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    重金屬脅迫下河蜆內(nèi)臟中GST mRNA表達(dá)及酶活性分析

    2019-04-09 05:57:50鄭雙艷劉清張霞麗謝彥海
    關(guān)鍵詞:克隆水體重金屬

    鄭雙艷,劉清,張霞麗,謝彥海*

    1. 南昌大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物科學(xué)中心,江西 南昌 330006;2. 江西省科技型中小企業(yè)創(chuàng)新基金管理中心,江西 南昌 330007

    重金屬污染水體現(xiàn)象日漸嚴(yán)重,主要包括非必需金屬離子和必需金屬離子。非必需金屬離子包括Cd2+、Pb2+和Hg2+等,必需金屬離子包括Cu2+和 Zn2+等,它們對(duì)水生生物和人類均有很強(qiáng)的毒性(Anrew et al.,2003;Pretto et al.,2010),當(dāng)這些離子濃度較低時(shí),對(duì)生物體內(nèi)酶的活性起重要的誘導(dǎo)作用,但其濃度過高時(shí),對(duì)生物體具有一定毒性(Blanco-penedo et al.,2006)。這些重金屬離子能長期存在自然水體中,水生生物遭受重金屬污染后,通過食物鏈危害人體的健康(Chale,2002)。

    近些年,通過檢測魚(Lu et al.,2015)、軟體動(dòng)物(Rossi et al.,2016)、甲殼動(dòng)物(Harms et al.,2014)和藻類(Lauritano et al.,2016)等水生生物體內(nèi)相關(guān)應(yīng)激蛋白的mRNA表達(dá)程度和酶活性,可以對(duì)早期水體環(huán)境污染起到直接指示作用。谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶(glutathione S-transferase,GST)是一類多基因家族編碼的二聚體可溶性蛋白的超家族酶系,是生物體內(nèi)相關(guān)應(yīng)急蛋白之一,具有消除體內(nèi)過氧化物及解毒的雙重功能(李雅琴等,2013;Chemale et al.,2010),主要功能是對(duì)異源有毒物質(zhì)進(jìn)行解毒,保護(hù)細(xì)胞免受氧化損傷和對(duì)激素、內(nèi)及外源化合物進(jìn)行細(xì)胞間運(yùn)輸。解毒的作用機(jī)理是促進(jìn)還原型谷胱甘肽(Glutathione,GSH)的活性基團(tuán)——巰基與毒素結(jié)合形成親電子試劑(程煒軒等,2009),使親電子的疏水化合物變成親水物質(zhì),易于從膽汁或尿液中排出。GST通過催化過氧化氫的氧化還原反應(yīng),清除體內(nèi)自由代謝反應(yīng)產(chǎn)生的氧化自由基和過氧化物,參與體內(nèi)免疫反應(yīng)(羅凱婭等,2012),保護(hù)細(xì)胞免受外界脅迫造成的損傷(張永國等,2006)。研究重金屬污染過程中貝類肝胰腺中GST基因表達(dá)特性和GST活性變化特征,有助于深入認(rèn)識(shí)貝類在受到重金屬脅迫時(shí)產(chǎn)生的分子應(yīng)激反應(yīng)及解毒機(jī)理。

    河蜆(Corbicula fluminea),雙殼類軟體動(dòng)物,棲息于淡水的江河、湖泊等,是數(shù)量較大的重要底棲生物,是江河水庫等淡水生態(tài)系統(tǒng)的優(yōu)勢物種,影響著水生生態(tài)系統(tǒng)的物質(zhì)循環(huán)。河蜆生活史較長,個(gè)體較大,以浮游綠藻為食,能直接反映水體和沉積物的污染(Xie,2017)。目前,河蜆作為指示生物已被用于評(píng)價(jià)或監(jiān)測由重金屬、礦山開采排放物、生活污水等引起的水體污染狀況(曾麗璇等,2004)。

    本研究以河蜆為對(duì)象,采用RACE方法克隆其GST基因cDNA全長;在外源重金屬Cd2+、Cu2+、Pb2+單一脅迫下,觀察不同時(shí)間段GST mRNA表達(dá)量和酶活性變化,分析它們與重金屬脅迫的時(shí)間關(guān)系,并由此判明河蜆GST mRNA表達(dá)和酶活性是否具有作為水體重金屬污染的潛在生物標(biāo)志物特征,為河蜆內(nèi)臟GST mRNA和酶生物標(biāo)志物評(píng)價(jià)指標(biāo)的建立提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物與試劑

    河蜆采集于鄱陽湖地區(qū)。CdCl2、CuSO4·5H2O、Pb(CHOO)2均購自國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司,用雙蒸餾水將其配制成濃度分別 750、150、4500 μg·mL-1的母液。GST活性測試盒和考馬斯亮蘭均購自南京建成生物工程研究所。SMARTTMRACE Amplificatuin Kit,Trizol Reagent,PrimeScriptTMRT reagent Kit,SYBR? Premix Ex TaqTMII購于 TaKaRa公司。

    1.1.2 主要儀器

    iMark酶標(biāo)儀(美國BIO-RAD公司);UV 752B紫外可見分光光度計(jì)(天津市普銳斯儀器有限公司);Eppendorf Centrifuge 5804R離心機(jī)(德國Eppendorf公司);SSW-600-2S型電熱恒溫水槽(上海博訊實(shí)業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠);ISO-9001電子天平(北京賽多利斯儀器系統(tǒng)有限公司);SZ-93A自動(dòng)雙重純水蒸餾器(杭州匯爾儀器設(shè)備有限公司);NanoPhotometer Pearl蛋白核酸分析儀(德國Implen公司);7500 Real Time PCR System(美國ABI公司)等。

    1.2 河蜆GST基因克隆

    1.2.1 總RNA的提取以及cDNA合成

    采用Trizol法從河蜆的肝胰腺中提取總RNA。RNA的完整性和質(zhì)量分別用1%瓊脂糖凝膠電泳和蛋白核酸分析儀進(jìn)行檢測。完整的 RNA用SMARTTMRACE Amplificatuin Kit(Takara 公司)試劑盒反轉(zhuǎn)錄成cDNA,-20 ℃保存?zhèn)溆?。按照試劑盒的使用說明,合成用于3′, 5′RACE擴(kuò)增的cDNA。反轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物于-40 ℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.2.2 GST基因全長克隆及測序

    從NCBI基因文庫里獲得河蜆GST基因序列片段(GenBank登陸號(hào):KF218346.1),利用Primer Premier 5.0軟件設(shè)計(jì) 3′RACE 和 5′RACE 特異性引物(表1),按照SMARTTMRACE Amplification Kit試劑盒操作說明進(jìn)行擴(kuò)增。3′RACE擴(kuò)增條件:94 ℃ 3 min;94 ℃ 30 s,55 ℃ 30 s,72℃ 80 s,30 個(gè)循環(huán);72 ℃ 10 min。5′RACE 擴(kuò)增條件:94 ℃30 s,72 ℃ 3 min,5 個(gè)循環(huán);94 ℃ 30 s,70 ℃ 30 s,72 ℃ 3 min,5 個(gè)循環(huán);94 ℃ 30 s,68 ℃ 30 s,72 ℃ 3 min,20個(gè)循環(huán)。將擴(kuò)增產(chǎn)物連接到克隆載體pMD18-T Vecter(TaKaRa公司)轉(zhuǎn)化感受態(tài)細(xì)胞,篩選出陽性基因進(jìn)行克隆后交上海生物工程技術(shù)有限公司進(jìn)行測序分析。

    表1 河蜆GST基因克隆及表達(dá)分析引物Table 1 Primer sequences for GST cloning and expression analysis in C. fluminea

    1.2.3 GST基因生物信息學(xué)分析

    應(yīng)用NCBI中的Blast等工具對(duì)GST基因進(jìn)行同源性分析,并用DNAMAN 6.0軟件進(jìn)行序列比對(duì);采用 Smart服務(wù)器分析保守域和功能位點(diǎn);SignalIP 4.0工具對(duì)該基因的信號(hào)肽進(jìn)行預(yù)測分析;運(yùn)用軟件MEGA 5.0繪制系統(tǒng)進(jìn)化樹。

    1.3 重金屬對(duì)河蜆的急性脅迫

    1.3.1 河蜆處理

    采用半靜態(tài)暴露試驗(yàn),模擬重金屬(Cd2+、Cu2+、Pb2+)對(duì)河蜆的急性脅迫試驗(yàn)。供試河蜆體長為 3-5 cm,試驗(yàn)前將其暫養(yǎng)在長寬高為 30 cm×20 cm×20 cm水族箱中,1周后開始實(shí)驗(yàn)。河蜆被隨機(jī)分成4組,分別為:Cd2+脅迫組、Cu2+脅迫組、Pb2+脅迫組和對(duì)照組,每組 50-60只。Cd2+、Cu2+和Pb2+3個(gè)實(shí)驗(yàn)組中金屬脅迫的濃度均為10 μg·L-1,對(duì)照組中不添加任何重金屬離子。脅迫0、6、12、24、48和72 h,分別在每個(gè)脅迫時(shí)間點(diǎn)隨機(jī)選取6只河蜆,解剖取適量的肝胰腺組織,用于提取總RNA和酶活性測定實(shí)驗(yàn)。

    1.3.2 總RNA的提取及cDNA的合成

    總RNA提取方法同1.2.1反轉(zhuǎn)錄方法參考試劑盒(PrimeScript? RT reagent Kit)說明書進(jìn)行。

    1.3.3 Real-time PCR檢測GST mRNA的表達(dá)

    根據(jù)本實(shí)驗(yàn)室克隆的河蜆 GST基因的 cDNA序列(Genebank:KX211963),以β-actin作為內(nèi)參基因(Genebank:EF446608.1),設(shè)計(jì)特異性熒光定量引物(見表1)PCR反應(yīng)體系為20 μL,分別含有 2×SYBRPremix ExTaqTM10 μL,ROX II 0.4 μL,GST mRNA及β-actin的上下游引物各(10 U)0.8 μL,1∶10 稀釋的 RNA 逆轉(zhuǎn)錄得到的 cDNA2 μL和 RNase free H2O 6 μL。擴(kuò)增條件為 95 ℃ 5 min;95 ℃ 30 s,55 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,40 個(gè)循環(huán);72 ℃ 5 min。每個(gè)樣本均做 3個(gè)平行樣。用7500 system SDS Software v 2.2自動(dòng)進(jìn)行融解曲線分析和GST mRNA基因相對(duì)表達(dá)含量分析。本實(shí)驗(yàn)GST基因相對(duì)表達(dá)量利用GST基因mRNA水平比內(nèi)參基因mRNA水平的相對(duì)倍數(shù)來表示,即采用 2-ΔΔCt法進(jìn)行計(jì)算。

    1.3.4 GST活性測定

    GST活力的測定采用南京建成生物工程研究所的GST測試盒測定。

    1.3.5 數(shù)據(jù)處理

    數(shù)據(jù)采用SPSS 20.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行t檢驗(yàn)分析,實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)用平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(Mean±SD)表示,P<0.05認(rèn)為差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 實(shí)驗(yàn)結(jié)果與分析

    2.1 GST基因的全長cDNA序列分析及系統(tǒng)進(jìn)化樹分析

    利用 RACE技術(shù)克隆了河蜆 GST基因(GenBank登錄號(hào):KX211963),全長952 bp,其中5′非編碼區(qū)為30 bp,3′非編碼區(qū)為268 bp,開放閱讀框?yàn)?54 bp,編碼一個(gè)由217個(gè)氨基酸組成的多肽,預(yù)測理論等電點(diǎn)PI為5.98,分子量為25.169 kD,氨基酸序列中含有GST基因家族特有的GST-N結(jié)構(gòu)域和GST-C結(jié)構(gòu)域(圖1陰影部分),SignalP 4.1程序分析表明該 GST蛋白不存在信號(hào)肽,TMHMM軟件分析表明該蛋白不存在跨膜結(jié)構(gòu)。

    應(yīng)用Bioedit軟件對(duì)河蜆GST氨基酸序列與其他物種的GST氨基酸序列進(jìn)行同源比對(duì)分析,結(jié)果如圖2所示。分析表明,河蜆GST基因與菲律賓簾蛤(Rudiraps philippinarum)同源性最高,為90.32%,河蜆與近江牡蠣(Crassostreaariakensis)、盤鮑(Haliotis discus)、魁蚶(Scapharacabroughtonii)、霸王蓮花青螺(Lottiagigantea)、斑節(jié)對(duì)蝦(Penacus monodon)、羅非魚(Oreochromisniloticus)、錦鯉(Cyprinuscarpiao)、大西洋鯡(Clupeaharengus)的相似性分別為 74.65%、73.27%、72.81%、70.51%、64.55%、64.09%、60.81%、60.81%。結(jié)果說明,河蜆GST基因與菲律賓簾蛤同屬一支。

    2.2 河蜆GST mRNA表達(dá)及活性變化

    2.2.1 Cd2+脅迫下,河蜆GST mRNA表達(dá)及酶活性變化

    圖1 河蜆GST基因的核苷酸序列及推測的氨基酸序列Fig. 1 Nucleotide and deduced amino acid sequences of C. fluminea GST

    圖2 河蜆GST與其他物種GST的系統(tǒng)發(fā)育樹Fig. 2 Phylogenetic tree of GST of C. fluminea and other species based on amino acid sequence

    圖3 肝胰腺GST mRNA表達(dá)水平(A)和活性(B)變化Fig. 3 Changes of GST mRNA expression (A) and activity in hepatopancreas (B)

    經(jīng)Cd2+脅迫后,河蜆GST mRNA表達(dá)水平和酶活性均隨著時(shí)間延長逐漸增強(qiáng),到達(dá)峰值后又逐漸減弱,脅迫組GST mRNA表達(dá)量在24 h和48 h分別約為對(duì)照組的4倍和3倍,與對(duì)照組相比其差異均具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)(圖 3A);GST酶活性在 24 h [(99.36±5.21) U·mg-1]與對(duì)照組相比其差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)(圖3B)。

    2.2.2 Cu2+脅迫下,河蜆GST mRNA表達(dá)及酶活性變化

    經(jīng)Cu2+脅迫后,河蜆GST mRNA表達(dá)水平和酶活性均隨著時(shí)間延長逐漸增強(qiáng),到達(dá)峰值后又逐漸減弱,脅迫組GST mRNA表達(dá)量在12 h約為對(duì)照組的2倍,且與對(duì)照組相比其差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)(圖4A)。脅迫組GST酶活性在24 h[(104.04±8.21) U·mg-1] 和 48 h [(123.58±6.13)U·mg-1]與對(duì)照組相比其差異均具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。(圖 4B)。

    2.2.3 Pd2+脅迫下,河蜆GST mRNA表達(dá)及酶活性變化

    經(jīng)Pd2+脅迫后,河蜆GST mRNA表達(dá)水平和酶活性均隨著時(shí)間延長逐漸增強(qiáng),到達(dá)峰值后又逐漸減弱,脅迫組GST mRNA表達(dá)量在24 h和48h約分別為對(duì)照組的2倍和3倍,且與對(duì)照組相比其差異均具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)(圖5A)。脅迫組GST 酶活性在 48 h [(50.79±4.13) U·mg-1]與對(duì)照組相比差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)(圖5B)。

    圖4 肝胰腺GST mRNA表達(dá)水平(A)和活性變化(B)Fig.4 Changes of GST mRNA expression (A) and activity in hepatopancreas (B)

    圖5 肝胰腺GST mRNA表達(dá)水平(A)和活性變化(B)Fig. 5 Changes of GST mRNA expression (A) and activity in hepatopancreas (B)

    3 討論

    3.1 河蜆GST序列分析與系統(tǒng)進(jìn)化分析

    本研究采用RACE方法克隆獲得了河蜆GST完整序列,經(jīng)生物信息學(xué)分析表明基因全長952 bp,編碼217個(gè)氨基酸,分子量為25.169 kD,氨基酸序列中含有GST基因家族特的有兩個(gè)保守性不同結(jié)構(gòu)域(Sheehan et al.,2001):具有保守的N末端結(jié)構(gòu)域(GST-N)含有谷胱甘肽(GSH)結(jié)合位點(diǎn);具有不保守的C末端結(jié)構(gòu)域(GST-C)可以結(jié)合不同底物(左偉東等,2007)。SignalP 4.1程序分析表明該GST蛋白不存在信號(hào)肽,TMHMM 軟件分析表明該蛋白不存在跨膜結(jié)構(gòu)。系統(tǒng)進(jìn)化樹分析表明,河蜆GST與菲律賓簾蛤親緣關(guān)系最近,進(jìn)一步說明本研究克隆得到的GST基因?qū)儆诤油楪ST基因,為后續(xù)研究該基因結(jié)構(gòu)和功能奠定基礎(chǔ)。

    3.2 重金屬脅迫下河蜆GST mRNA的表達(dá)分析與酶活性變化

    對(duì)GST mRNA相對(duì)定量表達(dá)和酶活性進(jìn)行分析,發(fā)現(xiàn)河蜆在 Cd2+、Cu2+、Pb2+單一脅迫下均可使GST mRNA表達(dá)升高、酶活性增強(qiáng),且表現(xiàn)為時(shí)間依賴型,隨著時(shí)間延長內(nèi)臟中GST mRNA表達(dá)和酶活性逐漸增強(qiáng),表明谷胱甘肽硫轉(zhuǎn)移酶對(duì)環(huán)境脅迫尤為敏感,其活性可被氧化應(yīng)激所誘導(dǎo)而做出積極的應(yīng)答反應(yīng),這與胡影等(2016)的研究結(jié)果是一致的,說明污染物處理時(shí)間是誘導(dǎo)GST活動(dòng)的重要因素,產(chǎn)生這種現(xiàn)象可能是因?yàn)樯矬w在遇到外界環(huán)境有毒物質(zhì)時(shí),GST具有消除中間產(chǎn)物與體內(nèi)自由基的雙重功能,將體內(nèi)潛在的毒性物質(zhì)和親電的疏水化合物變成親水化合物,使之降解排出體外(聶湘平等,2008)。隨著暴露時(shí)間的延長,GST mRNA和活性達(dá)到峰值后逐漸下降,可能與河蜆對(duì)環(huán)境的適應(yīng),體內(nèi)自由基被清除和酶活性逐漸喪失有關(guān)。然而,3種金屬離子脅迫的表達(dá)特征略有不同,即表達(dá)峰值出現(xiàn)的時(shí)間點(diǎn)差異:在 Cd2+脅迫下,GST mRNA表達(dá)和酶活性峰值均出現(xiàn)在24 h;在Cu2+脅迫下,GST mRNA表達(dá)峰值出現(xiàn)在12 h,酶活性峰值出現(xiàn)在48 h;在Pb2+脅迫下,GST mRNA表達(dá)和酶活性峰值均出現(xiàn)在48 h,以上表達(dá)特征差異可能是因?yàn)?GST對(duì)不同的重金屬的解毒能力的存在差異。

    以往利用 Cu2+和 Cd2+脅迫厚殼貽貝(Mytilus coruscus)能使其內(nèi)臟中GST基因表達(dá)升高,到達(dá)峰值后又逐漸下降,且表現(xiàn)為時(shí)間依賴型(劉慧慧等,2014)。利用污染物對(duì)貝類產(chǎn)生刺激時(shí),也發(fā)現(xiàn)貝類體內(nèi)的GST酶活性顯著升高,從而保護(hù)自身細(xì)胞免受外界脅迫環(huán)境損傷(Blanchette et al.,2002)。另外,有研究發(fā)現(xiàn)脅迫櫛孔扇貝(Chlamys farreri)可以誘導(dǎo)其 GSTPi表達(dá)且具有一定時(shí)間劑量效應(yīng)(苗晶晶,2010),已有研究表明底泥浸出液對(duì)GSTD基因的mRNA轉(zhuǎn)錄水平表達(dá)也顯示出先誘導(dǎo)后抑制作用(蔣玫等,2013),以上研究結(jié)果均與本實(shí)驗(yàn)結(jié)果類似。GST mRNA轉(zhuǎn)錄水平和酶活性的提高意味著體內(nèi)相應(yīng)蛋白表達(dá)水平提高,間接證明了 GST的誘導(dǎo)是生物體對(duì)化學(xué)物質(zhì)脅迫的適應(yīng)性反應(yīng)。鑒于此敏感反應(yīng),GST能夠作為環(huán)境污染指示分子(Lenartova et al.,2000),可直觀反映水體環(huán)境的污染狀況。

    以河蜆作為環(huán)境監(jiān)測的指示生物,第一,因?yàn)楹油樖堑蛳到y(tǒng)底棲動(dòng)物的重要組成部分,分布廣,生活周期長,對(duì)環(huán)境變化敏感;第二,當(dāng)水體受到污染時(shí),最先接觸污染物的是活動(dòng)能力差的貝類品種,由于其不具有回避能力,暴露在污染物中的時(shí)間長,有害物質(zhì)易發(fā)生富集,進(jìn)而影響其正常的生理代謝。因此,通過對(duì)河蜆體內(nèi)GST mRNA和酶活性進(jìn)行實(shí)時(shí)監(jiān)測,可加強(qiáng)對(duì)水體中重金屬污染程度的監(jiān)測。

    4 結(jié)論

    本研究通過克隆獲得河蜆GST mRNA完整序列,由進(jìn)化樹分析得知河蜆GST與菲律賓簾蛤親緣關(guān)系最近。河蜆體內(nèi)GST mRNA表達(dá)量和酶活性對(duì)水體中 Cd2+、Cu2+、Pb2+高度敏感且均隨迫時(shí)間的延長呈先增強(qiáng)后減弱趨勢,說明河蜆內(nèi)臟中GST可以作為水體環(huán)境重金屬污染的監(jiān)測指示分子。

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