周 力,張峰碩,高占紅,李鵬翔,侯生珍,桂林生*,王志有*
(1.青海大學農(nóng)牧學院,西寧 810016;2.寧夏大學農(nóng)學院,銀川 750021;3.寧夏回族自治區(qū)反芻動物分子細胞育種重點實驗室,銀川 750021)
羔羊出生后2~3月,胃腸道結(jié)構(gòu)與功能逐漸趨于完善,日糧也由母乳轉(zhuǎn)變成飼料[1]。瘤胃作為反芻動物特有的消化器官,養(yǎng)分能夠通過瘤胃上皮直接被機體消化吸收[2]。飼料進入瘤胃內(nèi)經(jīng)過充分的發(fā)酵、消化后,再次送入小腸被完全吸收[3]。瘤胃組織的形態(tài)發(fā)育主要包括瘤胃重量、容積、乳頭長度及胃壁厚度等指標的變化。研究證實,瘤胃的形態(tài)發(fā)育與飼養(yǎng)方式、環(huán)境條件、斷奶時間以及營養(yǎng)調(diào)控等有關(guān)[4]。瘤胃壁上分布密集的乳頭,增加了瘤胃壁吸收養(yǎng)分的表面積,對瘤胃上皮的營養(yǎng)物質(zhì)吸收以及離子的轉(zhuǎn)運能力具有決定性作用。
高原土著動物(例如牦牛、藏羊、藏豬和藏雞等)長期生活于青藏高原,為了在極端惡劣的環(huán)境下生存,其生理行為、表觀形態(tài)以及分子水平等方面發(fā)生了一系列適應(yīng)性變化[5]。而藏羊作為高原畜牧產(chǎn)業(yè)的特色資源,主要生活在海拔3 000 m以上,具有體質(zhì)強健、耐嚴寒、抗缺氧等[6]優(yōu)勢,已經(jīng)進化出發(fā)達的消化器官,能夠?qū)⒘鑫竷?nèi)非結(jié)構(gòu)性碳水化合物轉(zhuǎn)化為揮發(fā)性脂肪來維持機體代謝[7]。此外,由于斷奶羔羊消化器官尚未發(fā)育完善,易受多種因素影響和調(diào)節(jié)[8]。瘤胃結(jié)構(gòu)與功能的變化能夠反映機體消化吸收的能力,所以維持良好狀態(tài)的瘤胃形態(tài)能夠發(fā)揮正常的消化功能。因此,本試驗擬以高海拔地區(qū)藏羊為研究對象,旨在了解綿羊消化生理特性來充分發(fā)揮青海特色資源優(yōu)勢,同時為在實際生產(chǎn)中飼料的配制提供基本理論依據(jù)。
試驗選用發(fā)育良好、胎次一致且初始體重相近的2~3月齡高原型藏羊公羔60只,隨機分為兩組,每組5個重復(fù),每個重復(fù)6只羊,即對照組飼喂玉米飼糧,試驗組飼喂10%小麥粉替代精料中玉米。整個試驗期為100 d,其中預(yù)飼期10 d,正試期90 d。
基礎(chǔ)飼糧參照中國《肉羊飼養(yǎng)標準》(NY/T 816-2004)[9]進行設(shè)計(其組成及營養(yǎng)水平見表1)。整個試驗分2個階段,第1階段為0~30 d,基礎(chǔ)飼糧由60%精料補充料+40%粗飼料(燕麥青干草與燕麥青貯各占1/2)組成。第2階段為31~90 d,基礎(chǔ)飼糧由70%精料補充料+30%粗飼料(燕麥青干草與燕麥青貯各占1/2)組成。
表1 基礎(chǔ)飼糧組成及營養(yǎng)水平(干物質(zhì)基礎(chǔ))Table 1 Composition and nutrient levels of basal diets(DM basis) %
試驗期間每天通過人工將飼料攪拌均勻后分別于08:30和16:30各飼喂羔羊1次。自由采食,自由飲水。試驗開始前對羊舍進行消毒滅菌,同時按照常規(guī)方法進行驅(qū)蟲與免疫。
飼養(yǎng)試驗結(jié)束時,各組隨機挑選5只羔羊屠宰,然后迅速打開腹腔,找到胃部,結(jié)扎各胃室的連接處,分別采集1 cm3的組織樣品,使用預(yù)冷的磷酸鹽緩沖液沖洗干凈,然后將其浸泡在4%甲醛溶液中固定24 h,用于制作復(fù)胃組織形態(tài)指標觀察。同時收集15 mL瘤胃液,經(jīng)4層紗布過濾后,分裝于無菌凍存管,置于液氮中保存,用于瘤胃消化酶活性及抗氧化指標的檢測。
1.5.1 復(fù)胃組織形態(tài)發(fā)育分析
復(fù)胃組織切片的制作采用石蠟法,經(jīng)蘇木精-伊紅(H.E)染色后在光學顯微鏡(Olympus BX51)下觀察并拍照,再使用Image-Pro Plus 6.0軟件進行測量復(fù)胃組織形態(tài)學各項指標。每個樣本觀察3個非連續(xù)切片,每張切片選取5個視野,每個視野分別測定3~5個數(shù)據(jù)。
1.5.2 瘤胃消化酶活性和抗氧化指標檢測
采用酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA)測定瘤胃消化酶活性和抗氧化指標,試劑盒購自江蘇酶標生物科技有限公司,具體操作按照說明書步驟進行。所測瘤胃消化酶活性包括α-淀粉酶、胰蛋白酶、糜蛋白酶、纖維素酶及脂肪酶活性;所測瘤胃抗氧化指標包括丙二醛、總抗氧化能力含量,過氧化氫酶、谷胱甘肽過氧化物酶及超氧化物歧化酶活性。
1.5.3 瘤胃pH值測定
瘤胃pH:藏羊屠宰后,使用數(shù)字式pH計(PHS-3C,上海儀天科學儀器有限公司)立即測定瘤胃液pH值,測定前應(yīng)使用相應(yīng)標準液進行校正。
原始數(shù)據(jù)先用Microsoft Excel 2019進行初步分析,運用t檢驗法進行差異顯著性分析,試驗結(jié)果以“平均值+標準誤(mean±SEM)”表示,以P<0.05作為顯著性判斷標準。
由表2和圖1可見,試驗組瘤胃的角質(zhì)層厚度顯著高于對照組(P<0.05),兩組間瘤胃的乳頭長度、乳頭寬度、顆粒層厚度、肌層厚度及中央肌層厚度差異不顯著(P>0.05)。對照組網(wǎng)胃的乳頭長度和乳頭寬度顯著低于試驗組(P<0.05),兩組間網(wǎng)胃的角質(zhì)層厚度、顆粒層厚度、肌層厚度及中央肌層厚度差異均不顯著(P>0.05)。兩組間瓣胃的乳頭長度、乳頭寬度、角質(zhì)層厚度、顆粒層厚度、肌層厚度、中央肌層厚度差異不顯著(P>0.05)。與對照組相比,試驗組皺胃的黏膜層厚度顯著提高(P<0.05),兩組間皺胃的角質(zhì)層厚度、肌層厚度及黏膜下層厚度差異均不顯著(P>0.05)。
圖1 兩組間高原型藏羊復(fù)胃組織的石蠟切片F(xiàn)igure 1 paraffin section of compound stomach tissue of Plateau Tibetan sheep between the two groups
表2 小麥替代玉米對藏系綿羊復(fù)胃形態(tài)發(fā)育的影響Table 2 Effect of wheat replacing corn on morphological development of restomach in Tibetan sheep
從表3可見,相較于對照組,試驗組瘤胃的胰蛋白酶活性顯著提高(P<0.05),兩組間瘤胃的α-淀粉酶、纖維素酶、糜蛋白酶以及脂肪酶活性差異均不顯著(P>0.05)。
表3 小麥替代玉米對藏系綿羊瘤胃消化酶活性的影響Table 3 Effect of wheat replacing corn on digestive enzyme activity in rumen of Tibetan sheep
從表4可見,兩組間瘤胃的總抗氧化能力,超氧化物歧化酶、谷胱甘肽過氧化物酶以及過氧化氫酶活性差異均不顯著(P>0.05);而對照組瘤胃丙二醛含量卻顯著高于試驗組(P<0.05)。
表4 小麥替代玉米對藏系綿羊瘤胃抗氧化能力的影響Table 4 Effect of wheat replacing corn on antioxidant capacity in rumen of Tibetan sheep
從圖2可見,與對照組相比,試驗組瘤胃的pH值差異不顯著(P>0.05),說明小麥替代玉米對藏系綿羊瘤胃pH值無明顯影響。
圖2 小麥替代玉米對藏系綿羊瘤胃pH的影響Figure 2 Effect of wheat replacing corn on pH of rumen of Tibetan sheep
胃具有儲存食物、消化、吸收以及防御功能,其中瘤胃內(nèi)棲居著大量微生物,能將飼料中蛋白質(zhì)、淀粉和碳水化合物轉(zhuǎn)化成揮發(fā)性脂肪酸,以滿足宿主的能量需求[10]。而瘤胃組織形態(tài)的發(fā)育主要體現(xiàn)于解剖結(jié)構(gòu)與生理變化,如瘤胃重量、體積以及胃壁厚度等的改變[11]。瘤胃的乳頭長度和寬度是評價其形態(tài)發(fā)育的重要指標[12]。本試驗對照組網(wǎng)胃的乳頭長度、寬度顯著小于試驗組,推測其原因可能是小麥+玉米組合效應(yīng)豐富了綿羊瘤胃微生物多樣性,加速了有益微生物的生長繁殖,繼而促進了網(wǎng)胃乳頭的形態(tài)發(fā)育。本試驗中,兩組間各胃室的肌層厚度差異不顯著,說明兩組間各胃室的強烈收縮和舒張活動提供的動力無顯著差異,可能是因為所有藏羊均為舍飼,限制其運動量,導(dǎo)致兩組羔羊運動量基本相同所致。角質(zhì)層作為物理屏障具有保護瘤胃底層上皮細胞的功能[13]。而本試驗發(fā)現(xiàn),對照組瘤胃的角質(zhì)層厚度顯著低于試驗組,可能是因為小麥中含有較多的淀粉,提高了可發(fā)酵物質(zhì)的含量,進而促進了瘤胃發(fā)酵功能所致。顆粒層無皮脂腺分泌,水分可以自由通過。在本試驗中,兩組間顆粒層的厚度差異不明顯。本研究表明兩組間前胃(瘤胃、網(wǎng)胃、瓣胃)的中央肌層厚度差異不顯著。在羔羊初生時皺胃已發(fā)育到一定程度,出生后可立即執(zhí)行消化功能,與其他胃室相比不易受日糧的影響。而本試驗研究卻證實,對照組皺胃的黏膜層厚度顯著低于試驗組,提示使用10%小麥替代玉米飼喂藏羊可以完善其黏膜結(jié)構(gòu),促進其形態(tài)發(fā)育。
當綿羊進食后,飼料首先會在瘤胃內(nèi)進行微生物發(fā)酵,再流入其他胃室進行消化吸收[14]。消化酶在消化、吸收和利用營養(yǎng)物質(zhì)上發(fā)揮著重要作用[15]。瘤胃內(nèi)微生物數(shù)量、活力決定了消化酶活性以及飼料消化速率[16]。其中纖維素酶活性可直觀評估瘤胃纖維分解菌的數(shù)量以及能力[17]。本試驗表明,兩組間瘤胃的纖維素酶活性差異不顯著,其原因可能是由于兩組飼料中纖維水平相近所致。在本試驗中,對照組瘤胃的胰蛋白酶活性顯著低于試驗組,表明與對照組相比,試驗組藏羊的瘤胃能夠使蛋白質(zhì)發(fā)生水解生成更多的氨基酸以滿足機體需要。另外,本研究也發(fā)現(xiàn)兩組間瘤胃的糜蛋白酶活性差異不顯著。α-淀粉酶活性與動物的采食量、淀粉的攝入量均有關(guān)[18]。從本試驗研究結(jié)果來看,α-淀粉酶活性差異不顯著,可能是由于兩組藏羊的采食量、淀粉的攝入量基本一致所造成。脂肪酶能將飼料中的甘油三酯水解成脂肪酸、甘油二酯與甘油單酯,從而被機體所吸收。本試驗表明,兩組間瘤胃的脂肪酶活性差異不顯著,揭示10%小麥替代玉米未對藏羊瘤胃的脂肪酶活性產(chǎn)生不利影響。由于目前脂肪酶合成與分泌的機理尚不明確,加上有關(guān)小麥與綿羊胃腸道消化酶活性的關(guān)系報道較少,因而小麥對綿羊瘤胃中脂肪酶作用機理還有待進一步的深入研究。
由于活性氧和活性氮的生成量增加、酶活性受損或外源性物質(zhì)攝入減少而產(chǎn)生的過量自由基從而引起氧化應(yīng)激反應(yīng)[19]。所以,通過檢測羔羊瘤胃的谷胱甘肽過氧化物酶、過氧化氫酶以及超氧化物歧化酶活性,可以用來衡量機體抗氧化損傷能力。在正常生理條件下,谷胱甘肽過氧化物酶、過氧化氫酶及超氧化物歧化酶活性越大表明機體抗氧化能力越強[20]。本研究證實,兩組間瘤胃的谷胱甘肽過氧化物酶、過氧化氫酶及超氧化物歧化酶活性差異均不顯著,表明精料中使用10%小麥替代玉米對藏羊瘤胃的抗氧化酶活性無負面影響。丙二醛能夠直接衡量脂質(zhì)過氧化與細胞受損的程度,其含量越高表明細胞膜脂質(zhì)過氧化程度越高,細胞膜遭受的傷害也就越嚴重[21]。在本試驗中,對照組瘤胃的丙二醛含量顯著高于試驗組,說明使用10%小麥替代精料補充料中玉米能夠明顯減輕瘤胃脂質(zhì)氧化程度??偪寡趸芰κ呛饬繖C體總體抗氧化能力的綜合性指標,能夠代表機體的總抗氧化防御水平[22]。而本研究條件下,兩組間瘤胃的總抗氧化能力含量無顯著差異,揭示了飼喂10%小麥替代精料中部分玉米對瘤胃總抗氧化能力無明顯影響。
pH是反芻動物瘤胃發(fā)酵參數(shù)的重要指標之一,同時可以用來衡量瘤胃的生理狀況[23]。瘤胃pH值主要受多種因素的影響,如飼糧組成、流通速度以及唾液分泌量等。pH值高低影響瘤胃消化酶的活性,而消化酶活性的高低又反映反芻動物對養(yǎng)分的吸收能力,從而影響機體生長發(fā)育。研究證實,瘤胃pH在5.8以上,說明瘤胃微生物菌群較為穩(wěn)定[24],然而pH低于5.8時,瘤胃微生物菌群結(jié)構(gòu)則處于失衡狀態(tài)[25]。以牦牛為研究對象[26],結(jié)果發(fā)現(xiàn)放牧組瘤胃液中pH極顯著低于補飼組,其原因可能是經(jīng)過補飼精料后,非纖維性碳水化合物在牦牛瘤胃中迅速發(fā)酵產(chǎn)生大量的揮發(fā)性脂肪酸,故造成瘤胃液pH顯著下降,這與本試驗結(jié)果不一致。在本試驗條件下,兩組藏羊瘤胃pH值均處于正常范圍內(nèi),且試驗組羔羊瘤胃pH值低于照組,但未達到顯著水平,分析其原因可能是小麥替代玉米的比例不足以引起瘤胃揮發(fā)性脂肪酸升高造成pH值顯著下降,表明飼喂10%小麥替代玉米具有降低高原型藏羊瘤胃pH值的趨勢。
綜上,在精料補充料中使用10%小麥替代玉米可促進高原型藏羊復(fù)胃形態(tài)發(fā)育,同時能增強瘤胃消化酶活性和抗氧化能力。