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    大口黑鱸彈狀病毒的分離與鑒定

    2022-12-03 06:27:18章文言張玉軍李陳石和榮劉學(xué)芹

    章文言,張玉軍,李陳,石和榮,劉學(xué)芹

    1.華中農(nóng)業(yè)大學(xué)水產(chǎn)學(xué)院/湖北省水生動物病害防控工程技術(shù)研究中心,武漢 430070;2.東莞市銀華生物科技有限公司,東莞 523000

    大口黑鱸(Micropterus salmoides),又名加州鱸,是北美洲重要的游釣性魚類,于1983 年被引進(jìn)中國廣東[1]。大口黑鱸作為一種優(yōu)質(zhì)的淡水魚,具有肉質(zhì)細(xì)膩、蛋白質(zhì)含量高、繁殖周期短、耐受性好等優(yōu)點(diǎn)[2],現(xiàn)已成為我國重要的淡水養(yǎng)殖魚類之一。根據(jù)《2021 中國漁業(yè)統(tǒng)計(jì)年鑒》,大口黑鱸的養(yǎng)殖產(chǎn)量在中國水產(chǎn)養(yǎng)殖市場中逐年攀升。然而隨著養(yǎng)殖規(guī)模的不斷擴(kuò)大,大口黑鱸病毒病、細(xì)菌病、真菌病、寄生蟲病等一系列病害[3-5]日益嚴(yán)重,尤其病毒病因傳染快、病程短、死亡率高,防控難度大,且無有效的治療手段等[6],嚴(yán)重危害大口黑鱸養(yǎng)殖業(yè)的發(fā)展。近年來由彈狀病毒(micropterus salmoides rhabdovirus,MS?RV)引起的大口黑鱸死亡事件時有發(fā)生,其高傳染性可導(dǎo)致大量幼魚死亡[7],死亡率最高可達(dá)90%[8]。

    2021 年廣東省韶關(guān)市某大口黑鱸養(yǎng)殖場出現(xiàn)大口黑鱸幼魚大量死亡的現(xiàn)象?;疾〉拇罂诤邝|主要表現(xiàn)為體色發(fā)白、身體失衡、螺旋打轉(zhuǎn)、聚游水面。為了弄清病因,本研究對患病大口黑鱸進(jìn)行臨床觀察,從細(xì)菌學(xué)、寄生蟲學(xué)、病毒學(xué)三方面進(jìn)行了檢測,并通過分子生物學(xué)分析、透射電鏡觀察等方法,鑒定其病原為大口黑鱸彈狀病毒,命名為大口黑鱸彈狀病毒韶關(guān)株(MSRV-SG01)?,F(xiàn)報(bào)道如下。

    1 材料與方法

    1.1 病料和試驗(yàn)動物

    病魚來源于廣東韶關(guān)某大口黑鱸養(yǎng)殖場。試驗(yàn)用魚購自廣東佛山某大口黑鱸魚種繁育場,魚體質(zhì)量為(0.5±0.1)g,體長為(3±0.5)cm。試驗(yàn)開始前,隨機(jī)抽取3 尾魚進(jìn)行RT-PCR 檢測,確定無病毒攜帶后,暫養(yǎng)2 周,每天早晚各投喂1 次,利用加熱棒將水溫控制在26 ℃左右,使用增氧裝置將溶氧控制在5 mg/L左右。

    1.2 細(xì)胞及主要試劑

    鯉上皮瘤細(xì)胞(epithelioma papillosum cyprini cells,EPC)、胖頭鱥肌肉細(xì)胞(fathead minnow mus?cle cells,F(xiàn)HM)、斑點(diǎn)叉尾鮰卵巢細(xì)胞系(channel catfish ovary cells,CCO)細(xì)胞來源于筆者所在實(shí)驗(yàn)室細(xì)胞庫;石斑魚脾臟細(xì)胞(grouper spleen cells,GS)由華南農(nóng)業(yè)大學(xué)秦啟偉教授惠贈;總DNA 提取試劑盒、Trizol 和凝膠小量DNA 膠回收試劑盒購自Magen;反轉(zhuǎn)錄試劑盒購自ABclonal;M199細(xì)胞培養(yǎng)基購自Cytiva;胎牛血清、0.25%EDTANa2的胰酶購自Hyclone;PBS 緩 沖 液購 自Bio-Channel;2×M5 HiPer plus Taq HiFi PCR Mix、DNA Marker、核酸染料和瓊脂糖購于北京百奧萊博科技有限公司。

    1.3 細(xì)菌及寄生蟲檢測

    取病魚體表黏液制備涂片和壓片,在光學(xué)顯微鏡下觀察有無寄生蟲感染。隨機(jī)取3 尾病魚用酒精棉擦拭魚體后,在無菌條件下整尾魚勻漿,PBS 稀釋后1 000 r/min 離心2 min 去沉淀,LB 平板上劃線培養(yǎng)24 h后,觀察菌落的生長狀況。

    1.4 病毒檢測

    隨機(jī)取4尾病魚用酒精棉球擦拭魚體后,在無菌條件下整尾魚勻漿,加入300 μL 無菌PBS 緩沖液稀釋后平均分成3 份,1 份凍存于?80 ℃用于后續(xù)病毒的分離鑒定,另外2 份用于魚類病毒檢測。將2 份中的1 份置于Trizol 中提取總RNA,另1 份用DNA試劑盒提取DNA,采用特異性引物進(jìn)行PCR 檢測(引物信息見表1),PCR 反應(yīng)體系為25 μL:模板3 μL;上下游引物各1 μL;2×M5 HiPer plus Taq HiFi PCR Mix 12.5 μL;ddH2O 7.5 μL。RT-PCR 反應(yīng)程序:95 ℃3 min;94 ℃25 s;55 ℃25 s;72 ℃15 s,35 個循環(huán);72 ℃10 min。PCR 產(chǎn)物經(jīng)2%瓊脂糖凝膠電泳鑒定,切膠回收送至公司測序,測序結(jié)果在NCBI 中進(jìn)行Blast 分析,進(jìn)一步確定分離到的病毒。引物合成及測序由武漢擎科有限公司完成。

    表1 引物堿基序列Table 1 Nucleotide sequences of primers

    1.5 病毒細(xì)胞培養(yǎng)

    從?80 ℃冰箱取出病料勻漿液,無菌條件下取20 μL,用無菌PBS 緩沖液將勻漿液稀釋10 倍,然后取20 μL 稀釋后的勻漿液加到5 mL 無血清M199 培養(yǎng)液中,存于?80 ℃冰箱反復(fù)凍融3 次,充分裂解釋放病毒。4 ℃條件下將凍融后的勻漿液1 000 r/min離心10 min 去除組織碎片,再經(jīng)0.22 μm 微孔過濾器除菌后,分別接種于已長滿單層的EPC、FHM、CCO、GS 細(xì)胞,28 ℃孵育吸附1 h后更換成相應(yīng)的細(xì)胞維持培養(yǎng)基,并設(shè)置未接毒陰性對照,每天觀察細(xì)胞病理變化,并拍照記錄。待90%的細(xì)胞出現(xiàn)細(xì)胞病變時,收集上清及細(xì)胞,反復(fù)凍融3 次,1 000 r/min離心10 min,然后將病毒懸液繼續(xù)接種細(xì)胞,傳代3次。

    1.6 病毒滴度測定及生長動力學(xué)曲線的繪制

    以無血清M199 培養(yǎng)基10 倍梯度稀釋病毒(10?2~10?5),接種到鋪滿單層EPC 細(xì)胞的12 孔板中,每孔500 μL,在28 ℃培養(yǎng)箱中孵育1 h,吸棄病毒液,每孔加入1 mL 含5% FBS 的DMEM-CMC 半固體培養(yǎng)基,培養(yǎng)60 h 后進(jìn)行固定、染色處理及空斑計(jì)數(shù)。取病毒懸液,用無血清M199 培養(yǎng)基稀釋后,分別以0.1 MOI(感染復(fù)數(shù):multiplicity of infection,MOI)和0.01 MOI 的病毒液接種單層EPC 細(xì)胞密度90%的12 孔板,1 h 后換成5%FBS 的細(xì)胞維持培養(yǎng)基。分別在感染后的6、12、24、36、48 h 取細(xì)胞培養(yǎng)液上清,用空斑試驗(yàn)測定各時間點(diǎn)病毒滴度,并利用GraphPad Prism 8.0繪制病毒生長動力學(xué)曲線。

    1.7 病毒電鏡樣品的制備

    取1 瓶單層細(xì)胞密度90%的EPC 細(xì)胞,于無菌環(huán)境下加入5 mL 的病毒懸液,28 ℃吸附1 h,然后更換含5%FBS 的M199 維持培養(yǎng)基,28 ℃培養(yǎng)15 h 后吸棄維持液,將細(xì)胞用無菌PBS洗滌1次,棄之,再加入1 mL 胰酶消化30 s,用槍頭把細(xì)胞吹下來,轉(zhuǎn)移至2 mL無菌EP管中,1 000 r/min離心3 min(細(xì)胞團(tuán)綠豆大?。壣锨?,緩慢加入1 mL 常溫戊二醛(2.5%),將細(xì)胞團(tuán)輕輕挑起,懸浮于固定液中,先室溫避光固定30 min,再轉(zhuǎn)移到4 ℃冰箱保存,交于武漢賽維爾生物科技有限公司進(jìn)行包埋、制片、拍照。

    1.8 人工感染試驗(yàn)

    將試驗(yàn)魚隨機(jī)分為A、B、C 3 組,每組30 尾魚。A、B 組分別腹腔注射10 μL 的105PFU/mL、106PFU/mL 的病毒液,C 組注射等量無血清M199 培養(yǎng)基作為陰性對照,每天觀察魚體死亡情況并記錄。

    1.9 組織病理學(xué)觀察

    分別取攻毒魚的肝、脾、腸組織,4%多聚甲醛固定24 h,各組織分別經(jīng)70%、80%、95%、100%乙醇脫水,二甲苯透明、石蠟包埋切片(5~7 μm)、H&E染色,最后在顯微鏡下觀察、拍照。

    1.1 0 系統(tǒng)發(fā)育樹分析

    采用設(shè)計(jì)的覆蓋MSRV-G基因全長序列的保守性引物對MSRV-F/MSRV-R 進(jìn)行PCR 擴(kuò)增,經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳鑒定后,切膠回收送至武漢擎科有限公司測序,在NCBI 將測序結(jié)果進(jìn)行Blast 分析。在GenBank 中下載常見的幾種彈狀病毒G 蛋白氨基酸序列,利用MEGA7.0 軟件繪制該毒株與大口黑鱸彈狀病毒(MSRV-FJ985;GenBank:MT818233.1、MSRV-YH01;GenBank:mk397811.2)、鱖彈狀病毒(Sinipercachuatsirhabdovirus, SCRV; GenBank:NC_008514.1)、水皰性口炎病毒(vesicular stomatitis Indiana virus,VSV;GenBank:MW373779)、梭子魚苗彈狀病毒(pike fry rhabdovirus,PFRV;GenBank:NC_025356.1)、鯉春病毒血癥病毒(spring viremia of carp virus,SVCV;GenBank:AJ318079.1)、牙鲆彈狀 病 毒(hirame rhabdovirus,HIRRV;GenBank:AF104985.2)、傳染性造血器官壞死病毒(infectious hematopoietic necrosis virus, IHNV; GenBank:X89213.1)、烏鱧彈狀病毒(snakehead rhabdovirus,SHRV;GenBank:NC_000903.1)、病毒性出血性敗血 癥 病 毒(viral hemorrhagic septicemia,VHSV;GenBank:KP866927.1)的系統(tǒng)發(fā)育樹。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 患病魚的臨床觀察

    自然發(fā)病魚池的水溫為26 ℃,病魚全長0.8~1.0 cm,發(fā)病前期在水面聚集、停止攝食,發(fā)病后期身體失衡、螺旋打轉(zhuǎn)、并出現(xiàn)死亡。健康大口黑鱸幼魚背部為青灰色、腹部灰白色(圖1A),而發(fā)病大口黑鱸體色發(fā)白(圖1B)。

    圖1 患病魚的臨床癥狀Fig.1 Clinical symptoms of diseased fish

    2.2 病原檢測結(jié)果

    取組織勻漿液劃線分離未見致病菌,體表黏液在顯微鏡下未觀察到寄生蟲。通過幾種特異性檢測引 物 對MSRV-F1/MSRV-R1、ISKNV-F/ISKNVR、LMBV-F/LMBV-R、NNV-F/NNV-R 對病料進(jìn)行PCR 檢測,結(jié)果如圖2所示,針對MSRV 的檢測引物擴(kuò)增出1條大小約為217 bp的特異性條帶,其他檢測引物均未擴(kuò)增出條帶。

    圖2 不同魚類病毒的RT-PCR檢測的結(jié)果Fig.2 Results of RT-PCR detection of different fish viruses

    2.3 病毒分離培養(yǎng)結(jié)果

    將無菌處理后的病料懸液分別接種EPC、FHM、CCO、GS細(xì)胞,24 h后進(jìn)行拍照觀察。結(jié)果顯示EPC、FHM、CCO 均出現(xiàn)不同程度的病變(箭頭指示),主要表現(xiàn)為細(xì)胞皺縮、聚團(tuán),病變嚴(yán)重部位大面積死亡并脫落,陰性對照組細(xì)胞表現(xiàn)正常。MSRV 對這3 種細(xì)胞的敏感度從高到低依次為:EPC>FHM>CCO,而接毒后的GS 細(xì)胞與陰性對照組相比無明顯差異,表明MSRV 對該細(xì)胞不敏感(圖3)。

    圖3 病料接種不同細(xì)胞系24 h后的病變結(jié)果(40×)Fig.3 Lesion results after 24 hours of inoculation with different cell lines(40×)

    2.4 病毒滴度及生長曲線測定結(jié)果

    病毒在EPC 細(xì)胞上最敏感,后續(xù)將病毒在EPC 細(xì)胞上盲傳3 代,收取接毒24 h 的上清進(jìn)行病毒效價(jià)測定,空斑測定結(jié)果顯示,病毒效價(jià)為106.5PFU/mL。生長動力學(xué)曲線顯示該毒株在0.01 MOI 和0.1 MOI 感染劑量下的增殖曲線總體趨勢一致:6~24 h,病毒快速復(fù)制、增殖,進(jìn)入對數(shù)生長期;24~48 h,病毒增殖緩慢,進(jìn)入平臺期,滴度相差不大,在36 h的滴度相對最高(圖4)。

    圖4 病毒在EPC細(xì)胞中的生長動力學(xué)曲線Fig.4 Growth kinetics of virus in EPC cells

    2.5 病毒粒子形態(tài)

    用2.5%戊二醛固定接毒15 h的EPC 細(xì)胞,然后在HITACHI HT7700 透射電鏡下觀察,發(fā)現(xiàn)大量具有子彈狀特征的病毒粒子,病毒縱切面呈現(xiàn)圓形或橢圓形,長度為120~170 nm,直徑為50~65 nm(圖5)。

    圖5 透射電鏡下觀察病變細(xì)胞中的病毒粒子的形態(tài)大小Fig.5 Observation of the shape and size of virus particles in diseased cells under a transmission electron microscope

    2.6 回感試驗(yàn)結(jié)果

    攻毒試驗(yàn)結(jié)果顯示,A 組、B 組大口黑鱸均于接毒后的第2 天開始死亡。攻毒后第3 天,觀察到攻毒組大部分試驗(yàn)魚游動緩慢、浮游池邊,有個體出現(xiàn)身體失衡、打轉(zhuǎn)、身體彎曲的現(xiàn)象。肉眼觀察,對照組(C 組)試驗(yàn)魚體表完整,健康有光澤(圖6A),攻毒組試驗(yàn)魚表現(xiàn)為身體彎曲、體表出血(圖6B)、拖便(圖6C)、爛尾(圖6C、D)等臨床癥狀,解剖后可以看到病魚肝、脾器官腫大發(fā)紅(圖6D)。A 組在第5 天達(dá)到死亡高峰期,B 組的死亡高峰期為第2 天和第3 天。7 d 后,A、B 組試驗(yàn)魚全部死亡,死亡率100%,而注射M199 的對照組魚并未出現(xiàn)死亡(圖7)。

    圖6 人工感染后大口黑鱸的臨床癥狀Fig.6 Clinical symptoms of Micropterus salmoides after artificial infection

    圖7 攻毒模型生存曲線Fig.7 The survival curve of the challenge model

    2.7 病理組織切片觀察

    H&E 染色結(jié)果顯示,與對照組(圖8A)相比,病魚的肝實(shí)質(zhì)細(xì)胞呈拉網(wǎng)狀壞死、細(xì)胞邊界模糊,連成一片、胞漿空泡化嚴(yán)重(圖8B,箭頭指示)。與對照組(圖8C)相比,病魚脾淋巴組織疏散,含鐵血黃素大量沉積(圖8D,箭頭指示)。與健康大口黑鱸的腸組織(圖8E)相比,患病大口黑鱸的腸組織(圖8F)沒有明顯的病理變化。

    圖8 MSRV感染大口黑鱸的組織病理變化Fig.8 Histopathological changes of MSRV-infected Micropterus salmoides

    2.8 系統(tǒng)進(jìn)化樹分析結(jié)果

    以接種病毒懸液24 h 的EPC 細(xì)胞為樣品,經(jīng)RNA 提取、反轉(zhuǎn)錄后得到模板cDNA,采用特異性引物MSRV-F/MSRV-R 擴(kuò)增G 基因全長序列,得到1 條與預(yù)期結(jié)果一致的大約位于1 500 bp 的特異性條帶,測序結(jié)果顯示,G 基因ORF 為1 541 bp。通過Blast 比對MSRV-SG01 與其他彈狀病毒的同源性,發(fā) 現(xiàn)MSRV-SG01 與MSRV-FJ985、MSRVYH01 這2 株大口黑鱸彈狀病毒的核苷酸同源性分別為99.36%、98.19%,氨基酸同源性分別為99%、97%。利用MEGA7.0 聚類分析MSRV-SG01 G 蛋白氨基酸序列與MSRV-FJ985、MSRV-YH01、SCRV、VSV、PFRV、SVCV、HIRRV、IHNV、SHRV、VHSV 的G 蛋白氨基酸序列,結(jié)果顯示MS?RV-SG01 毒 株 與 MSRV-FJ985、MSRV-YH01、SCRV 聚為同一分支,并與MSRV-FJ985 毒株的親緣關(guān)系最近,但與諾拉彈狀病毒屬的VHSV親緣關(guān)系較遠(yuǎn)(圖9)。確定分離得到1 株大口黑鱸彈狀病毒,根據(jù)病料來源地,將該毒株命名為MSRV-SG01。

    圖9 MSRV-SG01 G蛋白氨基酸序列系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.9 Phylogenetic tree of MSRV-SG01 G protein amino acid sequence

    3 討 論

    彈狀病毒(rhabdovirus)是單股負(fù)鏈RNA 病毒,基因組大小為10.08~16.1 kb[9],宿主廣泛,哺乳動物、鳥類、爬行動物、植物和魚類等均可被感染。作為全球野生及養(yǎng)殖魚類的重要病原體,彈狀病毒嚴(yán)重危害魚類養(yǎng)殖業(yè)的健康發(fā)展[10]。MSRV 與大多數(shù)水生彈狀病毒不同,其具有年齡特異性,主要危害2~4 cm 的幼魚,在25~28 ℃水溫條件下,致死率較高[11-12]。MSRV 與大多數(shù)魚類彈狀病毒的基因組大小、蛋白結(jié)構(gòu)相似,全基因組長度為11 kb 左右,主要編碼核蛋白(N)、磷蛋白(P)、基質(zhì)蛋白(M)、糖蛋白(G)和聚合酶(L)5 種結(jié)構(gòu)蛋白[11,14]。

    根據(jù)以往的研究報(bào)道,自然感染MSRV 的大口黑鱸體長為2.5~4.5 cm[11-12],而本研究采集的患病大口黑鱸為全長0.8~1.0 cm 的幼魚,規(guī)格相對較小。由于患病大口黑鱸攜帶卵黃囊,并未從外界攝入營養(yǎng),推測MSRV 極有可能是通過垂直傳播途徑由親魚傳播給苗種。在魚類養(yǎng)殖過程中,養(yǎng)殖水體污染而導(dǎo)致的病毒感染也有報(bào)道[14],不排除幼魚也有可能通過受病毒污染的水體而被感染。

    本研究發(fā)現(xiàn)MSRV-SG01 毒株對EPC、FHM、CCO 均敏感,都可以產(chǎn)生明顯細(xì)胞病變現(xiàn)象,該毒株能在不同科的魚類細(xì)胞中復(fù)制,說明其具有較強(qiáng)的感染性[15],這提示我們在MSRV 的防控中要注意病毒的種間傳播,避免造成更大的經(jīng)濟(jì)損失。將接毒后病變的EPC 細(xì)胞制作成超薄切片,在透射電鏡下觀察到大量具有子彈狀特征的病毒粒子,長度為120~170 nm,直徑為50~65 nm,與SCRV(長76~18 nm,寬29~52 nm)相比要大一些[16],但是比諾拉彈狀病毒屬的SHRV(180~200 nm,60~80 nm)要小一些[17]。已有研究表明,浸泡和腹腔注射2 種方式均能夠使大口黑鱸幼魚感染MSRV[7]。本試驗(yàn)采用腹腔注射的方式感染幼魚,7 d 內(nèi)死亡率達(dá)100%,顯示該毒株具有較強(qiáng)毒力,已有研究建立的大口黑鱸彈狀病毒攻毒模型死亡率為20%~80%,人工感染死亡率的差異性,可能主要與攻毒劑量有關(guān)[7,18-19]。人工感染大口黑鱸后,病魚2 d 內(nèi)出現(xiàn)死亡,呈出血、魚體彎曲,不規(guī)則狀游泳、爛尾、拖便等臨床癥狀,這符合大口黑鱸彈狀病毒感染病例[8]。組織病理切片結(jié)果顯示,患病大口黑鱸的肝組織大量壞死,肝細(xì)胞空泡化嚴(yán)重,脾淋巴組織呈彌散性壞死,含鐵血黃素大量沉積,與病變癥狀一致,為本研究結(jié)果提供了更加有力的證據(jù)。

    為進(jìn)一步確定MSRV-SG01 毒株的分類地位,本研究在GenBank 中下載了MSRV-FJ985、MSRV

    YH01、SCRV、VSV、PFRV、SVCV、HIRRV、IH?NV、SHRV、VHSV 這幾種常見彈狀病毒的G 蛋白氨基酸序列。根據(jù)系統(tǒng)發(fā)育樹結(jié)果,本試驗(yàn)分離得到 的MSRV-SG01 毒 株 與MSRV-FJ985、MSRVYH01、SCRV 聚為一類,且與已報(bào)道的MSRVFJ985 毒株、MSRV-YH01 毒株的核苷酸同源性分別高達(dá)99.36%、98.19%,氨基酸同源性分別高達(dá)99%、97%,同源性較高,但仍具有一定差異,這可能是MSRV-SG01 毒株在本研究建立的攻毒模型中導(dǎo)致較高死亡率的原因之一。

    綜上,本研究從攜帶卵黃囊的大口黑鱸幼魚上分離出1 株MSRV-SG01 毒株,可為MSRV 的垂直傳播提供參考依據(jù),建議從源頭防控水生動物疾病,以促進(jìn)大口黑鱸的健康養(yǎng)殖。

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