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    基于CANON系統(tǒng)顆粒污泥耦合生物膜工藝脫氮性能及微生物特征研究

    2022-12-27 10:48:16王志康任治軍李雪瑩
    關(guān)鍵詞:生物膜硝化氨氮

    韓 松,李 凱*,王志康,任治軍,李雪瑩

    (1.貴州民族大學(xué)生態(tài)環(huán)境工程學(xué)院,貴陽 550025;2.國家民委重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室:喀斯特環(huán)境地質(zhì)災(zāi)害防治實(shí)驗(yàn)室,貴陽 550025)

    近年,我國經(jīng)濟(jì)及工業(yè)體系迅速發(fā)展,垃圾滲濾液、食品加工廢水、畜禽養(yǎng)殖廢水等高濃度氨氮低碳廢水排放逐年增加[1]。目前常用傳統(tǒng)處理技術(shù)如活性污泥、A/O、A2/O等工藝處理高氨氮低碳廢水,需大量曝氣與有機(jī)物的額外投加,成本高,構(gòu)筑物結(jié)構(gòu)復(fù)雜,占地面積大,操作難度高。自養(yǎng)脫氮工藝又稱CANON工藝,是基于上述情況研發(fā)的一種新工藝,在處理高濃度氨氮低碳廢水時(shí),具有物料投加少、能耗低、占地面積小、操作簡(jiǎn)單等優(yōu)點(diǎn)[2]。

    CANON工藝主要包括亞硝化和厭氧氨氧化(Anammox)兩個(gè)階段:I,進(jìn)水中部分氨氮參與亞硝化反應(yīng),被氨氧化菌(AOB)依次轉(zhuǎn)化為NH2OH、NO、NO2-;II,亞硝化反應(yīng)生成NO2-與進(jìn)水中剩余NH4+在厭氧氨氧化菌(AnAOB)作用下,發(fā)生Anammox反應(yīng)生成N2與少量NO3-,由此實(shí)現(xiàn)氮去除。AOB與AnAOB是CANON工藝主要功能微生物,均為化能自養(yǎng)型,在脫氮過程中無需消耗碳源,無需NO2-進(jìn)一步氧化為NO3-。研究表明,CANON工藝可節(jié)省約60%耗氧量與100%有機(jī)碳投加,減少90%污泥產(chǎn)量,是一種節(jié)能、經(jīng)濟(jì)的脫氮工藝[3]。

    目前,對(duì)CANON工藝研究主要集中在單一生物膜系統(tǒng)與顆粒污泥系統(tǒng)實(shí)驗(yàn)室研究[4],利用其顆粒污泥和生物膜空間特點(diǎn),為AOB和AnAOB分別提供好氧和厭氧微環(huán)境,實(shí)現(xiàn)協(xié)同脫氮。生物膜由約10%微生物與約90%胞外聚合物(EPS)構(gòu)成,EPS作為生物膜骨架提供穩(wěn)定支撐并介導(dǎo)微生物表面黏附,形成AOB在外層好氧空間、AnAOB在內(nèi)層厭氧空間的黏性三維結(jié)構(gòu)[5],可為微生物創(chuàng)造穩(wěn)定生存環(huán)境,在細(xì)胞缺乏營養(yǎng)物質(zhì)時(shí),充當(dāng)?shù)孜锕┘?xì)胞存活,使生物膜具有較強(qiáng)抗逆性,但過量EPS導(dǎo)致生物膜滲透性降低,影響膜內(nèi)微生物活性[6]。相對(duì)而言,顆粒污泥主要構(gòu)成為微生物,EPS在其形成過程中僅起黏合劑作用,具有較高污染物去除效率[7],存在啟動(dòng)周期長(zhǎng)、操控條件高、脫氮不穩(wěn)定等問題[8]。探索將生物膜、顆粒污泥耦合實(shí)現(xiàn)自養(yǎng)脫氮,對(duì)于CANON工藝工程應(yīng)用具有重要意義。

    本文基于CANON系統(tǒng)EGSB反應(yīng)器構(gòu)建顆粒污泥生物膜復(fù)合式(GSBR)反應(yīng)器,EGSB反應(yīng)器也叫膨脹顆粒污泥床,在此基礎(chǔ)上,EGSB反應(yīng)器內(nèi)三相分離器上添加軟性填料形成生物膜,接種顆粒污泥與活性污泥混合液,構(gòu)建成GSBR反應(yīng)器。研究進(jìn)水NH4+-N濃度、DO濃度、上升流速對(duì)脫氮效率與系統(tǒng)穩(wěn)定性影響,探討顆粒污泥與生物膜在復(fù)合系統(tǒng)工藝同步馴化情況、微觀形態(tài)與微生物構(gòu)成,探究GSBR反應(yīng)器協(xié)同脫氮過程,研究可為CANON工藝工程應(yīng)用研究提供參考依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 GSBR反應(yīng)器

    反應(yīng)器如圖1所示,主體可分為生物膜區(qū)和顆粒污泥區(qū)兩部分,由三相分離器分隔開,三相分離器內(nèi)投加軟性填料供微生物附著生長(zhǎng)。反應(yīng)器高1.8 m,有效容積為8 L,生物膜區(qū)內(nèi)徑為150 mm,顆粒污泥區(qū)內(nèi)徑為50 mm。生物膜區(qū)和顆粒污泥區(qū)間設(shè)有曝氣器。主體外側(cè)設(shè)置恒溫水浴加熱器,主體底部設(shè)置進(jìn)水口,上部設(shè)置出水口與回流口,進(jìn)水管與回流管均連接蠕動(dòng)泵。

    圖1 GSBR反應(yīng)器裝置Fig.1 GSBR Reactor

    1.2 試驗(yàn)用水與接種污泥

    采用人工廢水,以NH4HCO3作為廢水氮源,適量KH2PO4作為磷源,適量CaCl2促進(jìn)顆粒污泥形成,使用NaHCO3調(diào)節(jié)廢水pH,控制在7.8~8.2,接種污泥取自EGSB反應(yīng)器中顆粒污泥與活性污泥混合液,接種量為0.05 L,MLSS為3 500 mg·L-1,進(jìn)水按1 mL·L-1加入以下微量元素液:EDTA 5 g·L-1,CoCl2·6H2O 1.6 g·L-1,ZnSO4·7H2O 2.2 g·L-1,CuSO4·5H2O 1.2 g·L-1,MnCl2·4H2O 5.1 g·L-1,(NH4)6Mo7O244H2O 1.1 g·L-1,F(xiàn)eSO4·7H2O 5 g·L-1,CaCl2·2H2O 5.5 g·L-1。

    1.3 反應(yīng)器運(yùn)行調(diào)控

    采用上流式連續(xù)進(jìn)水,通過蠕動(dòng)泵調(diào)節(jié)進(jìn)水與回流流速,調(diào)控顆粒污泥區(qū)上升流速,恒溫加熱器控制溫度為(30±2)℃。將曝氣器置于生物膜區(qū)與顆粒污泥間,調(diào)節(jié)曝氣量控制DO濃度。實(shí)驗(yàn)中反應(yīng)器共運(yùn)行262 d,各階段時(shí)間、進(jìn)水NH4+-N濃度、DO濃度、上升流速、HRT參見表1。

    表1 反應(yīng)器運(yùn)行情況Table1 Reactor operation

    1.4 常規(guī)測(cè)試方法

    NH4+-N、NO2--N、NO3--N和MLSS等采用標(biāo)準(zhǔn)方法測(cè)量,如表2所示。

    表2 分析項(xiàng)目與檢測(cè)方法Table 2 Analysis items and test methods

    使用JPB-607AB便攜式溶氧儀測(cè)定DO,使用PHBJ-260便攜式pH計(jì)測(cè)定pH,使用HYL-2080激光粒度儀測(cè)定污泥粒徑。

    1.5 分析方法

    1.5.1 總氮、氨氮去除效率

    本研究中,總氮(TN)濃度由含氮物NH4+-N、NO2--N、NO3--N之和表示。氨氮去除率與總氮去除率(ETN)分別表示進(jìn)、出水中NH4+-N與TN減少量與進(jìn)水濃度比值,分別采用式(1)與(2)計(jì)算,公式如下:

    式中,NH4+-Ninf,TNinf分別表示反應(yīng)器進(jìn)水中氨氮濃度與總氮濃度(mg·L-1);NH4+-Neff,TNeff分別表示出水氨氮濃度與總氮濃度(mg·L-1)。

    1.5.2 顆粒污泥粒徑

    在反應(yīng)器上、中、下3個(gè)排泥采樣口分別取10 mL泥水混合物,混合均勻后去除上清液,將10 mL純泥樣使用HYL-2080激光粒度儀測(cè)定污泥直徑,計(jì)算接種初期和反應(yīng)后期顆粒污泥粒徑變化。

    1.5.3 微生物多樣性

    取0.5 g生物膜、顆粒污泥樣品,使用Fast DNA SPIN試劑盒提取基因組DNA,采用上海生工Illumina Miseq測(cè)序平臺(tái)分析16s RNAV3區(qū)基因序列,所用擴(kuò)增引物為341F:CCTACGGGNGGCWGCAG,805R:GACTACHVGGGTATCTAATCC?;?7%同源性對(duì)OTUs進(jìn)行聚類分析,通過與RDP(Ribosomal database project)在線數(shù)據(jù)庫比對(duì),分析微生物組成。

    1.5.4 去除負(fù)荷

    分別采用式(3)、式(4)計(jì)算NH4+-N單位容積去除負(fù)荷、TN單位容積去除負(fù)荷,公式如下:

    2 結(jié)果與分析

    2.1 進(jìn)水NH 4+-N濃度對(duì)GSBR反應(yīng)器脫氮的影響

    進(jìn)水NH4+-N濃度為50、100、150、200 mg·L-1,分別運(yùn)行30 d,含氮物濃度及脫氮性能如圖2所示。當(dāng)進(jìn)水NH4+-N濃度為50 mg·L-1時(shí),出水中含氮物主要為NO3--N,NH4+-N、NO2--N濃度較低,不足0.2 mg·L-1;當(dāng)進(jìn)水NH4+-N濃度提升至200 mg·L-1時(shí),NH4+-N、NO2--N濃度分別增至33.42 mg·L-1、17.28 mg·L-1。結(jié)合自養(yǎng)脫氮過程表達(dá)式,可推測(cè)主要脫氮途徑為亞硝化-Anammox。NH4+-N去除率(ENH4+-N)及TN去除率(ETN)在進(jìn)水NH4+-N濃度50~200 mg·L-1范圍內(nèi)提高而降低,由99%降至83%,ETN由76%降至61%,單位容積TN去除負(fù)荷(FrTN)由0.58 kgN(m3·d)-1升至1.76 kgN(m3·d)-1,表明含氮污染物去除量隨進(jìn)水NH4+-N濃度提升而增加。當(dāng)進(jìn)水NH4+-N提升至150 mg·L-1時(shí),此時(shí)ETN、FrTN分別為72.6%、1.58 kgN(m3·d)-1,脫氮性能較好,進(jìn)一步提升總氮去除增量顯著減少,TN去除率下降。

    圖2 含氮物質(zhì)濃度及TN去除率變化Fig.2 Changeof nitrogen content and TN removal rate

    2.2 DO濃度對(duì)GSBR反應(yīng)器脫氮的影響

    進(jìn)水NH4+-N濃度分別為50、100、150 mg·L-1,各階段分別調(diào)控DO濃度為0.3、0.8、1.3、1.8 mg·L-1,出水NH4+-N、TN去除率及進(jìn)水NH4+-N 100 mg·L-1時(shí)出水狀況見圖3。不同進(jìn)水NH4+-N濃度,ENH4+-N均隨DO濃度提升呈先增再降,在DO濃度為0.8 mg·L-1時(shí)整體去除率較好。原因是低氧條件下DO促進(jìn)亞硝化,降解NH4+-N生成NO2--N;當(dāng)DO濃度>0.8 mg·L-1時(shí),則抑制Anammox反應(yīng),影響NH4+-N轉(zhuǎn)化為N2。以進(jìn)水NH4+-N濃度為100 mg·L-1時(shí)為例,出水中NO2--N隨DO升高而增加,原因是DO促進(jìn)亞硝化生成NO2--N,NO3--N受DO濃度影響較小,NO3--N濃度先由24.3 mg·L-1上升至30.7 mg·L-1,隨后回落至27.0 mg·L-1,變化幅度較小。

    圖3 NH 4+-N、TN去除率/含氮物質(zhì)濃度Fig.3 Change of NH 4+-N、TN removal rate/nitrogen content

    2.3 上升流速對(duì)GSBR反應(yīng)器脫氮的影響

    控制進(jìn)水濃度為100 mg·L-1,調(diào)節(jié)回流泵轉(zhuǎn)速控制顆粒污泥區(qū)、生物膜區(qū)料液上升流速,顆粒污泥區(qū)為3.5、5.0、6.5、8.0 m·h-1,生物膜區(qū)對(duì)應(yīng)上升流速為0.9、1.3、1.6、2.0 m·h-1。運(yùn)行參數(shù):DO 0.8 mg·L-1、HRT 24 h,各階段運(yùn)行時(shí)間為20 d,反應(yīng)器出水如圖4所示。如圖4所示,顆粒污泥區(qū)上升流速由3.5 m·h-1逐漸升至8.0 m·h-1,各階段反應(yīng)后期NH4+-N去除率呈先升后降,顆粒污泥區(qū)上升流速為6.5 m·h-1達(dá)最大值97.6%。TN去除率則隨上升流速增加逐漸降低,顆粒污泥區(qū)上升流速3.5 m·h-1達(dá)最大值71.5%,污泥區(qū)上升流速提升5.0 m·h-1時(shí)快速降至59.1%,隨上升流速進(jìn)一步提升而緩慢下降。上升流速提升過程中,NH4+-N濃度先降后升,上升流速6.5 m·h-1時(shí)達(dá)最小值,表明上升流速在3.5~6.5 mg·L-1范圍增加有利于亞硝化,促進(jìn)NH4+-N向NO2--N轉(zhuǎn)化,但不利于Anammox,抑制NH4+-N、NO2--N轉(zhuǎn)化為N2,導(dǎo)致逐漸升高,ETN逐漸降低。當(dāng)上升流速繼續(xù)升至8.0 m·h-1時(shí),亞硝化與Anammox均受不同程度抑制,NH4+-N、TN去除性能降低。

    圖4 NH 4+-N、TN去除率Fig.4 NH 4+-N、TN removal rate

    2.4 微生物形態(tài)及組成

    2.4.1 顆粒污泥粒徑變化

    如圖5所示,為顆粒污泥粒徑變化,接種前污泥粒徑主要分布區(qū)間為0~3.0 mm,占顆??傮w數(shù)量比例為84%,其中,1.0~2.0 mm為含量最高分布區(qū)間,占比為38%,接種前顆粒污泥平均粒徑為1.8 mm。接種污泥后粒徑主要分布區(qū)間為2.0~4.0 mm,所占比例為79%,2.0~3.0 mm為含量最高分布區(qū)間,接種污泥后顆粒污泥平均粒徑為2.7 mm,相對(duì)于接種前顆粒污泥平均粒徑增加50%,平均體積增加2.4倍,表明GSBR反應(yīng)器可有效實(shí)現(xiàn)顆粒污泥馴化。

    圖5 顆粒污泥粒徑變化Fig.5 Change of particle size of granular sludge

    2.4.2 污泥表觀形態(tài)

    如圖6所示,為生物膜與顆粒污泥SEM電鏡掃描圖。生物膜與顆粒污泥污泥表面均有大量EPS結(jié)構(gòu),相比于顆粒污泥,生物膜表面結(jié)構(gòu)較松散,覆蓋EPS更多,存在較大孔道,用于膜內(nèi)微生物與基質(zhì)溶液間物質(zhì)傳遞;顆粒污泥表面則相對(duì)緊實(shí),絮狀體、空隙相對(duì)較少,該結(jié)構(gòu)可能受長(zhǎng)期水力剪切影響,松散結(jié)合型EPS被沖刷而緊密結(jié)合型EPS相對(duì)含量增加。

    圖6 GSBR反應(yīng)器污泥電鏡掃描Fig.6 SEM of sludge in GSBR reactor

    2.4.3 微生物多樣性

    如圖7所示,為GSBR反應(yīng)器污泥在種屬水平上的多樣性。生物膜優(yōu)勢(shì)菌種屬為Nitrospira,norankf-BSV26,Candidatus-Brocadia,Denitratisoma,Meiothermus,norank-f-Gemmatimonadaceae,Nitrosomonas,相對(duì)豐度分別為13.39%、17.45%、4.31%、4.86%、7.93%、5.48%、2.37%。顆粒污泥優(yōu)勢(shì)菌屬為Candidatus-Jettenia,norank-f-BSV26,Candidatus_Brocadia,Denitratisoma,norank-o-SBR1031,norank-c-OM190,相對(duì)豐度分別為18.38%、2.79%、3.70%、2.77%、11.20%、3.90%。其中,Candidatus-Brocadia和Candidatus-Jettenia為AnAOB,Nitrosomonas為亞硝化細(xì)菌,Nitrospira為硝化細(xì)菌[9]。

    圖7 GSBR反應(yīng)器污泥在屬水平的微生物組成Fig.7 Microbial composition of GSBR reactor sludgein generic level

    3 討 論

    本研究GSBR反應(yīng)器,當(dāng)進(jìn)水NH4+-N負(fù)荷較低時(shí),亞硝化-Anammox途徑將NH4+-N完全轉(zhuǎn)化為大量N2與少量NO3--N,當(dāng)進(jìn)水NH4+-N負(fù)荷較高時(shí),亞硝化-Anammox無法將NH4+-N、NO2--N完全轉(zhuǎn)化,導(dǎo)致出水中NH4+-N與NO2--N濃度較高。Li等采用SBR運(yùn)行CANON生物膜系統(tǒng),最大FrTN為0.42 kgN(m3·d)-1至0.59 kgN(m3·d)-1[10];采用自養(yǎng)脫氮顆粒污泥系統(tǒng),最大FrTN可達(dá)2.30 kgN(m3·d)-1[11]。本文最大FrTN為1.76 kgN(m3·d)-1,接近顆粒污泥系統(tǒng)。張澤宇等采用最佳策略調(diào)控CANON顆粒污泥系統(tǒng),進(jìn)水NH4+-N濃度變化最短適應(yīng)時(shí)間為25 d[12],反應(yīng)器適應(yīng)期為7~12 d,相對(duì)顆粒污泥系統(tǒng)較短,抗沖擊負(fù)荷性能更優(yōu)。不同進(jìn)水NH4+-N濃度時(shí),ENH4+-N與ETN均隨DO濃度在0.3~1.8 mg·L-1范圍提高,呈先增后降趨勢(shì),均在DO濃度為0.8 mg·L-1達(dá)整體脫氮效率最高,與方芳等研究結(jié)果一致[13]。研究認(rèn)為,DO是實(shí)現(xiàn)CANON工藝高效運(yùn)行重要因素,保證AOB能夠?qū)⒉糠諲H4+-N轉(zhuǎn)變成NO2--N,但DO過高又促進(jìn)NOB生長(zhǎng)導(dǎo)致NO2--N生成NO3--N,抑制AnAOB活性[14]。張姚等基于CANON顆粒污泥系統(tǒng)研究則顯示,在DO為0.46 mg·L-1時(shí),當(dāng)DO>1.0 mg·L-1時(shí)Anammox菌失活[15]。本文GSBR反應(yīng)器對(duì)DO耐受性更強(qiáng),適應(yīng)范圍更大,GSBR反應(yīng)器脫氮過程中受DO影響程度小,以進(jìn)水NH4+-N濃度100 mg·L-1為例,DO為0.8 mg·L-1時(shí)TN去除率達(dá)最大值66.1%,DO為1.8 mg·L-1時(shí)為51.1%,降幅僅為15%。部分研究顯示,自養(yǎng)脫氮顆粒污泥系統(tǒng)在上升流速為6~7 m·h-1時(shí)性能最佳[16]。本文最適上升流速相對(duì)較低,降低能耗需求,可能是上升流速綜合作用于生物膜與顆粒污泥的結(jié)果。研究認(rèn)為,上升流速形成水力剪切,影響顆粒污泥與基質(zhì)如DO傳質(zhì)過程,對(duì)顆粒污泥粒徑、沉降性能及EPS生成造成影響[17-18]。

    微生物形態(tài)組成表明,生物膜與顆粒污泥微生物組成差異顯著,可能是因兩者表面水體流速不同,導(dǎo)致EPS覆蓋層厚度、DO及含氮物傳質(zhì)產(chǎn)生差異[19]。生物膜與顆粒污泥均含有功能微生物AOB、AnAOB,其中,AOB主要分布在生物膜中,AnAOB在生物膜與顆粒污泥中均有較多分布,尤其在顆粒污泥中,AnAOB豐度高達(dá)22%,遠(yuǎn)高于其他優(yōu)勢(shì)物種,這是因顆粒污泥主要構(gòu)成為微生物,EPS在其形成過程中僅發(fā)揮黏合劑作用,污泥在顆粒污泥表面富集,污泥消耗大部分氧氣,使其內(nèi)部低氧狀態(tài),AnAOB活性不受抑制[20]。生物膜中還檢測(cè)出硝化功能菌Nitrospira,原因可能是生物膜長(zhǎng)期附著于填料,增加污泥齡,系統(tǒng)對(duì)硝化功能菌的篩除能力減弱[21]。生物膜也因微生態(tài)系統(tǒng)多元化,具有更好抗逆性與抗沖擊負(fù)荷能力。

    4 結(jié)論

    構(gòu)建一種CANON工藝GSBR反應(yīng)器,實(shí)現(xiàn)自養(yǎng)生物膜與顆粒污泥同步馴化,進(jìn)水NH4+-N濃度、DO濃度、上升流速分別在150 mg·L-1、0.8 mg·L-1、3.5 m·h-1時(shí)脫氮性能較好??偟コ?fù)荷最高可達(dá)1.76 kgN(m3·d)-1,對(duì)水質(zhì)波動(dòng)適應(yīng)期較短,進(jìn)水NH4+-N濃度提升后7~12 d可恢復(fù)到穩(wěn)定狀態(tài),具有較大DO耐受性及適應(yīng)范圍,受DO影響小,DO由0.8 mg·L-1增至1.8 mg·L-1,TN去除率僅降低23%。顆粒污泥平均粒徑增加50%,平均體積增加2.4倍;生物膜與顆粒污泥微生物組成差異明顯,AOB主要分布在生物膜中,AnAOB在生物膜與顆粒污泥中均有較多分布,顆粒污泥中豐度高達(dá)22%,不同微生物分布實(shí)現(xiàn)生物膜與顆粒污泥耦合脫氮。

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