陳銘中,鐘旭美*,孔令開,陳勇,葉穎嫻
1(陽江職業(yè)技術(shù)學(xué)院 食品與環(huán)境工程系,廣東 陽江,529566) 2(陽江市功能性食品研發(fā)與質(zhì)量評價(jià)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廣東 陽江,529566)
香蕉廣泛種植在熱帶、亞熱帶地區(qū),成熟的香蕉果實(shí)甘糯,富含多種營養(yǎng)元素,并具有“快樂水果”之稱。因其種植面積大、在世界水果貿(mào)易中占據(jù)著重要的地位[1]。香蕉中的碳水化合物、粗蛋白和熱量都高于荔枝、菠蘿、芒果、龍眼、橙子等水果,且在中醫(yī)理論中,香蕉還具有降血壓、通便、清熱祛毒和抗衰老等功效,深受廣大消費(fèi)者的喜愛[2]。香蕉難以貯藏,容易受到外界濕度、溫度等影響導(dǎo)致失去商用價(jià)值。真空冷凍干燥技術(shù)在芒果[3]、藍(lán)莓[4]等果蔬加工中參與了實(shí)際應(yīng)用并得到了較高的認(rèn)可和評價(jià)。通過真空冷凍干燥技術(shù)將香蕉果肉加工成香蕉粉,可以最大程度地保留原有色澤、營養(yǎng)成分和風(fēng)味,并具有易吸收、易溶解的特點(diǎn)[5]。降低香蕉果肉的含水率,并且改變了香蕉狀態(tài),既可以緩解不耐貯藏和包裝的問題,還可以為人們生活帶來便捷,具有極大的發(fā)展?jié)摿?。莊遠(yuǎn)紅等[6]和何艾等[7]分別研究了真空冷凍干燥工藝對香蕉片和芭蕉片的品質(zhì)影響,WANG等[8]采用真空帶式干燥、冷凍干燥和風(fēng)干3種不同的干燥方法對香蕉泥進(jìn)行處理,采用統(tǒng)計(jì)分析系統(tǒng)評價(jià)香蕉粉主要揮發(fā)物的貢獻(xiàn)。目前,關(guān)于香蕉切片經(jīng)不同時(shí)間的真空冷凍干燥后研磨成粉,與新鮮香蕉品質(zhì)和揮發(fā)性組分的差異比較的研究未見報(bào)道。
本研究以八成熟的新鮮香蕉為原料,切片后護(hù)色,在不同時(shí)長中真空冷凍干燥,研磨成香蕉粉,對新鮮香蕉和真空冷凍干燥24 h、33 h,將得到的香蕉粉三者進(jìn)行品質(zhì)分析。利用頂空固相微萃取(head space-solid phase micro-extraction, HS-SPME)結(jié)合氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀(gas chromatograph-mass spectrometer,GC-MS)測定3種不同香蕉樣品的揮發(fā)性組分,分析不同處理方式的香蕉揮發(fā)性組分的分類、生鮮香蕉與干燥后香蕉粉的揮發(fā)性組分的差異。根據(jù)品質(zhì)和揮發(fā)性組分的變化確定香蕉切片真空冷凍干燥的時(shí)間,為香蕉深加工的香氣變化和香蕉粉代餐食品等的研制提供參考。
香蕉,陽江市陽東區(qū)水果市場;DPPH,福州飛凈生物科技有限公司;氯化鈉分析純,國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;2-辛醇標(biāo)準(zhǔn)品(GC≥99.5%),上海源葉生物科技有限公司;正構(gòu)烷烴混標(biāo)(C7~C40,1 000 μg/mL),上海安譜實(shí)驗(yàn)科技股份有限公司;亞硝酸鈉、硝酸鋁,廣州化學(xué)試劑廠。
QP2020型GC-MS,日本島津儀器有限公司;SH-Rxi-5Sil MS 氣相色譜柱,島津公司;75 μm CAR/PDMS萃取頭、SPME手動進(jìn)樣器,美國Supelco公司;SPME專用襯管,島津(上海)有限公司;90-2A磁力加熱攪拌器,天津市賽得利斯實(shí)驗(yàn)分析儀器制造廠;SHT-060SD超聲波清洗機(jī),深圳市深華泰超聲洗凈設(shè)備有限公司;FA224電子天平,上海舜宇恒平科技儀器有限公司;DK-S24恒溫水溶鍋,上海精宏實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;A11分析研磨機(jī),德國IKA公司;研磨料理機(jī)KD-607,中山市康典電器有限公司;I3紫外可見分光光度計(jì),濟(jì)南海能儀器有限公司;FBZ1002-UP-P超純水機(jī),青島富勒姆科技有限公司;真空冷凍干燥機(jī),寧波新芝生物科技有限公司。
1.3.1 樣品制備
香蕉粉加工工藝圖如圖1所示。
圖1 香蕉粉加工流程圖Fig.1 Processing flow chart of banana powder
1.3.2 操作要點(diǎn)
原料篩選:由于不同成熟度的香蕉果實(shí)淀粉含量和所含揮發(fā)性組分的種類差異都較大,成熟后香蕉果實(shí)中維生素和果膠含量越低;膳食纖維和可溶性糖含量增高,果膠和糖含量是導(dǎo)致香蕉打粉時(shí)出現(xiàn)結(jié)塊的主要根源,因此,選擇長度15 cm無機(jī)械損傷、八成熟的香蕉做原料[9-10]。
去皮、切分:樣品形狀、大小會導(dǎo)致都會影響真空時(shí)間和口感,本研究借鑒焦丹[11]處理香蕉厚度的方法將香蕉片厚度控制在0.5 cm左右,這個(gè)厚度有利于護(hù)色和縮短干燥時(shí)間。
護(hù)色:黃華梅等[12]發(fā)現(xiàn)檸檬酸添加量≥0.4%時(shí),可以有效抑制多酚氧化酶的活力,從而達(dá)到護(hù)色目的,本文借鑒該方法稍作改動進(jìn)行護(hù)色處理。
干燥處理:將處理好的香蕉切片置于調(diào)配好的真空冷凍干燥機(jī)中,進(jìn)行脫水處理。預(yù)實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)當(dāng)干燥時(shí)間少于24 h時(shí)香蕉片不容易粉碎,出現(xiàn)了粉團(tuán)現(xiàn)象;當(dāng)干燥時(shí)間久于33 h時(shí),香蕉雖然可以呈較好的粉碎效果,但極易吸潮,難以保持顆粒狀,并且當(dāng)干燥時(shí)間>33 h時(shí),成本增高,過長的干燥時(shí)間難以實(shí)現(xiàn)在工業(yè)中應(yīng)用。結(jié)合預(yù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果與成本考慮,干燥時(shí)間在24 h與33 h時(shí)制得的香蕉粉色澤和狀態(tài)適中,成本相對較低。故本實(shí)驗(yàn)的香蕉片真空冷凍干燥時(shí)間確定為24 h、33 h兩種。
磨粉和過篩:將香蕉干片放入高速打粉機(jī)中,打開高速打粉機(jī)開關(guān),使打粉機(jī)高速運(yùn)行至香蕉干片完全呈細(xì)小粉狀顆粒,隨后倒入100目不銹鋼篩中,過篩完成后用鋁箔袋包裝,得香蕉粉成品。
1.3.3 理化指標(biāo)的測定
1.3.3.1 樣品制備
準(zhǔn)確稱取樣品3 g于15 mL離心管中,準(zhǔn)確加入80%(體積分?jǐn)?shù))甲醇溶液10 mL;50 ℃超聲波提取20 min后取出,用混勻器充分2 min后轉(zhuǎn)移到高速離心機(jī)中8 000 r/min收集上清液,重復(fù)2次;使用80%甲醇定容50.0 mL容量瓶中,在-80 ℃冰箱保存,待測。該提取液可用于總酚、DPPH抗氧化能力指標(biāo)的測定。試驗(yàn)做3個(gè)平行測定。
1.3.3.2 含水率的測定
取稱量瓶,放入烘箱中以100 ℃烘干(至恒重狀態(tài)),置于干燥器中冷卻,然后精準(zhǔn)稱量。取分析樣品5~10 g放入稱量瓶中準(zhǔn)確稱重,使樣品平坦,然后將稱量瓶放入烘箱中,先在65 ℃烘2 h至樣品變脆,再以100 ℃烘2 h,取出后置于干燥器中冷卻,稱重后繼續(xù)烘1 h。冷卻稱重,直至2次重量差不超過3 mg為止,生鮮樣品由于黏度大,加入已恒重10 g石英砂在水浴攪拌,使其近干,再進(jìn)行以上操作。
1.3.3.3 總酚的測定
參考陳蓬鳳等[13]的方法測定,稍有改動。
準(zhǔn)確吸取不同樣品提取液0.5 mL于試管中,分別向試管加入0.5 mL福林酚溶液(體積比1∶10);手動搖蕩試管15 s后加入1 mL 75 g/L的碳酸鈉溶液和1 mL純水,避光保存1 h,取出在725 nm處測定吸光度,同樣方法以系列濃度梯度的沒食子酸制得標(biāo)準(zhǔn)溶液,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算總酚濃度,得到樣品總酚含量(μg/g)。
1.3.3.4 DPPH自由基清除率的測定
參照王定美等[14]和張巖等[15]的方法測定,有所改動。測定結(jié)果以清除率表示。各取0.3 mL 3種不同香蕉樣品提取液加入到10 mL比色管中,然后向每管中加入3.7 mL 0.063 mmol/L的DPPH乙醇溶液,混勻常溫避光,靜置20 min,在517 nm下測定吸光度,以無水乙醇做空白對照。DPPH自由基清除率計(jì)算如公式(1)所示:
(1)
式中:A0為DPPH溶液與無水乙醇的吸光度;A1為樣品與DPPH溶液的吸光度。
1.3.4 三種香蕉樣品揮發(fā)性組分測定
1.3.4.1 揮發(fā)性組分的SPME萃取與測定
稱取新鮮香蕉樣品及真空冷凍干燥制備好的香蕉粉樣品3 g于螺口樣品瓶中,把磁力拌子置入樣品瓶后準(zhǔn)確加5 mL飽和氯化鈉使香蕉樣品充分溶解,分別加入5.0 μL質(zhì)量濃度為0.99 mg/mL內(nèi)標(biāo)物2-辛醇,將樣品瓶蓋子旋緊避免揮發(fā)性組分流失導(dǎo)致測定結(jié)果偏差,樣品瓶置于恒溫40 ℃的磁力恒溫?cái)嚢杵髦兴〖訜?,推出萃取纖維頭,頂空吸附40 min后,從樣品瓶上拔出萃取針頭,萃取的樣品供GC-MS解析3 min后進(jìn)行分析。
1.3.4.2 GC-MS定性和定量分析
色譜條件:SHIMADZU SH-Rxi-5 sil MS(30 m×250 μm×0.25 μm)毛細(xì)管色譜柱,載氣為氦氣,其他色譜條件進(jìn)行比較篩選后確定。程序升溫:初始溫度40 ℃,保持1 min;以2 ℃/min的速率升至60 ℃;保持2 min,再以5 ℃/min的速率升至150 ℃,保持2 min,以10 ℃/min的速率升至180 ℃,保持1 min。載氣為高純氦(He),流速為1.0 mL/min;進(jìn)樣口溫度220 ℃,不分流。質(zhì)譜條件:EI電離源;電子能量70 eV,電壓350 V,掃描范圍m/z35~400。
定性分析:原始數(shù)據(jù)導(dǎo)入MS-DIAL 4.70軟件進(jìn)行色譜峰解卷積[16]對齊等處理后,導(dǎo)入NIST 17質(zhì)譜庫進(jìn)行組分搜索與鑒定,根據(jù)NIST 17質(zhì)譜庫中的正向匹配度(match factor,MF)、反向匹配度(reverse match factor,RMF)均≥800,同時(shí)參考未知組分的計(jì)算保留指數(shù)(retention index,RIact)與NIST 17質(zhì)譜庫的參考保留指數(shù)(RIref)接近原則,確定該組分名稱。
定量分析:采用內(nèi)標(biāo)法進(jìn)行半定量分析,內(nèi)標(biāo)物2-辛醇的質(zhì)量濃度為0.99 mg/mL,加標(biāo)體積為5.0 μL。
1.3.4.3 數(shù)據(jù)處理
WPS Office進(jìn)行組分濃度計(jì)算,自動質(zhì)譜退卷積定性系統(tǒng)[17]建立本實(shí)驗(yàn)的保留指數(shù)校正庫,MS-DIAL 軟件(V.4.70)進(jìn)行原始質(zhì)譜數(shù)據(jù)的預(yù)處理,SIMCA軟件(V.14.1)進(jìn)行正交偏最小二乘法判別分析(orthogonal partial least squares discriminant analysis,OPLS-DA)分類,R語言(V.4.0.2)繪制火山圖、韋恩圖,Origin 2019b繪制品質(zhì)含量圖。
圖2中生鮮香蕉(FR)樣品,表面呈黃白色,質(zhì)地完好,甘甜軟糯,香味濃郁;真空冷凍干燥24 h(FD 24h)研制成香蕉粉后,色澤如面粉潔凈、質(zhì)地細(xì)膩,味道香甜,水溶后口感絲滑;真空冷凍干燥33 h(FD 33h)研制成香蕉粉后,色澤微黃,暗沉,質(zhì)地粗糙,味道香甜,水溶后有結(jié)塊現(xiàn)象。
圖2 三種香蕉樣品視圖Fig.2 Sample view of three kinds of bananas
水分是決定香蕉貯存的重要條件,降低水分活度(water activity,Aw)可以有效抑制微生物的生長,還可以降低香蕉中酶類的酶促反應(yīng)。由表1可知,生鮮香蕉的樣品含水率最高,隨著真空冷凍干燥對香蕉樣品干燥時(shí)間延長,其含水率降低,即水分活度越低。3種不同樣品的含水率分別是FR(80.3%)>FD 24h(4.1%)>FD 33h(2.6%),三者具有顯著的差異,干燥33 h的香蕉含水率最低,更耐貯藏。
總酚是果蔬中次代謝產(chǎn)物,和果蔬的色澤、品質(zhì)抗逆性病有密切聯(lián)系,并且影響著果蔬的貯存和營養(yǎng)價(jià)值[18]。沒食子酸標(biāo)準(zhǔn)曲線方程為y=0.072 8x-0.001 8,R2=0.999 3,代入標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算香蕉樣品的總酚含量。由表1可知,3種樣品中生鮮香蕉樣品的總酚含量最高,其次是干燥24 h后的香蕉樣品,含量最低的是干燥33 h的香蕉樣品,有可能是在采用真空冷凍干燥技術(shù)對香蕉樣品干燥時(shí),隨著水分的流失,總酚隨著干燥時(shí)間延長也有所損失,干燥時(shí)長對樣品中的總酚含量有顯著的影響。24 h干燥時(shí)間保留了生鮮香蕉大于70%的總酚物質(zhì),33 h干燥時(shí)間只保留了生鮮香蕉不超過13%的總酚物質(zhì),在保留總酚物質(zhì)含量上,24 h干燥時(shí)間優(yōu)于33 h干燥時(shí)間。
表1 三種不同香蕉樣品水分和總酚的含量Table 1 Contents of water and total phenol in three different banana samples
由圖3可知,3種香蕉樣品的DPPH自由基清除率的強(qiáng)弱順序?yàn)椋荷r香蕉樣品(58.81%)>干燥24 h香蕉粉(36.33%)>干燥33 h香蕉蕉粉(3.86%)。可見3種不同的樣品之間的DPPH自由基清除能力相差極大,24 h干燥時(shí)間保留了生鮮香蕉大于60%的DPPH自由基清除能力,而33 h干燥時(shí)間的DPPH自由基清除能力下降到生鮮香蕉的7%以下,該值的變化趨勢與含水率、總酚含量的規(guī)律一致,因此,DPPH自由基清除能力有可能和含水率有著密切關(guān)聯(lián),樣品干燥時(shí)間越長,其DPPH清除能力的越弱[19],合適的干燥時(shí)間有利于保留香蕉粉的總酚等熱敏性生物活性物質(zhì),維持較強(qiáng)的抗氧化能力。盡管24 h真空冷凍時(shí)間香蕉的干燥度沒33 h高,但相對保留了更高的DPPH自由基清除能力,在香蕉粉的精深加工中需要考慮產(chǎn)品的貯藏時(shí)間與生物活性物質(zhì)之間的平衡,因此,24 h的真空冷凍干燥時(shí)間處理相對更合適。
圖3 不同香蕉樣品DPPH自由基清除率Fig.3 DPPH radical scavenging rate in different samples
2.3.1 揮發(fā)性組分的定性與定量
通過頂空固相微萃取-氣相色譜-質(zhì)譜技術(shù)分別對FR、FD 24h和FD 33h樣品揮發(fā)性組分進(jìn)行測定,3種香蕉樣品的總離子流圖見圖4-A,原始數(shù)據(jù)經(jīng)MS-DIAL 4.70軟件的峰對齊等處理,得到128個(gè)組分,導(dǎo)入NIST 17質(zhì)譜數(shù)據(jù)庫檢索,正向匹配度、反向匹配度均≥800的組分共有64個(gè),并以2-辛醇為內(nèi)標(biāo)計(jì)算得到各組分的相對含量。如表2所示,本實(shí)驗(yàn)的揮發(fā)性組分與前人報(bào)道的揮發(fā)性組分類似[20-21];64個(gè)組分中(下文提到的組分含量均指已鑒定組分,不含未鑒定組分),酯類有30個(gè),酮類8個(gè),醛類6個(gè),醇類5個(gè),其他類13個(gè),酯類是香蕉揮發(fā)性組分的主要組分[22]。FR、FD 24h和FD 33h樣品的總揮發(fā)性組分含量、主要類別含量分圖4-B所示,3種樣品的總揮發(fā)性組分含量分別是7 037.49、6 230.13(占FR的88.53%)、5 698.00 μg/kg(占FR的80.97%),其中酯類占總揮發(fā)性組分的比例分別為59.15%、38.19%、47.71%,酮類分別為10.05%、27.50%、35.05%,醛類分別為18.03%、1.84%、0.84%,因此生鮮香蕉的香氣組分以酯類、醛類還有酮類為主,而冷凍干燥后的樣品以酯類和酮類為主,醛類占比很低??傮w而言,冷凍干燥處理能夠在一定程度上保持生鮮樣品的原有香味,但生鮮樣品和冷凍干燥處理樣品的揮發(fā)性組分的類別含量還是存在一些差異。由圖4-B可知,F(xiàn)D 24h樣品的其他類別含量明顯高于FR樣品和FD 33h樣品,主要是因?yàn)镕D 24h樣品中的丁香酚含量相對很高,可能是該組分在24 h的干燥過程中得到了富集,但繼續(xù)干燥至33 h過程中,又有部分該組分隨著水汽被抽走。
A-總離子流圖;B-揮發(fā)性組分分類含量分布圖圖4 不同香蕉樣品總離子流圖與揮發(fā)性組分 分類含量分布圖Fig.4 Total ion current diagram and volatile component content distribution diagram of different banana samples
表2 三種不同香蕉樣品鑒定揮發(fā)性組分及含量Table 2 Identified volatile components and contents of three different banana samples
2.3.2 OPLS-DA分類與差異揮發(fā)性組分分析
將鑒定的64個(gè)組分的峰面積導(dǎo)入SIMCA 14.1軟件中進(jìn)行OPLS-DA分析。如圖5所示,F(xiàn)R、FD 24h和FD 33h三種樣品的揮發(fā)性組分在OPLS-DA中很好區(qū)分出3個(gè)區(qū)域,說明盡管真空冷凍干燥處理是一種非熱式干燥加工方法,對熱敏性組分保存較好,但其仍然對香蕉揮發(fā)性組分含量和種類有影響,進(jìn)而影響產(chǎn)品香氣,并且其處理時(shí)間長短對香氣也有影響。
圖5 三種不同香蕉樣品OPLS-DA分析Fig.5 OPLS-DA analysis of three different banana samples
對3種香蕉樣品揮發(fā)性組分再次在SIMCA 14.1軟件兩兩分別建立OPLS-DA模型,得到FR組與FD24 h組(Ⅰ組)、FR組與FD 33h組(Ⅱ組)、FD 24h組與FD 33h組(Ⅲ組)的倍數(shù)變化(fold change,F(xiàn)C)和T檢驗(yàn)的P值,以|log2FC|>1且P<0.05篩選出兩組間的差異組分,通過火山圖直觀顯示差異組分的分布情況,其中圖6-A是FR組與FD 24h組的組分差異情況(顯著下調(diào)26個(gè)、顯著上調(diào)15個(gè),無顯著變化23個(gè));圖6-B是FR組與FD 33h組的組分差異情況(顯著下調(diào)21個(gè),顯著上調(diào)10個(gè),無顯著變化33個(gè)),圖6-C是FD 24h組與FD 33h組的組分差異情況(顯著下調(diào)6個(gè),顯著上調(diào)4個(gè),無顯著變化54個(gè))。由圖6可知,F(xiàn)R樣品與FD樣品的差異明顯,其中FR樣品與FD 24h樣品的揮發(fā)性組分有41個(gè)差異組分,F(xiàn)R樣品與FD 33h樣品有31個(gè)差異組分;FD處理的2種樣品的揮發(fā)性組分差異小,只有10個(gè)顯著差異組分。結(jié)合表1分析,相對于FR組,無論是FD 24h組還是FD 33h組,最大差異的4個(gè)組分均為20號(己醛)、25號(2-己烯醛)和35號(環(huán)戊酸乙烯酯)、36號(3-庚烯-2-酮),前兩個(gè)是下調(diào),后兩個(gè)是上調(diào)。
A-FR組與FD 24h組;B-FR組與FD 33h組; C-FD 24h組與FD 33h組圖6 差異揮發(fā)性組分火山圖Fig.6 Volcano plots of volatile components from three different banana samples
圖7是Ⅰ組、Ⅱ組和Ⅲ組的差異組分的韋恩圖。由圖7可知,Ⅰ組特有的差異組分有9個(gè)[乙酸異丁酯、2-己酮、1-甲基乙酸丁酯、乙酸異戊酯、丁酸異丁酯、丁酸異戊酯、2-壬酮、(E)-2-甲氧基-4-(1-丙烯基苯酚)、欖香素],Ⅱ組特有的差異組分有3個(gè)(5-庚烯-2-酮、壬醛、6-乙基-4-庚烯基戊酸酯),Ⅲ組特有的差異組分有2個(gè)(乙酸乙酯、異丙烯基環(huán)己基甲醇),Ⅰ組與Ⅱ組的共同差異組分有24個(gè),Ⅰ組、Ⅱ組和Ⅲ組共同的差異組分有4個(gè)(4-己烯醇乙酯、苯乙醛、甲基丁香酚、4-烯丙基-2,6-二甲氧基苯酚)。
圖7 差異性組分的韋恩圖Fig.7 Venn diagram of differential components
本研究探索了生鮮香蕉和不同真空冷凍干燥時(shí)間的香蕉的品質(zhì)和揮發(fā)性組分的差異。生鮮香蕉、真空冷凍干燥時(shí)間24 h和33 h的香蕉粉3種香蕉樣品的含水率、總酚含量、DPPH自由基清除率有類似的下降趨勢,香蕉片真空冷凍干燥24 h的品質(zhì)保持優(yōu)于33 h。GC-MS測定后共鑒定出3種樣品果肉64個(gè)揮發(fā)性組分,生鮮香蕉的香氣組分以酯類、醛類還有酮類為主,而冷凍干燥后的樣品以酯類和酮類為主,醛類占比很低。3種香蕉樣品的揮發(fā)性組分均有差異,其中生鮮香蕉與2種真空冷凍干燥樣品的差異較大,2種真空冷凍干燥樣品的差異??;真空冷凍干燥處理的2組樣品與生鮮香蕉有共同的最大差異的4個(gè)組分為己醛、2-己烯醛、環(huán)戊酸乙烯酯、3-庚烯-2-酮;3種樣品兩兩比較,共有的差異組分有4個(gè)(4-己烯醇乙酯、苯乙醛、甲基丁香酚、4-烯丙基-2,6-二甲氧基苯酚)??梢?,盡管真空冷凍干燥技術(shù)是一種先進(jìn)的非熱加工技術(shù),但采用該技術(shù)處理干燥生鮮香蕉片后,與生鮮香蕉的揮發(fā)性組分還是存在較大差異,這些差異有可能是由于加工過程中損失或濃縮導(dǎo)致,有待進(jìn)一步研究。而真空冷凍干燥時(shí)間對揮發(fā)性組分的損失影響較大,從而影響了香蕉粉的香氣組分,綜合考慮香蕉粉的耐貯性、品質(zhì)和香氣,對于0.5 cm厚度的香蕉片采用真空冷凍干燥時(shí)間為24 h更合適,結(jié)果可為研制香蕉粉代餐食品提供參考。