對照組比較,P<0.05

    組別空白對照組陽性對照組EEAM低劑量組EEAM中劑量組EEAM高劑量組細胞核中PPAR-γ 1.00±0.05 1.30±0.06a 1.08±0.06 1.21±0.09a 1.41±0.14a細胞中PPAR-γ 1.00±0.04 1.42±0.05a 1.22±0.12a 1.38±0.01a 1.41±0.05a

    3.5 EEAM對PPAR-γ下游靶基因mRNA表達的影響結果

    與空白對照組比較,AD模型組BV2細胞中LxramRNA的表達水平顯著降低(P<0.05),其余基因mRNA的表達水平差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。與AD模型組比較,各給藥組BV2細胞中Lxra、Lxrb、Abca1、Abcg1、Cd36、Sra、ApoemRNA的表達水平均顯著升高(P<0.05)。結果見表4。

    表4 各組BV2細胞中PPAR-γ下游靶基因mRNA的測定結果(±s,n=3)

    表4 各組BV2細胞中PPAR-γ下游靶基因mRNA的測定結果(±s,n=3)

    a:與空白對照組比較,P<0.05;b:與模型組比較,P<0.05

    組別空白對照組AD模型組陽性對照組EEAM低劑量組EEAM中劑量組EEAM高劑量組Apoe mRNA 1.00±0.10 0.75±0.03 1.43±0.07b 2.23±0.22b 1.87±0.02b 2.08±0.04b Lxra mRNA 1.00±0.06 0.59±0.04a 1.45±0.10b 1.28±0.14b 1.27±0.07b 1.55±0.23b Lxrb mRNA 1.00±0.13 1.14±0.07 1.77±0.95b 2.71±0.30b 3.52±0.41b 7.44±0.34b Abca1 mRNA 1.00±0.66 1.25±0.76 6.10±0.33b 3.54±0.30b 14.60±0.73b 26.10±0.18b Abcg1 mRNA 1.00±0.22 0.99±0.10 1.28±0.06b 3.91±0.12b 3.79±0.76b 13.20±0.84b Cd36 mRNA 1.00±0.06 0.77±0.01 1.20±0.44b 3.90±0.08b 4.27±0.49b 7.71±0.53b Sra mRNA 1.00±0.09 0.98±0.04 1.70±0.08b 1.79±0.11b 2.09±0.11b 3.01±0.11b

    4 討論

    隨著全球社會老齡化的加劇,AD發(fā)病率也逐年升高。在AD病理中,Aβ的生成與清除失衡是造成腦內斑塊沉積的主要原因之一。白術為補氣健脾第一要藥,具有神經保護等多種藥理作用[18],本課題組前期研究發(fā)現(xiàn),其對AD具有改善作用[11],但具體作用機制不明。Aβ沉積是AD的主要病理學特征[1]。有研究表明,小膠質細胞具有攝取與降解Aβ的功能[3]?;诖?,本研究以BV2細胞為研究對象,探討EEAM對Aβ攝取及降解的作用機制。Aβ攝取實驗結果顯示,經EEAM干預后,BV2細胞中Aβ熒光強度升高。Aβ降解實驗結果顯示,經EEAM干預后,BV2細胞中Aβ熒光強度降低,且溶酶體熒光強度升高。這提示EEAM可通過促進BV2細胞對Aβ的吞噬和降解作用改善AD,且在促進Aβ降解的同時也增強了溶酶體活性。

    PPAR-γ是依賴配體激活的轉錄因子,在Aβ穩(wěn)態(tài)、炎癥和能量代謝的各種基因調節(jié)中發(fā)揮重要作用[17]。PPAR-γ激動劑可以減輕或逆轉AD動物模型中Aβ負荷、炎癥及疾病相關行為障礙[19]。報告基因是識別及表征功能的有力工具,在研究基因表達及轉錄因子等方面具有重要作用[14],故本研究采用螢光素酶報告基因系統(tǒng)探究EEAM對PPAR-γ通路的作用。本研究結果顯示,經EEAM干預后,HEK293細胞中PPAR-γ螢光素酶轉錄活性升高。這提示,EEAM可提高PPAR-γ轉錄活性。PPAR-γ作為轉錄因子,只有進入細胞核才能發(fā)揮作用,因此核移位也是PPAR-γ激活的標志[17]。進一步研究結果顯示,經EEAM干預后,BV2細胞核中PPAR-γ的熒光強度也有所升高。這提示EEAM可通過促進PPAR-γ的核移位改善AD。

    Abcg1、Cd36、Sra、Lxr、Apoe及Abca1均為PPAR-γ的下游靶基因,Abcg1基因編碼的蛋白質是atp結合盒(ABC)轉運蛋白家族成員,可通過消除大腦中的有毒肽維持正常的腦內穩(wěn)態(tài)[20];Cd36是B類清零受體,在腦中小膠質細胞進行表達,可介導小膠質細胞對Aβ的吞噬作用[21];Sra是一種多功能受體,具有吞噬作用,研究表明在Sra基因敲除小鼠中,Aβ含量與正常小鼠相比有明顯升高[22]。這說明Cd36、Sra基因對Aβ的攝取作用具有重要意義。Lxr基因屬于核受體超家族,包括Lxra和Lxrb兩種亞型,其可激活Apoe和Abca1,進而促進小膠質細胞對 Aβ 的清除作用[23—25]。這說明Lxra、Lxrb、Apoe、Abca1基因對Aβ的降解作用具有重要意義。本研究結果表明,經EEAM處理后,BV2細胞中Abcg1、Cd36、Sra、Lxr、Apoe、Abca1mRNA的表達水平均升高。這表明EEAM可通過上調PPAR-γ下游靶基因改善AD。

    綜上所述,EEAM可通過激活PPAR-γ信號通路,促進小膠質細胞對Aβ的攝取與降解作用,進而改善AD。由于體內與體外環(huán)境存在差異,后續(xù)本課題組將進一步開展動物體內實驗對上述結論進行驗證。

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