4種水生植物修復(fù)對(duì)鹽堿土壤理化性質(zhì)、酶活性和微生物群落組成的影響

沈 昀， 韓 冷， 曹佳倩， 徐康偉

(1.江蘇農(nóng)牧科技職業(yè)學(xué)院，江蘇泰州 225300； 2.金陵科技學(xué)院，江蘇南京 211169)

鹽堿化引起的土壤退化是制約農(nóng)業(yè)生產(chǎn)的主要因素之一。土壤鹽漬化可在細(xì)胞、組織和分子水平上影響植物的生長(zhǎng)代謝，造成植物生長(zhǎng)早期的滲透脅迫和生育后期的離子脅迫[1]，最終導(dǎo)致作物減產(chǎn)，從而成為危及全球糧食安全的重要問(wèn)題。目前全球約有8×1010hm2面積的土壤受到中度鹽漬化影響，隨著人類(lèi)活動(dòng)發(fā)展，鹽漬化土地面積仍在不斷擴(kuò)大[2]。因此，合理開(kāi)發(fā)利用鹽堿地已成為農(nóng)業(yè)可持續(xù)化發(fā)展過(guò)程中亟待解決的問(wèn)題。目前，采用物理、化學(xué)等多種技術(shù)單一或組合策略對(duì)鹽堿地進(jìn)行改良，并取得了較佳效果[3]。但運(yùn)用條件限制、高經(jīng)濟(jì)成本及不良副作用等，使得相關(guān)技術(shù)無(wú)法普及。植物修復(fù)是通過(guò)種植鹽生植物以改善鹽堿地的一種經(jīng)濟(jì)、環(huán)境友好型的方法[4]。目前許多鹽生植物已被運(yùn)用于鹽堿地改良，且已馴化出功能性非鹽生植物以適應(yīng)鹽堿地種植。研究表明，植物修復(fù)可有效改變土壤鹽分的分布，改善土壤導(dǎo)水率、容重、孔隙度及結(jié)構(gòu)穩(wěn)定性，從而影響土壤性質(zhì)[5]。

微生物、植物和土壤之間存在復(fù)雜的相互作用，植物根際是微生物與植物相互作用的特殊區(qū)域，該區(qū)域直接受根系分泌物和殘?bào)w的影響。根際土壤微生物尤其是促進(jìn)植物生長(zhǎng)的根際細(xì)菌，在植物生長(zhǎng)和抗逆性中發(fā)揮著重要作用[6]。植物在生長(zhǎng)過(guò)程中主動(dòng)向根際釋放大量生物活性物質(zhì)、糖類(lèi)和氨基酸等分泌物，招募大量微生物在根際定殖，從而影響根際微生物的群落結(jié)構(gòu)。不同植物類(lèi)型或品種分泌物的成分物質(zhì)不同，對(duì)土壤微生物群落組成的影響也不盡相同[7]。根際微生物的群落結(jié)構(gòu)還受土壤理化特性、營(yíng)養(yǎng)狀況、水分等影響，鹽堿地的土壤鹽分和pH值高于非鹽堿地，因此土壤鹽分對(duì)土壤微生物群落的活性、多樣性和結(jié)構(gòu)都有明顯影響[7]。

對(duì)功能性植物的挖掘與探索工作是開(kāi)展相關(guān)研究的重要基礎(chǔ)。目前許多研究積極探索了改良鹽堿土的相關(guān)功能植物，以堿蓬[8]、草木樨[9]、蜀葵[10]等旱作植物為代表，在鹽堿地改良中表現(xiàn)出一定的效果。水生植物是指在水中或含水率較高的環(huán)境中生存的植物統(tǒng)稱(chēng)，一般具有較高的初級(jí)生產(chǎn)力和代謝能力[11]。有研究表明，水生植物在水體、沼澤濕地、重金屬和養(yǎng)分富集及鹽堿脅迫等水分適中的環(huán)境中具有良好的功能修復(fù)作用[12]。Abro等研究表明，在鈣質(zhì)高鹽土中種植水生植物蘆葦，可有效吸收Cl-和Na+，加速鹽堿地復(fù)墾[13]。在鹽堿地中連續(xù)2年種植含有蘆竹的組合性植物，土壤電導(dǎo)率、陽(yáng)離子交換量及熱容量提高，植株Na+含量較對(duì)照增加近5倍，表明蘆竹可有效促進(jìn)土壤鹽分析出并吸收累積[14]。劉曉靜等發(fā)現(xiàn)，在鹽堿地中，蘆葦、三菱草(Pinelliaternata)、香蒲等是主要的先鋒植物[11]。然而，目前鹽堿地植物修復(fù)的研究主要集中在旱作鹽生植物的功能形式及修復(fù)潛力方面，對(duì)鹽生植物根際土壤微生物群落的組成及相關(guān)功能差異很少涉及。因此，本研究探索了蘆葦、蒲菜(又稱(chēng)香蒲)、紙莎草、蘆竹這4種水生植物對(duì)鹽堿土壤理化性質(zhì)、酶活性及相關(guān)微生物群落組成的影響，以期為研究植物修復(fù)相關(guān)生物學(xué)機(jī)制提供理論支持。

1 材料與方法

1.1 試驗(yàn)地點(diǎn)與材料

試驗(yàn)于2021年5—8月在江蘇農(nóng)牧科技職業(yè)學(xué)院植物培養(yǎng)室中進(jìn)行?？諝庀鄬?duì)濕度為75%，溫度為18～28 ℃。4種水生植物分別為蘆葦[Phragmitesaustralis(Cav.) Trin. ex Steu]、蒲菜(TyphaorientalisPresl)、紙莎草(Cyperuspapyrus)、蘆竹(ArundodonaxL.)，皆來(lái)自江蘇省沐陽(yáng)縣九洲苗木場(chǎng)。

供試土壤取自江蘇省鹽城市大豐區(qū)郊外，該地區(qū)是江蘇省鹽堿面積最大且鹽堿程度最嚴(yán)重的區(qū)域。去除土壤表面的枯枝、雜草、石礫，鏟取0～30 cm 表層土壤。將土壤自然風(fēng)干，混勻過(guò)4 mm網(wǎng)篩備用。供試土壤類(lèi)型為水稻土，其pH值為8.20，自然含水量為81.1%，有機(jī)質(zhì)含量為0.48%，全氮含量為0.66%，土壤鹽分含量為0.93%。

1.2 試驗(yàn)設(shè)計(jì)

試驗(yàn)采用完全隨機(jī)設(shè)計(jì)，原土培養(yǎng)，設(shè)置5個(gè)處理：CK，不種植物；LL，種植蘆葦；XP，種植蒲菜；LZ，種植蘆竹；ZSC，種植紙莎草。每個(gè)處理重復(fù)3次，共15桶試驗(yàn)植株。

盆栽器具采用塑料圓桶，裝土10 kg/盆，將各處理的3株小植株移入桶中，保持土壤自然持水量(81.1%)。為保證早期幼苗的存活，加入100 mL全量植物營(yíng)養(yǎng)液[15]。其間按照大棚內(nèi)的溫度與蒸發(fā)水平，不定時(shí)適量加入水分。試驗(yàn)培育145 d。

1.3 樣品采集及測(cè)定分析

1.3.1 土壤樣品采集 培養(yǎng)結(jié)束后，剪去植株地上部，去除0～1 cm表層土壤。采用環(huán)刀截取土壤，分析土壤容重(BD)與孔隙率(TPOR)。將培養(yǎng)器具剖開(kāi)，去除距離根系較遠(yuǎn)的外圍土壤，小心抖動(dòng)根系表面土壤，無(wú)法抖落的土壤采用干凈刷子輕輕刷落。將各處理的土壤混合后分為3個(gè)部分：一部分保存于-20 ℃下，用于土壤Illumina Hiseq分析；一部分保存于-4 ℃下，用于土壤酶活分析；最后一部分采用自然風(fēng)干研磨過(guò)篩，用于土壤性質(zhì)分析。

1.3.2 土壤理化性質(zhì)測(cè)定 土壤指標(biāo)的測(cè)定按照鮑士旦的方法[16]進(jìn)行。土壤pH值測(cè)定采用pH計(jì)進(jìn)行(水 ∶土=2.5 ∶1)。土壤總鹽度(TS)采用電導(dǎo)法測(cè)定。土壤有機(jī)質(zhì)含量(OM)采用K2Cr2O7氧化還原滴定法測(cè)定。總氮含量(TN)采用半微量開(kāi)氏定氮法測(cè)定。堿解氮含量(AN)采用堿解擴(kuò)散法測(cè)定。全磷(TP)、全鉀(TK)含量使用NaOH熔融后分別采用火焰光度法、鉬銻抗比色法測(cè)定。有效磷含量(AP)采用0.5 mol/L NaHCO3浸提分光光度法測(cè)定。土壤容重(BD)和總孔隙率(TPOR)均采用環(huán)刀法測(cè)定。

1.3.3 土壤酶活性及微生物數(shù)量測(cè)定 土壤酶活性包括亞硝酸還原酶(Nir)、脲酶(Ure)、纖維素酶(Cel)、木質(zhì)素過(guò)氧化物酶(Lip)活性，分別采用杭州銳創(chuàng)生物技術(shù)有限公司生產(chǎn)的試劑盒G0310F、G0301F、G0308F、G0331F測(cè)定。

1.3.4 根際微生物群落Illumina Hiseq測(cè)序分析

1.3.4.1 土壤基因組DNA的提取、純化及Illumina-Mi Seq測(cè)序 采用DNA提取試劑盒(Omega Bio-tek，Norcross，GA，US)對(duì)土壤進(jìn)行基因組DNA的提取。通過(guò)在0.7%瓊脂糖凝膠上電泳并使用Nanodrop 2000分光光度計(jì)(thermo fisher scientific，Wilmington，DE)評(píng)估DNA濃度和質(zhì)量。細(xì)菌擴(kuò)增引物采用細(xì)菌16S rRNA V3～V4區(qū)間：338F(5′-ACTCCTACGGGAGGCAGCAG-3′)，806R(5′-G G A C T A C H V G G G T W T C T A A T-3′)。以土壤基因組DNA為模板，通過(guò)2輪PCR擴(kuò)增法，具體反應(yīng)條件及步驟參考Li等的研究[17]。2輪擴(kuò)增結(jié)束后采用2%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)PCR擴(kuò)增數(shù)量與質(zhì)量，采用QIAquick Gel Extraction試劑盒(QIAGEN，Crawley，UK)純化。

1.3.4.2 DNA純化及Illumina-Mi Seq測(cè)序 對(duì)于PCR產(chǎn)物文庫(kù)和正常擴(kuò)增片段在400 bp以上的PCR產(chǎn)物，選用0.6倍磁珠(VAHTS TM DNA Clean Beads)處理。使用 TruSeq? DNA PCR-Free Sample Preparation Kit (Illumina，USA)生成測(cè)序文庫(kù)，采用Illumina NovaSeq PE2500對(duì)基因文庫(kù)進(jìn)行高通量測(cè)序。

1.3.4.3 Illumina-Mi Seq測(cè)序數(shù)據(jù)的處理 采用FASTP系統(tǒng)雙端讀數(shù)片段化和引物序列并去除低質(zhì)量序列(信噪比>20)，以FASTQ文件格式儲(chǔ)存，采用FLASH對(duì)有效數(shù)據(jù)進(jìn)行拼接。借助SSUrRNA數(shù)據(jù)庫(kù)(http：//www.arb-silva.de/)基于Mothur算法對(duì)相關(guān)代表性序列進(jìn)行注釋分類(lèi)信息，使用MUSCLE(Version 3.8.31，http：//www.drive5.com/muscle/)對(duì)相似度為97%的操作分類(lèi)單位(OTU)信息進(jìn)行歸一化，利用RDP對(duì)細(xì)菌Silva數(shù)據(jù)庫(kù)(SSU132)比對(duì)進(jìn)行物種分類(lèi)注釋?zhuān)垣@取每條序列從門(mén)到屬的分類(lèi)信息[18]。利用Mothur軟件統(tǒng)計(jì)每個(gè)生物樣本的Chao1、Shannon多樣性指數(shù)[19]。借助R語(yǔ)言計(jì)算并繪制未加權(quán)unifrac距離的非度量多維縮放(NMDS)的多元統(tǒng)計(jì)。利用高通量測(cè)序數(shù)據(jù)與土壤理化因子進(jìn)行冗余分析(RDA)。以上分析委托杭州銳創(chuàng)生物技術(shù)有限公司完成。

1.4 數(shù)據(jù)處理與統(tǒng)計(jì)分析

采用Microsoft Excel 2016進(jìn)行數(shù)據(jù)整理，采用SPSS 19.0軟件進(jìn)行單因素方差分析(ANOVA)，采用鄧肯氏多重比較進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析(α=0.05)，采用R語(yǔ)言、Origin 8.5進(jìn)行圖形繪制。

2 結(jié)果與分析

2.1 4種水生植物修復(fù)對(duì)鹽堿土壤理化性質(zhì)的影響

由表1可知，4種水生植物修復(fù)處理對(duì)鹽堿土壤理化性質(zhì)的影響差異顯著(P<0.05)。與對(duì)照(CK)相比，水生植物處理顯著降低了土壤的pH值、TS、BD，最小值分別出現(xiàn)在LL、LL、LZ處理，與CK相比，三者在上述3個(gè)指標(biāo)中分別顯著降低7.32%、20.69%、19.08%。而在植物修復(fù)處理中OM、TN、TP、TK、AN、AP含量、TPOR均顯著增加，其最大值集中在LL處理或LZ處理。結(jié)果表明，水生植物修復(fù)處理對(duì)土壤理化性質(zhì)有顯著影響，初步揭示蘆葦(LL)、蘆竹(LZ)處理可作為改善鹽堿地土壤性質(zhì)的有效措施。

表1 4種水生植物修復(fù)對(duì)鹽堿土壤理化性質(zhì)的影響

2.2 4種水生植物修復(fù)對(duì)鹽堿土壤酶活性的影響

由表2可知，亞硝酸還原酶(Nir)活性中，植物修復(fù)處理比CK高23.71～36.14倍，而XP、LZ、ZSC處理較LL處理分別低13.46%、33.46%、16.92%(P<0.05)。在脲酶(Ure)活性中，LL、XP處理顯著高于LZ、ZSC處理，且所有植物修復(fù)處理皆比CK顯著低36.86%～72.17%。纖維素酶(Cel)活性中，以LZ處理最低，與CK無(wú)顯著差異，兩者皆顯著低于其他植物修復(fù)處理，且以XP處理最大，為 10.43 mg/(d·g)。在木質(zhì)素過(guò)氧化物酶(Lip)活性中，各處理數(shù)值表現(xiàn)為L(zhǎng)Z

表2 4種水生植物修復(fù)對(duì)鹽堿土壤酶活性的影響

2.3 4種水生植物修復(fù)對(duì)微生物群落多樣性與豐富度的影響

Shannon指數(shù)、Chao1指數(shù)分別是反映微生物群落多樣性、豐富度的重要表征。由圖1可知，在4種水生植物修復(fù)處理與對(duì)照的Shannon指數(shù)中，各處理表現(xiàn)為CK

2.4 4種水生植物修復(fù)對(duì)微生物群落組成的影響

細(xì)菌基因序列隸屬于34門(mén)599屬。圖2-A顯示了所有土壤樣品中豐度較高的前10位優(yōu)勢(shì)門(mén)，其中以變形菌門(mén)(Proteobacteria)相對(duì)豐度最高，為31.67%～39.18%；其次是浮霉菌門(mén)(Planctomycetes)、酸桿菌門(mén)(Acidobacteria)、放線菌門(mén)(Actinobacteria)、芽單胞菌門(mén)(Gematimonadetes)、擬桿菌門(mén)(Bacteroidetes)、綠彎菌門(mén)(Chloroflexi)、疣微菌門(mén)(Verrucomicrobia)、硝化螺旋菌門(mén)(Patescibacteria)、厚壁菌門(mén)(Firmicutes)，分別占總豐度的15.77%～25.02%、11.13%～15.51%、5.86%～11.16%、4.83%～7.34%、4.03%～5.56%、3.57%～4.52%、1.59%～3.69%、1.04%～1.86%、0.56%～1.64%。5個(gè)處理的酸桿菌門(mén)和放線菌門(mén)間的相對(duì)豐度存在顯著差異。LL、XP、ZSC處理顯著增加了酸桿菌門(mén)的相對(duì)豐度，并且在LZ處理中觀察到下降；而放線菌門(mén)(Actinobacteria)的相對(duì)豐度在XP、LZ、ZSC處理中顯著增加，在LL處理中下降。此外，與CK相比，所有植物修復(fù)處理都增加了綠彎菌門(mén)(Chloroflexi)的相對(duì)豐度。由圖 2-B 可知，在屬水平上，所有土壤樣品中排名前10位的依次為鞘氨醇單胞菌屬(Sphingomonas)、小梨形菌屬(Pirellula)、假單胞菌屬(Pseudomonas)、溶桿菌屬(Lysobacter)、Pir4_lineage、出芽菌屬(Gemmata)、鏈霉菌屬(Streptomyces)、寡養(yǎng)單胞菌屬(Stenotrophobacter)、Subgroup_10、SH-PL14，不同處理中該10屬豐度總和為17.86%～22.23%，且不同處理間前10屬總豐度無(wú)顯著差異。與CK相比，所有植物處理均增加了小梨形菌屬(Pirellula)、SH-PL14、寡養(yǎng)單胞菌屬(Stenotrophobacter)的相對(duì)豐度，而降低了假單胞菌屬(Pseudomonas)的相對(duì)豐度。

2.5 非度量多維尺度和冗余分析

基于unifrac距離的非度量多維尺度分析(NMDS)結(jié)果(圖3-A)表明，ZSC處理與其他處理無(wú)明顯交集而獨(dú)立于上半軸，LL、XP處理獨(dú)立于右下軸，而LZ處理間unifrac距離較遠(yuǎn)，表明該處理微生物群落結(jié)構(gòu)變異較大，此時(shí)與CK存在交集?？傮w而言，基于16S rRNA基因的所有水生植物修復(fù)處理之間存在明顯分離(R=0.909 6、P=0.001)，而LZ處理與CK無(wú)明顯分離。

冗余分析(RDA)可用于分析環(huán)境因子與相關(guān)微生物群落間的相關(guān)性，箭頭所處的象限表示環(huán)境因子與排序軸間的正負(fù)相關(guān)性。箭頭與原點(diǎn)的連線長(zhǎng)度代表該環(huán)境因子與群落分布間的相關(guān)程度，連線越長(zhǎng)，說(shuō)明有相關(guān)性越大，反之越小。箭頭連線和排序軸的夾角代表某個(gè)環(huán)境因子與排序軸的相關(guān)程度，夾角越小，相關(guān)性越大，反之越小。細(xì)菌群落分析結(jié)果(圖3-B)表明，RDA的前2個(gè)軸分別解釋了總變異的23.7%和14.9%。就CK和ZSC處理而言，TS、pH值、BD與兩者均顯著相關(guān)，其中其TS關(guān)系最為密切。就LZ處理而言，OM、TK與其明顯相關(guān)，其中TK與其呈極顯著相關(guān)。就XP和LL處理而言，AN、Nir、Lip與其在0.05、0.01、0.001水平存在相關(guān)性。

3 討論與結(jié)論

種植鹽生植物或耐鹽植物進(jìn)行植物修復(fù)是利用鹽堿地的重要手段[5，20]?，F(xiàn)有的研究表明，植物修復(fù)不僅可以有效改變土壤中鹽分的分布，還可改變土壤性質(zhì)，改善土壤質(zhì)量，優(yōu)化土地利用和促進(jìn)植物生長(zhǎng)[21]。植物和土壤微生物之間的相互作用在該修復(fù)過(guò)程中起關(guān)鍵作用，微生物可以促進(jìn)植物生長(zhǎng)并增強(qiáng)植物對(duì)逆境脅迫的抵抗力，反之植物介導(dǎo)微生物群落的多樣性、結(jié)構(gòu)和組成的形成[22]。

土壤性質(zhì)是土壤可用性及相關(guān)健康狀況的重要表征，如C/N、有機(jī)質(zhì)(OM)含量以及pH值等，土壤性質(zhì)可以與植物種類(lèi)及地上植物覆蓋度相互作用[23]。植物可通過(guò)其本身作用影響土壤性質(zhì)，同樣地，土壤也可以調(diào)節(jié)植物生長(zhǎng)和種間競(jìng)爭(zhēng)[22]。前人研究表明，鹽堿地種植菊苣(CichoriumintybusL.)顯著降低了土壤的鹽分分布，提高了根際有效養(yǎng)分[24]。本研究結(jié)果與前人研究結(jié)果趨于一致，即種植相關(guān)功能性植物后，土壤鹽分顯著降低，土壤氮、磷、鉀全量養(yǎng)分、速效養(yǎng)分和土壤孔隙度(TPOR)等明顯提高[25]。這可能是因?yàn)橹参锏母祷顒?dòng)可以激活土壤功能，加速土壤養(yǎng)分溶解，減少土壤水分蒸發(fā)，促進(jìn)土壤膨壓轉(zhuǎn)換，從而改善土壤理化性質(zhì)。前人研究表明，土壤鹽堿化會(huì)抑制土壤磷酸酶、脲酶及過(guò)氧化物酶等土壤酶活性[24]。本研究結(jié)果表明，鹽堿地土壤硝酸還原酶(Nir)、纖維素酶(Cel)及木質(zhì)素過(guò)氧化物酶(Lip)活性顯著降低，脲酶(Ure) 活性升高，而在種植相關(guān)水生植物后，則呈相反趨勢(shì)。所有植物修復(fù)處理皆提高了氮循環(huán)中的關(guān)鍵酶——Ure的活性；Ure可將亞硝酸鹽降解為NO或NH3，從而減少亞硝酸鹽在環(huán)境中的積累，降低亞硝酸鹽積累對(duì)生物體的毒性作用，這表明種植修復(fù)植物可以促進(jìn)土壤的氮循環(huán)[19]。

植物根系可通過(guò)分泌物改變土壤的物理、化學(xué)和生物特性，還可以刺激土壤微生物群落的形成，從而調(diào)節(jié)養(yǎng)分循環(huán)，并保證植物生長(zhǎng)和生態(tài)系統(tǒng)的可持續(xù)性[26-27]。根系分泌物的種類(lèi)和數(shù)量決定了土壤微生物的種類(lèi)和數(shù)量，進(jìn)而影響微生物的生長(zhǎng)、繁殖和代謝[7]。Eisenhauer等指出，根系分泌物介導(dǎo)的微生物相互作用，對(duì)土壤肥力、健康狀況和植物生長(zhǎng)發(fā)育均具有重要作用[28]。本研究結(jié)果表明，與CK相比，LL、XP、ZSC處理皆增加了群落Alpha指數(shù)，其中多樣性顯著提高，而LZ的群落組成多樣性及豐度皆與CK相當(dāng)?；趗nifrac距離的非度量多維尺度分析(NMDS)顯示，除LZ處理與CK未明顯分離外，其他水生植物修復(fù)處理之間均存在明顯分離。這表明不同植物土壤微生物多樣性存在一定差異。不同植物產(chǎn)生的根系分泌物存在差異，這決定了特定植物中微生物的組成特征，因此微生物組成存在差異可能是由于不同植物分泌的代謝物不同[29]。在群落結(jié)構(gòu)中，變形菌門(mén)(Proteobacteria)是各處理相對(duì)豐度占比最高的優(yōu)勢(shì)門(mén)，其相對(duì)豐度占比31.67%～39.18%，該門(mén)包括固氮類(lèi)細(xì)菌(如根瘤菌)[30]。

在屬水平上，鞘氨醇單胞菌屬(Sphingomonas)為相對(duì)豐度最高的優(yōu)勢(shì)屬，包含許多功能豐富的新型微生物資源，是最重要的優(yōu)勢(shì)菌屬，也是目前研究中被廣泛認(rèn)可的可改善逆境的指示性菌群。鞘氨醇單胞菌屬能在營(yíng)養(yǎng)有限的環(huán)境中生存，表現(xiàn)出反硝化和非共生固氮的特點(diǎn)，可見(jiàn)其可能參與氮循環(huán)[31]。此外，鞘氨醇單胞菌屬還可用于芳香族化合物的生物降解，因此在環(huán)境污染中發(fā)揮著重要作用[32]，可能是該菌能成為鹽堿地優(yōu)勢(shì)菌的原因。本研究發(fā)現(xiàn)LL、LZ處理顯著增加了鞘氨醇單胞菌屬的相對(duì)豐度，可能是這2種植物可以富集土壤中的固氮菌，從而進(jìn)一步改善土壤營(yíng)養(yǎng)和質(zhì)量，因此LL、LZ處理中TN、AN含量較高。此外，溶桿菌屬(Lysobacter)也是優(yōu)勢(shì)屬之一，可分泌多種抗生素、酶和生物活性物質(zhì)，抑制其他細(xì)菌并調(diào)節(jié)植物病害[31]。本研究中，LL、XP處理顯著增加了溶桿菌屬的相對(duì)豐度，說(shuō)明這2種水生植物是鹽堿地修復(fù)的較佳選擇。

冗余分析(RDA)可用來(lái)描述土壤理化參數(shù)、酶活性和微生物群落分布之間的關(guān)系。以往的研究表明，pH值、SOC、AP和酶活性等環(huán)境因素決定了不同生態(tài)系統(tǒng)中的土壤微生物群落[19，33]。本研究中的RDA表明，pH值、TS、OM含量、TK含量、AN含量、BD、亞硝酸還原酶(Ure)活性和木質(zhì)素過(guò)氧化物酶(Lip)活性是決定鹽堿地種植水生修復(fù)植物后細(xì)菌群落總量的主要因素。這些結(jié)果表明，土壤性質(zhì)和酶活性是影響鹽堿地植物修復(fù)應(yīng)用中微生物群落組成的主要驅(qū)動(dòng)因素。